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    高通量測序技術(shù)分析無特定病原體級實驗小鼠腸道的菌群組成

    2020-04-28 07:00:26韓立中
    診斷學(xué)(理論與實踐) 2020年1期
    關(guān)鍵詞:高通量品系菌群

    李 惠,馮 潔,韓立中

    (1.上海交通大學(xué)醫(yī)學(xué)院附屬瑞金醫(yī)院a.檢驗系,b.臨床微生物科,上海 200025;2.上海實驗動物研究中心 上海市實驗動物質(zhì)量監(jiān)督檢驗站,上海 201203)

    隨著生命科學(xué)的快速發(fā)展,發(fā)達國家在生命科學(xué)研究、藥品及生物試劑生產(chǎn)、食品檢驗和航天工業(yè)中使用的實驗動物均已達到無特定病原體(specific pathogen free,SPF)級,我國也要求在2010 年普及使用SPF 級實驗動物[1]。歐洲實驗動物聯(lián)合會(Federation of European Laboratory Animal Science Associations,FELASA)定期發(fā)布和更新詳細全面的實驗動物健康監(jiān)控指南和人員培訓(xùn)計劃,詳細闡述了監(jiān)測病原體的種類、采樣要求和檢測方法等[2]。我國最新發(fā)布的實驗動物國家標(biāo)準(zhǔn)《實驗動物微生物學(xué)等級及監(jiān)測(GB 14922.2-2011)》中指出,SPF 級實驗動物是指除清潔動物應(yīng)排除的病原外,不攜帶主要潛在感染或條件致病菌和對科學(xué)實驗干擾大的病原,簡稱SPF 級實驗動物。針對無特定微生物,我國實驗動物國家標(biāo)準(zhǔn)列舉了8 個必須排除的菌屬或菌種,分別為沙門菌屬(Salmonella spp.)、支原體屬(Mycoplasma spp.)、鼠棒狀桿菌(Corynebacterium kutscheri)、泰澤病原體(Tyzzer′s Organism)、嗜肺巴斯德桿菌(Pasteurella pneumotropica)、肺炎克雷伯菌(Klebsiella peneumoniae)、金黃色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)和銅綠假單胞菌(Pseudomonas aeruginosa)。即SPF 級實驗動物不帶有對人或動物本身致病的微生物,但非特定的微生物是允許存在的,且不能排除可經(jīng)胎盤屏障垂直傳播的微生物。然而在特定條件下,“非”病原體可以成為病原體,目前對于部分病原體尚缺乏有效的檢查手段。最近有研究表明,動物腸道微生物其實對實驗結(jié)果有較大影響,許多科研結(jié)果不能重復(fù)也歸咎于腸道菌群的影響[3]。

    實驗動物是否達到了SPF 級別,其重要的評價手段就是微生物質(zhì)量監(jiān)測,必須建立一套完整且高通量的微生物檢測體系,來確保大批量的實驗動物不攜帶應(yīng)排除的病原體。本研究在比較國內(nèi)外實驗動物細菌監(jiān)測方案后,選取部分細菌指標(biāo)作為調(diào)查項目,旨在建立一個將SPF 級實驗小鼠腸道內(nèi)容物病原菌的篩選與高通量測序技術(shù)相結(jié)合的技術(shù)平臺,探討其腸道菌群結(jié)構(gòu)分析的方法,從微生物質(zhì)量角度評估SPF 級實驗小鼠質(zhì)量,為提升實驗動物的微生物檢測水平提供技術(shù)支撐。

    材料與方法

    一、材料

    選取14 個品系共65 只SPF 級健康成年小鼠(見表1),雌鼠33 只,雄鼠32 只,由上海實驗動物研究中心提供,所有實驗動物飼養(yǎng)于屏障環(huán)境,飼養(yǎng)環(huán)境及條件相同,均隨機取自各飼養(yǎng)籠中。

    表1 65 只SPF 級小鼠樣本編號其品系分布

    二、材料與方法

    1.腸道內(nèi)容物總DNA 抽提:無菌采集處死后SPF 級健康成年小鼠回盲部腸道內(nèi)容物,稱重3~5 g,立即置于無菌采樣盒內(nèi),于-80 ℃下冷凍保存。取150 mg 冰凍樣品,采用TIANGEN(天根)生化科技有限公司提供的糞便基因組DNA 抽提試劑盒抽提糞便DNA[盡量使DNA 濃度大于100 ng/μL,吸光度值(A)280/260介于1.8~2.0 之間,并確保DNA 無降解],在完成濃度測定及瓊脂糖凝膠電泳評定后,保存于-20 ℃冰箱中。

    2.16S rDNA 基因擴增、純化及測序

    (1)PCR 擴增:用338F(5′-ACTCCTACGGGA GGCAGCAG-3′)和806R(5′-GGACTACHVGGGTW TCTAAT-3′)引物對樣本中細菌16S rRNA 基因的高可變V3~V4 區(qū)進行PCR 擴增。擴增程序為,95 ℃預(yù)變性3 min;95 ℃變性30 s,55 ℃退火30 s,72 ℃延伸30 s,共27 個循環(huán);最后72 ℃延伸10 min(ABI GeneAmp?9700 型PCR 儀)。擴增體系為20 μL,包括5×FastPfu 緩沖液4 μL,2.5 mmol/L 的dNTPs 2 μL,0.8 μL 引物(5 μmol/L),F(xiàn)astPfu 聚合酶0.4 μL;10 ng DNA 模板。

    (2)Illumina MiSeq 測序:使用2%瓊脂糖凝膠回收PCR 產(chǎn)物,利用AxyPrep DNA 凝膠提取試劑盒(Axygen Biosciences,Union City,CA,USA)進行純化,Tris-HCl 洗脫,2%瓊脂糖電泳檢測。利用QuantiFluorTM-ST(Promega,USA)進行定量檢測。根據(jù)Illumina MiSeq 平臺(Illumina,San Diego,USA)標(biāo)準(zhǔn)操作規(guī)程,將純化后的擴增片段構(gòu)建PE 文庫。用Illumina 公司的MiSeq PE300 平臺進行測序(上海美吉生物醫(yī)藥科技有限公司)。

    3.數(shù)據(jù)處理:原始測序序列使用Trimmomatic軟件進行質(zhì)控,用FLASH 軟件進行拼接。①設(shè)置50 bp 的窗口,如果窗口內(nèi)的平均質(zhì)量值低于20,從窗口開始截去后端堿基,去除質(zhì)控后長度低于50 bp 的序列;②barcode 需精確匹配,引物允許2 個堿基的錯配,去除模糊堿基;③根據(jù)重疊堿基將兩端序列進行拼接,重疊堿基需大于10 bp。去除無法拼接的序列[4]。使用的UPARSE 軟件(版本7.1,網(wǎng)址http://drive5.com/uparse/),根據(jù)97%的相似度對序列進行運籌分類單位(operational taxonomic units,OTU)聚類;使用UCHIME 軟件剔除嵌合體。利用核糖體數(shù)據(jù)庫項目(ribosomal database project,RDP)分類(http://rdp.cme.msu.edu/)對每條序列進行物種分類注釋,比對Silva 數(shù)據(jù)庫(SSU123),設(shè)置比對閾值為70%。Alpha 多樣性是對單個樣品中物種多樣性進行分析[5],包括Chao1 值、Ace 值、Shannon 指數(shù)以及Simpson 指數(shù)等[6]。利用Mothur(版本1.30.1)軟件計算樣品的Alpha 多樣性值。利用測得16S rDNA序列中已知的各種OTU 的相對比例,來計算抽取n 個(n 小于測得標(biāo)簽序列總數(shù))標(biāo)簽序列時出現(xiàn)OTU 數(shù)量的期望值,然后根據(jù)一組n 值(一般為一組小于總序列數(shù)的等差數(shù)列)與其相對應(yīng)的OTU 數(shù)量的期望值,采用軟件R(版本3.2.2)繪制稀釋曲線。

    結(jié) 果

    一、高通量序列分析和質(zhì)量控制

    65 只SPF 級健康成年小鼠的回盲部腸道內(nèi)容物樣本,經(jīng)數(shù)據(jù)過濾和質(zhì)控后得到144 318 條高質(zhì)量序列用于后續(xù)分析,這些序列長度集中在421~460 bp 之間(見圖1)。經(jīng)開放讀碼框OUT 聚類,65 個樣本高通量測序數(shù)據(jù)的片段可以聚類為972 個OUT。

    圖1 樣本高通量測序數(shù)據(jù)平均長度分布

    二、Alpha 多樣性分析結(jié)果

    C57 品系小鼠(11 只)、BALB/c 品系小鼠(11 只)、ICR 品系小鼠(15 只)、C57BL/6 品系(11 只)Nu/Nu和db 品系(6 只)與其他品系小鼠(8 只)樣品的Alpha 多樣性分析結(jié)果見表2~7。本次實驗Alpha多樣性指數(shù)的結(jié)果顯示,相同品系的小鼠樣本間Alpha 多樣性表現(xiàn)不均一,菌種數(shù)目亦不均勻,覆蓋率顯示本次測序結(jié)果能夠代表樣本中微生物的真實情況。

    65 條樣品稀釋曲線如圖2 所示,無限接近于樣本中所包含OTUs 的最大值,但各樣本物種豐度表現(xiàn)出明顯差異。各曲線上升趨勢已趨于平緩,接近平臺期,說明其高通量測序深度能夠滿足本研究的分析要求。等級豐度曲線可用來解釋多樣性的2個方面,即物種豐度和物種均勻度(見圖3)。本實驗的65 份樣本曲線走勢顯示在橫軸上的范圍和平滑程度均有較大差異,亦說明小鼠樣本間表現(xiàn)出不同的豐度和均勻度。

    三、腸道內(nèi)容物菌群結(jié)構(gòu)組成

    1.在門水平上樣品物種分布情況:基于OTU聚類對V3~V4 區(qū)序列在門水平上的樣品數(shù)據(jù)統(tǒng)計,發(fā)現(xiàn)本實驗所有樣本的序列主要集中在以下8 個門,依次為厚壁菌門(Firmicutes)、擬桿菌門(Bacteroidetes)、變形菌門(Proteobacteria)、疣微菌門(Verrucomicrobia)、放線菌門(Actinobacteria)、Saccharibacteria、軟壁菌門(Tenericutes)和螺旋菌門(Spirochaetae),以厚壁菌門和擬桿菌門為主,除樣本33~36 外,這二類基本占所有菌群門水平的60%以上。樣本33~36 以變形菌門(Proteobacteria)為優(yōu)勢菌群;樣本39、40、47 和52 則以厚壁菌門為優(yōu)勢菌群(見圖4)。

    表2 C57 品系小鼠(11 只)樣品在在97%相似度水平下的Alpha 多樣性

    表3 BALB/c 品系小鼠(11 只)樣品在在97%相似度水平下的Alpha 多樣性

    表4 ICR 品系(15 只)小鼠樣品在在97%相似度水平下的Alpha 多樣性

    表5 C57BL/6 品系(11 只)小鼠樣品在在97%相似度水平下的Alpha 多樣性

    表6 Nu/Nu 和db 品系(6 只)小鼠樣品在在97%相似度水平下的Alpha 多樣性

    表7 其他品系小鼠(8 只)樣品在在97%相似度水平下的Alpha 豐富程度

    圖2 樣品在遺傳距離0.03 下的稀釋曲線

    2.在屬水平上樣本物種分布情況:本組各樣本在屬分類水平上菌群結(jié)構(gòu)組成見圖5。

    圖3 等級豐度曲線

    在ICR 品系小鼠中,樣本33~36 表現(xiàn)為Enterobacteriaceae_unclassified 豐度較高,分別為89.1%、90.3%、89.2%和77.3%,顯著高于其他小鼠的豐度。樣本33~36 中類芽孢桿菌屬(Paenibacillus sp.)豐度分別為9.6%、9.4%、9.6%和21.4%;樣本39 和40 號來自品系C57BL/6,其類芽孢桿菌屬豐度分別為20.8%和33.0%,以上6 個樣本該菌屬豐度顯著高于其他小鼠。同樣,在樣本39 和40 中,狹義梭菌屬(Clostridium_sensu_stricto_1)豐度分別為75.2%和61.0%,亦顯著高于其他小鼠。針對本研究的目的菌屬,樣本39 和40 中葡萄球菌屬(Staphylococcus)的豐度分別為2.3%和2.6%,葡萄球菌屬還存在于其他部分樣本中,其在各樣本中的豐度見表8。

    圖4 樣品在門分類水平上菌群結(jié)構(gòu)組成

    表8 目的菌屬在各品系小鼠不同樣本的豐度

    本研究中其他目的菌屬包括支原體、棒狀桿菌屬和假單胞菌屬在各品系小鼠不同樣本的豐度詳見表8。

    討論

    在機體腸道中,微生物在與宿主共同進化過程中形成了數(shù)量巨大、對宿主有益且必要的腸道正常菌群。這些微生物菌群在系統(tǒng)發(fā)生上顯著不同,而其多樣性是宿主選擇性和菌群共進化、共同作用的結(jié)果,包括厭氧菌、兼性厭氧菌和需氧菌,其中97%以上為專性厭氧菌,且大多分布在結(jié)腸部位。在正常情況下,這些微生物菌群保持著動態(tài)的平衡和穩(wěn)定。分子微生物生態(tài)學(xué)的方法已經(jīng)揭示了未能培養(yǎng)的細菌群體的多樣性[7],最近這些技術(shù)又被用來分析隨著時間變化、腸道不同區(qū)域以及不同個體之間的微生物菌群結(jié)構(gòu)差異[8-9]。高通量測序技術(shù)已被應(yīng)用于多種生態(tài)系統(tǒng)的微生物多樣性研究,如土壤[10-11]、海洋[12]、腸道[13-14]等,其使得人們對一個物種的轉(zhuǎn)錄組和基因組進行細致、全面的分析成為可能,故又被稱為深度測序,是深入研究微生物菌群結(jié)構(gòu)的新手段[15-16]。由于目的菌屬在各樣本中的豐度較低,本研究應(yīng)用Megablast 的方法檢測所有樣本中屬內(nèi)OUT 數(shù)量(見表9)。

    圖5 樣品在屬分類水平上菌群結(jié)構(gòu)組成

    表9 Megablast 方法分析樣本中檢測到目的菌屬的OUT 數(shù)量

    目前,我國 《實驗動物微生物學(xué)等級及監(jiān)測(GB 14922.2-2011)》所推薦的小鼠細菌檢測標(biāo)準(zhǔn)為常規(guī)分離培養(yǎng)結(jié)合生化鑒定法。傳統(tǒng)的研究是通過培養(yǎng)結(jié)合生化鑒定的方法來分析其組成,腸道可培養(yǎng)的常見厭氧菌種屬有擬桿菌、梭菌、雙歧桿菌和乳桿菌;兼性厭氧菌有革蘭陰性腸桿菌(如大腸埃希菌、沙門菌)和革蘭陽性球菌(如腸球菌、葡萄球菌、鏈球菌)。然而,直接進行顯微觀察的結(jié)果發(fā)現(xiàn),大多數(shù)腸道微生物形態(tài)與可培養(yǎng)微生物形態(tài)并不一致,其可能是腸道微生物離開了相應(yīng)的生態(tài)位后死亡而引起。為了避免傳統(tǒng)培養(yǎng)方法的局限,本研究引入了高通量測序技術(shù),分析65 份SPF 級實驗小鼠回盲部腸道內(nèi)容物的細菌物種組成和豐度、Alpha 多樣性和菌群結(jié)構(gòu),基本完成了在屬水平上篩選特定的病原菌,包括葡萄球菌屬、支原體屬、棒狀桿菌屬及假單胞菌屬。

    本研究通過預(yù)實驗和完整實驗,完成了對各步驟反應(yīng)條件的探索和優(yōu)化,包括引物的特異性和擴增條件的選擇以及高通量測序數(shù)據(jù)的處理,結(jié)果能夠使研究人員在需用實驗小鼠作為科研對象時,預(yù)先了解SPF 級實驗小鼠腸道的菌群結(jié)構(gòu)和組成,有助于實驗結(jié)果的分析和重復(fù),尤其是需要大批量的SPF 級實驗小鼠時。本研究為有針對性地設(shè)計篩選實驗動物腸道內(nèi)容物特定病原體實驗提供了一種新方法,并適合大樣本量的篩查(本方法已申請專利,專利號201710924382.0)。在屬水平上,本研究在所有樣本中檢測到了葡萄球菌屬、假單胞菌屬、支原體和棒狀桿菌屬,但豐度均相對較低。經(jīng)高通量測序篩查后,在屬水平上檢測為陽性的樣本,還需要進一步用PCR 檢測來再次確定是否含有特定菌種。目的病原菌中涉及到的鼠棒狀桿菌、牛棒狀桿菌、金黃色葡萄球菌以及銅綠假單胞菌均需在種水平上確定其有或無。本研究還發(fā)現(xiàn),ICR 品系小鼠中樣本33~36 表現(xiàn)為以變形菌門(Proteobacteria)為優(yōu)勢菌群,與之相一致的是在屬水平上Enterobacteriaceae_unclassified 豐度較高,而同樣來源于ICR 品系的小鼠52 號樣本,其腸道內(nèi)容物則以厚壁菌門(Firmicutes)為優(yōu)勢菌群。以上5 個樣本與本實驗中其他ICR 品系小鼠相比較,OTU 聚類在門水平上的樣本序列有明顯差異。由此提示,即使飼養(yǎng)環(huán)境和條件相同,相同品系的SPF 級實驗小鼠腸道菌群在物種組成、豐度及Alpha 多樣性方面也會表現(xiàn)出顯著差異。越來越多的研究已經(jīng)關(guān)注實驗動物腸道微生態(tài)環(huán)境對其所應(yīng)用研究范圍實驗結(jié)果可重復(fù)性的影響。盡管實驗動物的腸道菌群在飼養(yǎng)和管理過程中受諸多因素的影響,由于很難使其標(biāo)準(zhǔn)化,人們?nèi)灾铝τ谘芯扛鞣N方法使實驗動物的腸道菌群在可控和可監(jiān)測范圍內(nèi)[3]。對于SPF 級實驗小鼠的微生物項目的監(jiān)測,本研究建立的方法可以快速提供實驗小鼠的腸道菌群組成、豐度、Alpha 多樣性指數(shù)及種屬篩查結(jié)果,提高實驗動物用于進一步實驗的準(zhǔn)確率和可重復(fù)性,尤其適合較大樣本微生物項目的篩選、監(jiān)測。按照《實驗動物微生物學(xué)等級及監(jiān)測(GB 14922.2-2011)》的微生物檢測項目的要求[17],本研究因初次嘗試,存在諸多條件限制,只檢測了上述國家標(biāo)準(zhǔn)中的部分項目,其余項目會在后續(xù)實驗中展開。

    總之,本研究首次使用高通量測序技術(shù)分析了SPF 級實驗小鼠回盲部腸道內(nèi)容物的菌群結(jié)構(gòu)及組成,為提升實驗動物微生物檢測水平,進一步補充完善我國實驗動物質(zhì)量控制體系提供更精確的研究手段,并為生產(chǎn)高質(zhì)量的SPF 級實驗小鼠提供實驗依據(jù)。

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