康建強,董楊陽,楊 玲,宋 珍,范嘉盈
(1.上海交通大學(xué)醫(yī)學(xué)院附屬新華醫(yī)院老年科,上海 200092;2.上海市虹口四川北路街道社區(qū)衛(wèi)生服務(wù)中心,上海 200080;3.上海交通大學(xué)醫(yī)學(xué)院醫(yī)學(xué)檢驗系,上海 200025)
研究者發(fā)現(xiàn),反復(fù)發(fā)生呼吸道感染的兒童更易患過敏性疾病[1],因此人們開始注意呼吸道定植菌與哮喘的關(guān)系。哥本哈根的研究人員對321 例兒童進行分析,發(fā)現(xiàn)如果在1 個月大的新生兒的呼吸道中存在流感嗜血桿菌、肺炎鏈球菌、卡塔莫拉菌等細菌定植,患兒5 年內(nèi)發(fā)生哮喘的概率會增加,提示細菌等微生物定植是人類發(fā)生慢性呼吸道炎癥的重要環(huán)境易感因素[2]。研究提示,下呼吸道有細菌定植的哮喘患者病情控制差,容易反復(fù)加重[3]。70%的無癥狀和75%的急性喘息型哮喘患者呼吸道中最常見的細菌是流感嗜血桿菌,而僅有33%的正常兒童呼吸道中有此種細菌定植[4]。呼吸道細菌定植和感染在哮喘的發(fā)病和疾病進展中有一定的作用,但其機制目前尚不明確[5]。細胞表面的Toll 樣受體4(toll-like receptor 4,TLR4)對于細菌引起的核因子κB(nuclear factor κB,NF-κB)的活化和炎癥因子的分泌非常關(guān)鍵[6]。腫瘤壞死因子α(tumor necrosis factor α,TNF-α)是哮喘炎癥中的重要啟動因子,NF-κB 和髓樣分化因子88(myeloid differentiation factor 88,MyD88)是主要的炎癥信號通路。因此,本研究采用C57/B6 野生型小鼠作為實驗動物,用卵清蛋白(ovalbumin,OVA)制備哮喘模型,在氣管內(nèi)注入瓊脂包被的流感嗜血桿菌菌珠,制作細菌定植模型,在注菌后的第7、21 天處死小鼠,檢測血清中TNF-α 的含量、肺組織中NF-κB 和MyD88 的表達,并與TLR4-/-小鼠作比較,進一步討論細菌定植與哮喘氣道炎癥間的關(guān)系及其信號通路。
64 只C57/B6 小鼠購自上海交通大學(xué)醫(yī)學(xué)院附屬新華醫(yī)院實驗動物中心,64 只TLR4-/-小鼠購自南京大學(xué)南京生物醫(yī)藥研究院,6~8 周齡,體質(zhì)量為(20±2)g。
1.實驗分組:C57/B6 小鼠64 只,隨機分為2 組,分別為對照組(N 組)和哮喘組(A 組),每組32 只。N 組小鼠隨機分為4 組,每組8 只,為NC7組(正常對照組第7 天)、NS7組(注流感嗜血桿菌后第7天),NC21組(正常對照組第21 天)、NS21組(注流感嗜血桿菌后第21 天);A 組隨機分為4 組,每組8 只,為AC7組(哮喘組第7 天)、AS7(哮喘注流感嗜血桿菌后第7 天)、AC21組(哮喘組第21 天),AS21(哮喘注流感嗜血桿菌后第21 天)。64 只TLR4-/-小鼠處理及分組同上。
2.模型制作:①哮喘模型,A 組小鼠用OVA 制作哮喘模型,N 組用0.9%NaCl 溶液代替。②瓊脂包被的細菌懸液的制作,參考文獻[7-8]瓊脂包被流感嗜血桿菌,制作成細菌懸液,用肉湯調(diào)節(jié)濃度至108cfu/mL。③注菌,在哮喘造模的第38 天,往小鼠氣管注入0.02 mL 細菌懸液,對照組注入無菌瓊脂顆粒。注菌后第7、21 天取標(biāo)本。
3.支氣管肺泡灌洗液(bronchoalveolar lavage fluid,BALF)細胞計數(shù):收集肺泡灌洗液,進行Wright′s(瑞氏)染色后,計細胞數(shù)。
4.炎癥因子檢測:注菌后第7 和21 天,從小鼠心臟取血1 mL 左右,行1 500 r/min 離心15 min,取上清液,進行酶聯(lián)免疫吸附試驗(enzyme-linked immunosorbent assay,ELISA)測定炎癥因子TNF-α。
5.肺組織中MyD88、NF-κB 水平檢測:制作小鼠肺組織石蠟切片,采用免疫組織化學(xué)(免疫組化)二步法測定其中的MyD88、NF-κB水平。
6.統(tǒng)計學(xué)處理:應(yīng)用SPSS 19.0 軟件進行數(shù)據(jù)分析,定量資料采用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,多組間均數(shù)比較采用單因素方差分析。以P<0.05 為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
本研究中小鼠哮喘模型制模成功率為100%,無死亡小鼠。
BALF 中細胞總數(shù)計數(shù)結(jié)果顯示,與同時間組、同種小鼠NC 組相比,NS、AC、AS 各組均明顯增高(P<0.05);與同種小鼠AC7組相比,第7 天的AS 組BALF 細胞總數(shù)顯著增高(P<0.05);與C57/B6 組相比,同時間(第7 天、第21 天)TLR4-/-的NS 組BALF 中細胞總數(shù)計數(shù)顯著降低(P<0.05);TLR4-/-的AS7組也較同時間段C57/B6 小鼠BALF 中細胞總數(shù)計數(shù)降低(P<0.05)(見表1)。
與注射0.9%NaCl 組(NC7及NC21)、流感嗜血桿菌呼吸道定植組(NS7和NS21)相比,C57/B6 及TLR4-/-流感定植哮喘小鼠組(AS7和AS21)TNF-α 含量增加(P<0.05);與C57/B6 AS 組相比,各對應(yīng)時間TLR4-/-的AS 組TNF-α 含量顯著減少(P<0.01)(見表2)。
MyD88 所占同一視野的細胞百分比的結(jié)果顯示,注菌后第7 天,與C57/B6 的NC7組相比,C57/B6 組的NS7組、AC7組和AS7組MyD88 表達量均顯著增高(P<0.05);與TLR4-/-組的NC7組相比,TLR4-/-組的NS7組MyD88 表達量顯著增高(P<0.05);與同種小鼠的AC7組相比,C57/B6 和TLR4-/-組的AS7組MyD88 表達量顯著增高(P<0.05);與C57/B6 的AS7相比,TLR4-/-組的AS7組MyD88 表達量相對降低(P<0.05)。注菌后第21 天,與NC21組相比,C57/B6 組NS21組(P<0.05)和AS21組(P<0.01)MyD88 表達量顯著增高;與同種小鼠的AC21組相比,C57/B6 組的AS21組MyD88 表達量顯著增高(P<0.05);與C57/B6 組的AC21組和AS21組相比,TLR4-/-組的AC21組和AS21組MyD88表達量相對降低(P<0.05)。
NF-κB 所占同一視野的細胞百分比的結(jié)果顯示,注菌后第7 天,與C57/B6 的NC7組相比,C57/B6 組中的NS7組、AS7組NF-κB 表達量顯著增加(P<0.05),與TLR4-/-的NC7組相比,TLR4-/-組的NS7組、AC7組、AS7組NF-κB 表達量顯著增加(P<0.05);與C57/B6 的AC7組相比,C57/B6 組的AS7組的NF-κB 表達量顯著增加(P<0.05);TLR4-/-組中AS7組NF-κB 表達量顯著低于C57/B6 組中AS7組(P<0.05)。注菌后第21 天,與C57/B6 的NC21組相比,C57/B6 組的NS21組、AC21組、AS21組NF-κB 表達量顯著增加(P<0.05),與TLR4-/-組的NC21組相比,NS21組、AC21組、AS21組的NF-κB 表達量顯著增加(P<0.05);C57/B6 的AS21組的NF-κB 表達量顯著高于AC21組(P<0.05);TLR4-/-組的NS21組、AS21組NF-κB 表達量顯著低于C57/B6 組的相同時間對應(yīng)組(P<0.05)。
表1 BALF 中細胞總數(shù)計數(shù)(±s)
表1 BALF 中細胞總數(shù)計數(shù)(±s)
a):與NC 組(同時間段、同種小鼠)比較,P<0.05;b):與AC 組(同時間段、同種小鼠)比較,P<0.05;c):表示與同時間段C57/B6 組比較,P<0.05
表2 血清TNF-α 含量(pg/mL,±s)
表2 血清TNF-α 含量(pg/mL,±s)
a):表示與NC 組(同時間段、同種小鼠)比較,P<0.05;b):表示與AC 組(同時間段、同種小鼠)比較,P<0.05;c):表示與同時間段TLR4-/-組比較,P<0.01
圖1 C57/B6 組和TLR4-/-組在菌第7 天肺組織MyD88 免疫組化染色結(jié)果(二步法,×400)
圖2 C57/B6 組和TLR4-/-組在第21 天肺組織MyD88 免疫組化染色結(jié)果(二步法,×400)
圖3 C57/B6 組和TLR4-/-組在第7 天(A)和第21 天(B)肺組織MyD88 表達量的比較
圖4 C57/B6 組和TLR4-/-組在第7 天肺組織NF-κB 免疫組化染色結(jié)果(二步法,×400)
圖5 C57/B6 組和TLR4-/-組在第21 天肺組織NF-κB 免疫組化染色結(jié)果(二步法,×400)
圖6 C57/B6 組和TLR4-/-組在第7 天(A)和第21 天(B)肺組織中NF-κB 表達量的比較
有研究對662 例哮喘兒童的呼吸道定植菌進行定量分析,發(fā)現(xiàn)流感嗜血桿菌、卡塔莫拉菌的定植引起Th1、Th2、Th17 細胞增多,從而引起白細胞介素1β、TNF-α 的高水平表達[9]??梢娂毦ㄖ才cTh 細胞的產(chǎn)生及炎癥因子的表達間存在著重要聯(lián)系,可能與哮喘的發(fā)生息息相關(guān)。
TLR 通過識別病原體相關(guān)分子模式(pathogen associated molecular patterns,PAMPs)來發(fā)揮作用,激活免疫應(yīng)答,引起各種呼吸道炎癥疾病,如哮喘[10]。研究證明,TLR2 和TLR4 在肺組織中的表達均與哮喘相關(guān)[11-13]。經(jīng)典的PAMPs 來自革蘭陰性細菌的脂多糖。脂多糖觸發(fā)TLR4,啟動細胞內(nèi)部信號通路[14],通過MyD88 發(fā)出反應(yīng)信號[15],肺組織主要病原體均通過MyD88 介導(dǎo)信號的表達[16]。一項關(guān)于肺損傷的研究中發(fā)現(xiàn),TLR4 通過激活Myd88/NFκB 途徑引起肺損傷[17]。研究表明,脂多糖可激活TLR4,通過TLR4-MyD88-P65 介導(dǎo)炎癥反應(yīng)[6,18]。
本研究通過免疫組化檢測發(fā)現(xiàn),C57/B6 組的NS 組和AS 組在第7、21 天與各自對照組(對應(yīng)時間的NC 和AC 組)相比,MyD88 表達量均顯著增加,提示氣道注入流感嗜血桿菌后,肺組織的MyD88 表達量有所增加;而TLR4-/-組的AS 組與相應(yīng)的時間的AC 組相比,MyD88 表達量的增加沒有統(tǒng)計學(xué)意義,且與C57/B6 組的相同時間的AS 組相比,MyD88 表達量相對降低,提示在哮喘合并流感嗜血桿菌定植的時候,流感嗜血桿菌可能通過菌壁中的脂多糖激活TLR4,從而啟動了MyD88 依賴性途徑。但值得注意的是,TLR4-/-組的NS 組在注菌后第7 天時MyD88 表達量也顯著增加,但第21 天的增加沒有統(tǒng)計學(xué)意義,這可能是流感嗜血桿菌在不需要TLR4 介導(dǎo)的情況下,也能使部分MyD88 的表達增加,啟動信號通路,其具體機制目前尚不清楚,推測是注入的細菌改變了氣道微生物的群體環(huán)境。
本研究通過免疫組化檢測各組的NF-κB 發(fā)現(xiàn),C57/B6 小鼠的注菌各組與NC 組(包括第7 天和第21天)相比,NF-κB 均高表達,說明流感嗜血桿菌在氣道的感染會增加NF-κB 的表達,此外,小鼠患哮喘之后肺組織也會增加NF-κB 的表達。本研究發(fā)現(xiàn)在第7、21 天的AS 組和第21 天的NS 組,TLR4-/-的NF-κB 的表達量分別與相應(yīng)時間的C57/B6 組的AS、NS 組相比,相對減少,這說明哮喘合并流感嗜血桿菌氣道定植后,可能由于TLR4 的激活導(dǎo)致NF-κB 轉(zhuǎn)錄因子活化,從而介導(dǎo)炎癥的放大。但是研究也顯示,TLR4-/-組的各組注菌以及哮喘造模后肺組織也有NF-κB 的表達增加,這也提示雖然TLR4 參與了哮喘合并流感嗜血桿菌定植后NF-κB表達增加的過程,但NF-κB 表達的增加并不完全依賴于TLR4 的激活。
本研究檢測了小鼠BALF 中的細胞總數(shù),結(jié)果顯示,注菌第7 天時,C57/B6 組和TLR4-/-組的AS7組BALF 細胞總數(shù)遠高于同種小鼠其他各組,反映了當(dāng)哮喘合并流感嗜血桿菌定植后促進了炎癥的發(fā)生、發(fā)展,而TLR4-/-組在注菌后與C57/B6 注菌對應(yīng)組相比,BALF 細胞總數(shù)減少,說明TLR4 參與了細菌促進炎癥的過程。第21 天時,C57/B6 組和TLR4-/-組的AS 組BALF 細胞總數(shù)依舊高于他同種小鼠其各組,說明細菌定植之后促使炎癥反應(yīng)的效果持續(xù)存在。
TNF-α 是哮喘炎癥中的重要啟動因子,其升高會引起炎癥介質(zhì)的瀑布樣連鎖反應(yīng),增加炎癥細胞對氣道的浸潤,使氣道上皮細胞脫落,導(dǎo)致氣道高反應(yīng),誘發(fā)和加重哮喘[19-20]。研究表明,TNF-α 的水平在哮喘急性發(fā)作期患者的痰及BALF 中顯著高于緩解期及健康對照組,其在重度哮喘患者中的水平顯著高于輕度哮喘患者[21]。由上文可知,流感嗜血桿菌的感染和定植可以介導(dǎo)炎癥的發(fā)展,本研究發(fā)現(xiàn),C57/B6 組和TLR4-/-組其第7、21 天的AS 組BALF 中的TNF-α 均遠高于其他各組,且相較于C57/B6 組,同時間的TLR4-/-各組TNF-α 含量減少,證實哮喘合并流感嗜血桿菌定植促進了炎癥的發(fā)展,且TLR4 參與了這個過程。
總之,哮喘合并流感嗜血桿菌的定植對氣道炎癥和氣道重塑有重要的作用,流感嗜血桿菌不僅通過菌體本身損害氣道黏膜,也可能通過菌壁的脂多糖成分激活TLR4,通過TLR4-MyD88-NF-κB 途徑導(dǎo)致氣道炎癥的加重,進一步影響哮喘的發(fā)生、發(fā)展。