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    低溫環(huán)境下秸稈降解菌的篩選與性能檢測(cè)*

    2020-03-10 12:00:16張國(guó)盛顏婉茹陳春亮李掌印李亞男何新超
    化學(xué)工程師 2020年1期
    關(guān)鍵詞:剛果紅濾紙水解

    張國(guó)盛,顏婉茹,陳春亮,李掌印,李亞男,何新超

    (哈爾濱理工大學(xué),黑龍江 哈爾濱 150040)

    秸稈是我國(guó)東北地區(qū)農(nóng)田中隨處可見(jiàn)的廢棄物,據(jù)有關(guān)調(diào)查數(shù)據(jù)顯示,2017年我國(guó)秸稈理論資源量為8.84億t,2018年秸稈理論資源量預(yù)計(jì)達(dá)8.86億t左右。黑、吉、遼三省作為我國(guó)糧食主產(chǎn)地年秸稈資源量較大,而常見(jiàn)的露天焚燒等原始處理方法不但造成資源浪費(fèi),更會(huì)引發(fā)空氣污染、火災(zāi)等嚴(yán)重后果。秸稈堆腐還田技術(shù)在我國(guó)南方等地早有應(yīng)用,但由于東北地區(qū)冬季寒冷,此項(xiàng)技術(shù)一直無(wú)法開(kāi)展[1]。

    本研究以農(nóng)田廢棄的秸稈為主要原料,進(jìn)行了低溫環(huán)境下秸稈降解菌的篩選與特性研究,以期為低溫下農(nóng)田廢棄物的有效治理提供幫助。

    1 實(shí)驗(yàn)部分

    1.1 材料與方法

    1.1.1 菌落及樣品來(lái)源 取樣地址位于哈爾濱市平房區(qū)某玉米農(nóng)田,室外平均溫度為10℃,取玉米根部5~8cm處濕潤(rùn)土壤1000g,經(jīng)浸泡、富集、篩選、馴化,得到所需的低溫纖維素降解菌,并對(duì)其肥力進(jìn)行檢測(cè)。秸稈廢棄物樣品來(lái)源為玉米田收獲后殘余秸稈。

    1.1.2 培養(yǎng)基 富集液體培養(yǎng)基:蛋白胨5g,K2HPO40.5g,Na2CO32.5g,MgSO4·7H2O 0.05g,F(xiàn)eSO4·7H2O 0.008g,MnSO40.025g,酵母膏 5g,定容至 500mL,調(diào)pH值為6.0;

    初篩(剛果紅)培養(yǎng)基:CMC-Na 5g,(NH4)2SO40.5g,MgSO4·7H2O 0.125g,KH2PO20.25g,NaCl 0.125g,剛果紅 0.05g,瓊脂 5g,,定容至250mL,調(diào)pH 值為7.2;

    復(fù)篩(濾紙條崩解)培養(yǎng)基:(NH4)2SO41g,Mg-SO4·7H2O 0.5g,KH2PO41g,酵母膏 0.1g,定容至1000mL;

    羧甲基纖維素鈉培養(yǎng)基(g·L-1):CMC-Na 15g,NaCl 5g,KH2PO41g,MgSO40.2g,蛋白胨 10g,酵母粉 5g,瓊脂 18g,調(diào)pH 值為 7.2;

    LB固體培養(yǎng)基:蛋白胨10g,酵母5g,NaCl 10g,pH值為7.0,定容至1L,再加入15g瓊脂。

    淀粉培養(yǎng)基:可溶性淀粉2g,蛋白胨10g,牛肉膏 5g,NaCl 5g,瓊脂 20g,定容至 1L。

    1.1.3 試劑

    0.1 mol·L-1HAc-NaAc緩沖溶液(pH 值為4.6):將 49.0mL 0.2mol·L-1NaAc 溶液和 51.0mL 0.2mol·L-1HAc溶液混合后定容至100mL。

    3,5-二硝基水楊酸(DNS)試劑:稱(chēng)取 6.3g 3,5-二硝基水楊酸用水溶解,加入21g NaOH,182g酒石酸鉀鈉,加水500mL,加熱溶解后再加入5.0g重蒸酚和5.0g NaNO2,攪拌溶解,冷卻,定容至1000mL,存于棕色瓶中,放置7d后使用。

    葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)溶液(1.0mg·mL-1):稱(chēng)取 1.000g 葡萄糖(AR)(105℃干燥至恒重)用蒸餾水溶解后定容至1000mL,冰箱保存?zhèn)溆谩?/p>

    羧甲基纖維素溶液:稱(chēng)2.0g CMC-Na溶于200mL蒸餾水中,加HAc緩沖溶液100mL,混合均勻后存于冰箱內(nèi)備用,配后隔天使用。

    HAc-NaAc 緩沖溶液:將 49.0mL 0.2mol·L-1醋酸鈉溶液和51.0mL 0.2mol·L-1醋酸溶液混合后定容至1L。

    1.2 實(shí)驗(yàn)方法

    1.2.1 秸稈降解菌的篩選馴化 將所取土樣均分成4份,每份各60g于1000mL燒杯中加入蒸餾水,NaCl 1g,牛肉膏1g,蛋白胨2g于20℃下培養(yǎng)1d。取出后曝氣30min,同樣溫度培養(yǎng)1d。加入富集培養(yǎng)基90mL,在15℃的溫度下培養(yǎng)2d,兩天后降溫至10℃,繼續(xù)培養(yǎng) 3d,再升溫 15、20℃各培養(yǎng) 2d,溫度升降反復(fù)循環(huán)2次,馴化期間保證富集培養(yǎng)基量不少于90mL。

    采用稀釋法將富集培養(yǎng)液接種于CMC培養(yǎng)基平板上,每個(gè)梯度設(shè)置3個(gè)平等樣,放入10℃的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)并記錄各平板菌株生長(zhǎng)狀況,反復(fù)使用平板劃線法分離純化后,從中篩選出長(zhǎng)勢(shì)較好的39株纖維素降解菌。

    1.2.2 剛果紅初篩 將分離純化后的每個(gè)菌株接種于剛果紅培養(yǎng)基平板,培養(yǎng)3d。測(cè)量各菌株菌落直徑(d)及其產(chǎn)生的透明圈直徑(D)大小,以D/d值作為判斷依據(jù),進(jìn)行初篩,留下D/d值較大菌株進(jìn)一步研究[1]。最終選擇7株菌進(jìn)行復(fù)篩及其他秸稈降解效果測(cè)定。

    1.2.3 濾紙條復(fù)篩 將上述實(shí)驗(yàn)中效果較好的7株菌株分別接種至加入新華濾紙條的崩解培養(yǎng)基中,以不接種菌只加濾紙條的崩解培養(yǎng)基作為對(duì)照,15℃培養(yǎng)2周,觀察濾紙條的潰爛和崩解情況,根據(jù)濾紙條的降解重量來(lái)判斷菌株降解纖維素能力的強(qiáng)弱[2]。

    1.2.4 秸稈降解效果測(cè)定 準(zhǔn)確稱(chēng)取質(zhì)量為10g的玉米秸稈,將其粉碎,向其中加入20mL無(wú)機(jī)鹽營(yíng)養(yǎng)液,并攪拌均勻,將其平鋪于淺盤(pán)中,向其中接種0.3%的菌液48mL,蓋上濕布,恒溫20℃培養(yǎng)15d,期間保持蓋布濕潤(rùn)。15d后將殘留物置于105℃烘箱中烘干至恒重,并稱(chēng)量其的質(zhì)量,按下面公式計(jì)算其秸稈降解率。

    1.2.5 生化特性測(cè)定實(shí)驗(yàn)

    1.2.5.1 淀粉水解能力測(cè)定 在以2%可溶性淀粉為唯一碳源的淀粉培養(yǎng)基上分別接種7株菌株,置于15℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)72h。在平板上滴入碘液,根據(jù)水解圈的有無(wú)與大小,初篩淀粉酶產(chǎn)生菌。通過(guò)計(jì)算水解圈面積與接種菌落面積之比,判斷淀粉酶降解能力。

    1.2.5.2 濾紙條酶活能力測(cè)定

    (1)標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制 取25mL具塞刻度試管6支,加入1.0mg·mL-1的葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)溶液0.0、0.4、0.8、1.2、1.6、2.0mL,加蒸餾水 2.0、1.6、1.2、0.8、0.4、0.0mL,加DNS試劑1.5mL,混勻后在沸水浴中加熱5min,取出立即用冷水冷卻,定容至25mL,搖勻,測(cè)吸光度A,以吸光度為縱坐標(biāo),葡萄糖含量為橫坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。

    (2)待測(cè)酶液制備 將酶液倒入離心試管中,離心5min,用移液槍吸取1mL上清液移至比色管中。

    (3)準(zhǔn)備 待用濾紙放入干燥器中平衡24h;將平衡后的濾紙制成寬1cm、質(zhì)量為(50±5)mg的濾紙條,折成M備用。

    (4)測(cè)定 取0.5mL稀釋酶液,加入HAc-NaAc緩沖溶液1mL。再加入折好濾紙于50℃保溫酶解反應(yīng)1h。再加入DNS顯色劑3mL,放入沸水浴中10min,流水冷卻后,在540nm波長(zhǎng)下測(cè)吸光度。同時(shí)用100℃煮沸10min后失活的酶液作對(duì)比,扣除本底值[3]。

    1.2.5.3 CMC酶活能力測(cè)定

    (1)標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制 繪制方法如1.2.5.2(1)。

    (2)待測(cè)酶液制備 制備方法如1.2.5.2(2)。

    (3)測(cè)定 取1.5mL CMC-Na溶液與0.5mL適當(dāng)稀釋的酶液于25mL試管中,40℃水浴保溫30min后即加1.5mL DNS顯色劑,沸水煮沸5min,取出即冷卻,定容至25mL,在540mm波長(zhǎng)下測(cè)吸光度。

    2 結(jié)果與討論

    2.1 秸稈降解菌的篩選

    2.1.1 秸稈降解菌的初篩 經(jīng)過(guò)土壤富集及CMC培養(yǎng)基篩選后,篩選出7株降解纖維素的細(xì)菌,并將這些菌株進(jìn)一步培養(yǎng)觀察,在CMC培養(yǎng)基上的菌落形態(tài)見(jiàn)圖1。

    圖1 在CMC培養(yǎng)基上的菌落形態(tài)Fig.1 Olony morphology on CMC medium

    在15℃下,剛果紅培養(yǎng)基中培養(yǎng)48h后測(cè)定水解圈直徑和菌落直徑,照片見(jiàn)圖2,數(shù)據(jù)見(jiàn)表1。

    圖2 在剛果紅培養(yǎng)基上的水解圈Fig.2 Hydrolysis circle on Congo red medium

    表1 纖維素-剛果紅水解實(shí)驗(yàn)Tab.1 Hydrolysis experiment of cellulose Congo red

    由圖1,2可見(jiàn),7株菌均能在剛果紅培養(yǎng)基中的進(jìn)行水解,水解程度不同,水解圈大小不同,由水解圈的直徑與菌落的直徑的比值,可表明該菌株對(duì)纖維素降解能力的強(qiáng)弱。實(shí)驗(yàn)表明,7株菌在低溫下都能利用纖維素為唯一碳源生長(zhǎng),其中1#的菌株產(chǎn)生的水解圈直徑與菌落直徑的比值最大,顯示出其對(duì)纖維素降解效果最為明顯,其次為7#菌株。

    2.1.2 秸稈降解菌的復(fù)篩 利用濾紙條崩解培養(yǎng)基在15℃下培養(yǎng)2周,觀察濾紙崩解情況,濾紙崩解實(shí)驗(yàn)前后對(duì)比見(jiàn)圖3,并記錄濾紙前后重量。表2為濾紙條崩解實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)。

    圖3 濾紙崩解實(shí)驗(yàn)前后對(duì)比Fig.3 Comparison of filter paper disintegration experiments

    表2 濾紙條崩解實(shí)驗(yàn)Tab.2 Disintegration test of filter strip

    結(jié)果顯示,濾紙崩解實(shí)驗(yàn)2周后,各供試濾紙均有5%以上的失重率,其中5#和7#試樣菌株降解前后濾紙質(zhì)量變化最大,達(dá)到14%以上的失重率,其次是6#和3#試樣,失重率達(dá)10%以上。

    2.2 秸稈降解效果測(cè)定

    以農(nóng)田秸稈粉碎物為樣品,進(jìn)行秸稈低溫條件下降解實(shí)驗(yàn),來(lái)測(cè)定各菌株其對(duì)秸稈的降解能力。

    表3 秸稈降解效果測(cè)定Tab.3 Determination of straw degradation effect

    實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,各菌株在低溫條件下,對(duì)秸稈均有一定的降解能力,反應(yīng)15d后,7#菌和1#菌的降解率都在4%以上,其次是4#菌。

    2.3 生化特性的測(cè)定

    2.3.1 淀粉水解能力測(cè)定 淀粉有遇碘變藍(lán)的特性,在淀粉為唯一碳源的培養(yǎng)基中滴入碘液可使培養(yǎng)基變色。而具有淀粉降解能力的細(xì)菌在分解淀粉時(shí)會(huì)產(chǎn)生葡萄糖或者是麥芽糖,破壞掉淀粉的結(jié)構(gòu),形成水解圈,淀粉被水解,此時(shí)滴入碘液后則不變色。菌株對(duì)淀粉的分解能力越強(qiáng),水解圈越大,所以可通過(guò)水解圈D與菌落直徑d的比值來(lái)確定細(xì)菌對(duì)淀粉的水解能力的大小。

    表4 淀粉水解能力的測(cè)定結(jié)果Tab.4 Determination results of starch hydrolysis ability

    實(shí)驗(yàn)表明,篩選出的7株菌對(duì)淀粉均有一定的降解能力,其中7#菌的菌落的淀粉降解能力遠(yuǎn)遠(yuǎn)要大于其他菌落,其次是4#菌、1#菌和2#菌。

    2.3.2 濾紙條酶活能力測(cè)定 分別對(duì)在15和30℃下培養(yǎng)的菌液進(jìn)行濾紙條酶活測(cè)定,結(jié)果見(jiàn)表5。

    表5 濾紙條酶活能力測(cè)定Tab.5 Determination of enzyme activity of filter paper

    實(shí)驗(yàn)表明,7株菌在15和30℃下,均具有濾紙酶活,且在15℃下酶的活性明顯高于30℃下酶的活性,顯示出良好的低溫特性。其中,1#菌、5#菌在15和30℃條件下酶的活性好于其它菌株,4#菌、7#菌在15℃時(shí)酶的活性也比較好。

    2.3.3 CMC酶活能力測(cè)定 采用DNS法分別對(duì)在15和30℃下培養(yǎng)的7株菌液進(jìn)行CMC酶活測(cè)定。

    表6 CMC酶活測(cè)定Tab.6 CMC enzyme activity determination

    測(cè)定結(jié)果表明,7株菌在15和30℃下,均有CMC酶活,且在15℃下酶的活性明顯高于30℃下酶的活性,顯示出良好的低溫特性。2#菌在15℃下對(duì)羧甲基纖維素的降解效果更為突出,為23U·mL-1,30℃最大值為 2#菌株的 0.13U·mL-1。

    3 結(jié)論

    本研究根據(jù)東北地區(qū)春、秋、冬季節(jié)寒冷的特點(diǎn),在低溫條件下,經(jīng)過(guò)馴化和富集,剛果紅培養(yǎng)基初步篩選得到低溫秸稈降解菌7株。利用濾紙條復(fù)篩,通過(guò)計(jì)算失重率得知5#和7#菌株降解纖維素能力最強(qiáng)。在秸稈降解效果測(cè)試實(shí)驗(yàn)中,5#和7#菌株降解秸稈的效果相比之下也最為明顯。

    對(duì)篩選出來(lái)的7株菌株進(jìn)行了生化特性的測(cè)定。淀粉水解能力最強(qiáng)的是7#菌株,D/d為15,遠(yuǎn)遠(yuǎn)大于其他菌株。在濾紙條酶活和CMC酶活實(shí)驗(yàn)中,7株菌在15℃下酶的活性明顯高于30℃下酶的活性,顯示了它們顯著的低溫菌的特性。

    在實(shí)際的秸稈降解過(guò)程中,更多的是多種菌的協(xié)同作用,所以需要進(jìn)一步進(jìn)行混合菌群的實(shí)效研究,來(lái)提高秸稈類(lèi)農(nóng)田廢棄物的降解效率。

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