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    超聲波誘變對(duì)猴頭菇粗多糖的影響

    2020-03-02 03:47:04張帥程昊邱彩霞陳賢如
    食品與發(fā)酵工業(yè) 2020年2期

    張帥,程昊,邱彩霞,陳賢如

    1(肇慶學(xué)院 食品與制藥工程學(xué)院,廣東 肇慶,526601) 2(廣西科技大學(xué) 生物與化學(xué)工程學(xué)院,廣西糖資源綠色加工重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,廣西 柳州,545006) 3(蔗糖產(chǎn)業(yè)省部共建協(xié)同創(chuàng)新中心,廣西 南寧,530004)

    猴頭菇(Hericiumerinaceus)是一種珍貴的食藥兩用的大型食用菌,富含多糖、蛋白質(zhì)、維生素及微量元素等多種營(yíng)養(yǎng)和功效成分[1-3],尤其是猴頭菇多糖因具有較強(qiáng)的抗氧化、抑菌、增強(qiáng)免疫力、抗疲勞等多種生理活性而常用于保健食品的研發(fā)[4-5]。提高食用菌中多糖的含量及活性成為當(dāng)前食用菌領(lǐng)域研究的重點(diǎn)和熱點(diǎn),菌種誘變技術(shù)或許是解決這一問題的一種有效方法。目前關(guān)于猴頭菇誘變方法的報(bào)道較多,如紫外線、60Co-γ射線、離子束注入及交變磁場(chǎng)誘變等[6-10],但采用超聲波誘變猴頭菇尚未見報(bào)道。

    超聲波誘變的原理是通過超聲波的機(jī)械作用、熱作用、空化作用產(chǎn)生的高溫高壓來破壞微生物細(xì)胞壁結(jié)構(gòu)并引起組織細(xì)胞內(nèi)物質(zhì)運(yùn)動(dòng),從而使DNA突變率增加。超聲波穿透性好,誘導(dǎo)時(shí)不用開蓋誘導(dǎo),這樣可減少微生物污染的幾率。同時(shí),超聲波誘變法操作簡(jiǎn)單,安全性高,經(jīng)濟(jì)實(shí)惠,一般實(shí)驗(yàn)室條件都可達(dá)到[11-14]。本研究通過對(duì)猴頭菇超聲波誘變處理,考察了超聲波誘變對(duì)猴頭菇粗多糖含量及其抑菌效果的影響,不僅為提高猴頭菇粗多糖含量和抑菌活性提供了一種簡(jiǎn)單可行的方法,而且為其他食用菌中粗多糖等活性成分的提高提供了方法借鑒,這對(duì)于食用菌行業(yè)的發(fā)展以及食用菌產(chǎn)品的深加工具有重要意義。

    1 材料與方法

    1.1 菌種和培養(yǎng)基

    猴頭菇菌種,本學(xué)院食品微生物實(shí)驗(yàn)室試管保藏;PDA培養(yǎng)基,購(gòu)自廣東環(huán)凱微生物科技有限公司,依說明書配好后分裝試管和平面皿,滅菌后做成PDA斜面和PDA平板若干,冷藏備用。

    液體種子培養(yǎng)基組成:可溶性淀粉5%、蔗糖1%、KH2PO40.3%、Mg2SO4·7H2O 0.15%、酵母膏0.1%,pH 6.0。液體發(fā)酵培養(yǎng)基組成:葡萄糖2.2%、麩皮1%、KH2PO40.5%、MgSO4·7H2O 0.1%、酵母膏0.05%、蛋白胨0.02%。原種培養(yǎng)基組成:棉籽殼75%、木屑10%、麩皮13%、蔗糖1%、石膏1%。栽培培養(yǎng)基組成:棉籽殼45%、木屑41%、麩皮12%、蔗糖1%、石膏1%。細(xì)菌固體培養(yǎng)基組成:牛肉膏0.3%、蛋白胨0.5%、NaCl 0.5%、瓊脂2%。細(xì)菌液體培養(yǎng)基組成:除不加瓊脂外,其他同細(xì)菌固體培養(yǎng)基。上述培養(yǎng)基中所有百分?jǐn)?shù)均為質(zhì)量百分比。

    1.2 主要儀器設(shè)備

    YQ-120B型超聲波清洗機(jī),上海易凈超聲波儀器有限公司;DGX-9143 B-1電熱恒溫鼓風(fēng)干燥箱:上海?,攲?shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司;UV-1240紫外分光光度計(jì),島津企業(yè)管理(中國(guó))有限公司;HH-6數(shù)顯恒溫水浴箱,江蘇金壇市環(huán)宇科學(xué)儀器廠;XB-10B高速多功能粉碎機(jī),東莞市隆鑫機(jī)電設(shè)備有限公司。

    1.3 方法

    1.3.1 猴頭菇菌懸液制備

    取PDA斜面保藏的猴頭菇菌種,用無菌接種鏟取一塊約0.5 cm2接入到10 mL液體種子培養(yǎng)基中,于25℃培養(yǎng)3 d,即得猴頭菇菌懸液。

    1.3.2 猴頭菇超聲波誘變

    將猴頭菇菌懸液稀釋至106CFU/mL,取若干試管分別裝入10 mL稀釋后的菌懸液,置于40 kHz、300 W超聲波清洗機(jī)中進(jìn)行誘導(dǎo),分組誘導(dǎo)2、4、6、8、10 min,各平行3次。每支試管各取0.1 mL稀釋液涂于不同PDA平板中,25oC培養(yǎng)7 d。以未超聲誘變處理的猴頭菇菌懸液為對(duì)照組,計(jì)算致死率,見公式(1):

    (1)

    1.3.3 猴頭菇變異菌株初篩

    從致死率為70%~95%的平板中, 挑取各平板萌發(fā)最早、生長(zhǎng)最旺盛的菌落,轉(zhuǎn)接到PDA斜面中,作為猴頭菇變異菌株。待PDA斜面長(zhǎng)滿菌絲體后,接到PDA平板中,25 ℃培養(yǎng)7 d。根據(jù)對(duì)猴頭菇菌絲體的生長(zhǎng)勢(shì)、菌絲密度、菌絲色澤、邊緣整齊度的評(píng)分,選出總分比原始菌株高的變異菌株。

    1.3.4 猴頭菇變異菌株復(fù)篩

    原始菌株與經(jīng)1.3.3挑選出的猴頭菇變異菌株,分別接入液體種子培養(yǎng)基進(jìn)行培養(yǎng),25 ℃培養(yǎng)3 d后,分別取15 mL接入200 mL液體發(fā)酵培養(yǎng)基中,25 ℃培養(yǎng)15 d,得猴頭菇發(fā)酵液。通過測(cè)定猴頭菇發(fā)酵液中菌絲體的生物量和粗多糖含量,篩選出生物量最大、粗多糖含量最高的猴頭菇變異菌株。

    1.3.4.1 猴頭菇菌絲體生物量測(cè)定

    將猴頭菇發(fā)酵液于離心機(jī)中4 000 r/min離心10 min,取沉淀猴頭菇菌絲體,洗滌3次后于65 ℃烘干至恒重,計(jì)算猴頭菇發(fā)酵液中菌絲體的生物量,見公式(2):

    (2)

    1.3.4.2 葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線的建立

    精確稱取干燥恒重的葡萄糖0.1 g,用蒸餾水定容于100 mL容量瓶中,然后吸取10 mL再定容于100 mL容量瓶,得到0.1 mg/mL的標(biāo)準(zhǔn)葡萄糖溶液。采用苯酚-硫酸法[15],按表1完成操作后,搖勻放置5 min,置沸水浴中加熱15 min,然后冷卻至室溫,于490 nm 波長(zhǎng)處測(cè)定吸光度。最終建立葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線為y=12.675x-0.011 3,相關(guān)系數(shù)R2=0.999 2,在0.01~0.06 mg/mL葡萄糖含量與吸光度呈良好線性關(guān)系。

    表1 苯酚-硫酸法葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線

    1.3.4.3 猴頭菇菌絲體粗多糖的測(cè)定

    將經(jīng)1.3.4.1處理后的猴頭菇菌絲體粉碎,過30目篩,精確稱重。用熱水浸提[16],固液比1∶10,浸提溫度90 ℃,浸提時(shí)間2.5 h,過濾去渣,浸提液用Sevag法[17-18]除蛋白后,得到猴頭菇菌絲體粗多糖溶液,然后稀釋至合適濃度即得樣品液。準(zhǔn)確吸取樣品液1 mL,按1.3.4.2的方法測(cè)定吸光度,計(jì)算樣品液的粗多糖含量,見公式(3):

    粗多糖含量/[g·(100g)-1]=

    (3)

    1.3.5 猴頭菇袋料栽培

    將猴頭菇原始菌株和經(jīng)1.3.4復(fù)篩出的變異菌株進(jìn)行袋料栽培[19],通過比較不同猴頭菇的生長(zhǎng)情況,考察猴頭菇超聲波誘變是否有價(jià)值。

    1.3.6 猴頭菇子實(shí)體粗多糖的測(cè)定

    將猴頭菇子實(shí)體65℃烘干至恒重,粉碎,過30目篩,精確稱重。用熱水浸提[20],固液比1∶10,浸提溫度80℃,浸提時(shí)間3 h,過濾去渣,浸提液用Sevag法除蛋白后,得到猴頭菇子實(shí)體粗多糖溶液,然后稀釋至合適的濃度即得樣品液。準(zhǔn)確吸取樣品液1 mL,按照1.3.4.2的方法測(cè)定吸光度,并計(jì)算樣品液的粗多糖含量,見公式(4):

    粗多糖含量/[g·(100g)-1]=

    (4)

    1.3.7 濾紙片法測(cè)定猴頭菇粗多糖的抑菌效果

    1.3.7.1 猴頭菇子實(shí)體粗多糖溶液的制備

    按照1.3.6的方法制備猴頭菇原始菌株、變異菌株子實(shí)體粗多糖溶液。

    1.3.7.2 猴頭菇粗多糖濾紙片的制備

    用打孔機(jī)將普通定性濾紙打成直徑為5.0 mm圓形紙片,放進(jìn)干燥潔凈的培養(yǎng)皿內(nèi),經(jīng)121 ℃、30 min高壓滅菌后,放入干燥箱內(nèi)干燥[21]。取干燥后的普通定性濾紙片,分別放進(jìn)體積相同的猴頭菇原始菌株、變異菌株的子實(shí)體粗多糖溶液,浸潤(rùn)30 min后備用。

    1.3.7.3 參照菌種菌懸液的制備

    將金黃色葡萄球菌、大腸桿菌和枯草芽孢桿菌作為參照菌種進(jìn)行活化,然后將參照菌種分別接入10 mL細(xì)菌液體培養(yǎng)基中,37 ℃培養(yǎng)24 h。然后各進(jìn)行10倍遞增稀釋,稀釋成一系列濃度梯度,各參照菌種菌懸液的每個(gè)濃度各取0.1 mL涂布于細(xì)菌固體培養(yǎng)基平板并培養(yǎng)24 h,選取恰能鋪滿平板的菌懸液備用。

    1.3.7.4 猴頭菇粗多糖抑菌效果測(cè)定

    對(duì)1.3.7.3選出的參照菌種菌懸液,各取0.1 mL均勻涂布于平板上,再貼上在猴頭菇子實(shí)體粗多糖溶液中浸潤(rùn)的濾紙片,每個(gè)平板貼4片濾紙片,均勻間隔,輕壓紙片,于37 ℃培養(yǎng) 24 h,觀察抑菌圈,并用十字交叉法測(cè)量抑菌圈直徑。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 誘變時(shí)間對(duì)猴頭菇的影響

    由表2可知,猴頭菇菌懸液經(jīng)超聲波處理不同時(shí)間后,菌落最早萌發(fā)時(shí)間均會(huì)提前1~2 d,說明超聲波誘變可加速菌落萌發(fā)。隨著誘變時(shí)間的延長(zhǎng),猴頭菇菌落萌發(fā)數(shù)降低,致死率升高。從致死率為70%~95%的平板中,挑選出萌發(fā)時(shí)間最早和生長(zhǎng)最旺盛的菌落,分別編號(hào)H-1、H-2、H-3、H-4、H-5、H-6、H-7、H-8、H-9作為猴頭菇變異菌株,猴頭菇原始菌株編號(hào)為H。

    表2 誘變時(shí)間對(duì)猴頭菇的影響

    2.2 猴頭菇變異菌株初篩結(jié)果

    將上述編號(hào)為H、H-1、H-2、H-3、H-4、H-5、H-6、H-7、H-8、H-9的猴頭菇菌株進(jìn)行平板培養(yǎng),通過對(duì)生長(zhǎng)勢(shì)、菌絲密度、菌絲色澤及邊緣整齊度的評(píng)分,選出比原始菌株H評(píng)分高的變異菌株。結(jié)果見表3和圖1。

    表3 猴頭菇菌株生長(zhǎng)情況的比較

    注:評(píng)分標(biāo)準(zhǔn):生長(zhǎng)勢(shì)“+++”為3分,“++”為2分,“+”為1分;菌絲密度“較大”為4分,“大”為3分,“小”為2分,“較小”為1分;菌絲色澤“潔白”為3分,“白”為2分,“灰白”為1分;邊緣整齊度“較整齊”為3分,“整齊”為2分,“不規(guī)則”為1分。

    圖1 猴頭菇菌株生長(zhǎng)情況比較

    可見,猴頭菇菌懸液經(jīng)超聲波誘導(dǎo)后,其生長(zhǎng)勢(shì)、菌絲密度、菌絲色澤及邊緣整齊度均發(fā)生了明顯變化。由表3和圖1可見,猴頭菇菌絲密度比較大的,其邊緣整齊度大都呈不規(guī)則狀;而菌絲密度小、菌絲色澤淺的,其邊緣則都比較整齊。最終篩選出評(píng)分比原始菌株H高的猴頭菇變異菌株為:H-2、H-5、H-7、H-9。

    2.3 猴頭菇變異菌株復(fù)篩結(jié)果

    將編號(hào)為H-2、H-5、H-7、H-9的猴頭菇變異菌株進(jìn)行液體培養(yǎng),挑選出生物量最大、菌絲體多糖含量最高的猴頭菇變異菌株。結(jié)果如表4。

    由表4可知,液體培養(yǎng)后,變異菌株菌絲體生物量比原始菌株高的為H-2、H-7、H-9;變異菌株菌絲體粗多糖含量比原始菌株高的為H-2(高出1.2 %)。因此,篩選出的優(yōu)良猴頭菇菌株為變異菌株H-2。另外,變異菌株H-5的生物量比變異菌株H-7要低,但H-5的菌絲體粗多糖含量卻比H-7要高,這說明猴頭菇經(jīng)超聲波誘變后,菌絲體生物量大的,其粗多糖含量不一定高。

    表4 猴頭菇菌株液體培養(yǎng)后產(chǎn)物產(chǎn)量的比較

    2.4 猴頭菇袋料栽培結(jié)果

    取猴頭菇原始菌株H和變異菌株H-2,先二級(jí)種擴(kuò)大培養(yǎng),再用聚丙烯塑料袋裝料進(jìn)行栽培。結(jié)果如表5和圖2。

    表5 猴頭菇袋料栽培結(jié)果

    圖2 猴頭菇袋料栽培結(jié)果

    由表5可知,猴頭菇變異菌株H-2和原始菌株H的菌絲體長(zhǎng)滿時(shí)間一致,但H-2幼蕾萌發(fā)時(shí)間比H提早兩天。由圖2可看出,H-2子實(shí)體色澤偏白,而H子實(shí)體色澤偏黃。H-2子實(shí)體比H子實(shí)體的干重增加了3.8 %,粗多糖含量提高了2.3 %。另外,對(duì)比表4和表5可知,猴頭菇菌絲體粗多糖含量高于子實(shí)體粗多糖含量。

    2.5 猴頭菇子實(shí)體粗多糖的抑菌效果

    將從猴頭菇原始菌株H與變異菌株H-2子實(shí)體提取的多糖,分別配成濃度為10.54 mg/mL的粗多糖溶液,用濾紙片法測(cè)定抑菌效果,抑菌圈直徑小于9 mm 為低度敏感;9~11 mm為中度敏感;11 mm以上為高度敏感。結(jié)果見表6和圖3。

    表6 猴頭菇子實(shí)體多糖抑菌效果

    注:“—”表示沒有抑菌效果。

    圖3 H-2對(duì)金黃色葡萄糖球菌的抑菌效果

    由表6可知,猴頭菇原始菌株H子實(shí)體多糖對(duì)金黃色葡萄球菌、大腸桿菌、枯草芽孢桿菌均無抑菌效果。猴頭菇變異菌株H-2子實(shí)體多糖對(duì)金黃色葡萄球菌高度敏感(見圖3),而對(duì)大腸桿菌和枯草芽孢桿菌沒有抑菌效果。這可能是因?yàn)楹镱^菇經(jīng)超聲波誘變后,其子實(shí)體多糖的化學(xué)結(jié)構(gòu)發(fā)生了變化,從而提高了其對(duì)金黃色葡萄球菌的抑菌活性。

    3 結(jié)論

    本研究利用超聲波對(duì)猴頭菇進(jìn)行誘變。通過猴頭菇平板培養(yǎng)初篩和液體發(fā)酵復(fù)篩,得到菌絲體生物量和粗多糖含量均高于原始菌株H的變異菌株H-2。猴頭菇袋料栽培試驗(yàn)表明,變異菌株H-2菌絲體和子實(shí)體的粗多糖含量比原始菌株H分別提高了1.2%和2.3%。另外,比較了H-2和H兩種猴頭菇子實(shí)體粗多糖的抑菌效果,結(jié)果表明,猴頭菇H-2子實(shí)體粗多糖,對(duì)金黃色葡萄球菌具有強(qiáng)抑菌作用,而原始菌株的子實(shí)體粗多糖對(duì)金黃色葡萄球菌不敏感??梢?,猴頭菇菌株經(jīng)超聲波誘變后不僅可提高子實(shí)體粗多糖含量,而且也會(huì)增強(qiáng)其抑菌活性,因此超聲波誘變可以作為改良食用菌生物性狀的一項(xiàng)有效措施。

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