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    蛹蟲草多糖的提取及對小鼠脾細(xì)胞增殖的影響

    2020-02-21 05:18:58李志濤孫金旭劉海鵬王青華張志強(qiáng)高越王暉
    食品研究與開發(fā) 2020年2期
    關(guān)鍵詞:濃縮液蟲草粒度

    李志濤,孫金旭,劉海鵬,王青華,張志強(qiáng),高越,王暉

    (1.衡水學(xué)院生命科學(xué)系,河北衡水053000;2.衡水市食品藥品檢驗(yàn)檢測中心,河北衡水053000)

    蛹蟲草又名北冬蟲夏草,是一種藥食兩用的真菌,其含有多種生物活性物質(zhì),醫(yī)療保健功能很高,其中,蛹蟲草多糖是其最重要的生物活性成分之一[1-4]。目前,多糖提取的傳統(tǒng)方法多為熱水提取法,這種方法存在費(fèi)時長、提取率低等問題,超聲波提取可以破壞細(xì)胞結(jié)構(gòu),有助于多糖的溶出,可以明顯縮短提取時間,提高多糖的提取率,微波提取方法簡單且多糖的提取率相對較高,超聲和微波提取法相比傳統(tǒng)提取方法優(yōu)勢明顯[5-10],但多糖提取率仍不夠理想,目前,單獨(dú)采用微波法或超聲法提取蛹蟲草菌絲體多糖的報道很多,但將微波提取法和超聲提取法結(jié)合起來提取蛹蟲草菌絲體多糖的報道很少見,因此,本研究采用微波法和超聲波法協(xié)同提取蛹蟲草多糖,優(yōu)化蛹蟲草多糖的最佳提取工藝,旨在最大限度的提高蛹蟲草多糖的提取率,并研究提取到的蛹蟲草多糖對小鼠脾細(xì)胞增殖的影響,為進(jìn)一步研究蛹蟲草多糖的免疫活性和開發(fā)蛹蟲草資源提供技術(shù)參數(shù)和科學(xué)依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    蛹蟲草菌絲體:衡水學(xué)院發(fā)酵工程實(shí)驗(yàn)室提供。60 ℃下恒溫烘干。

    葡萄糖:泰州市興華化學(xué)品公司;無水乙醇:天津市金衛(wèi)爾化工公司;RPMI-1640 不完全培養(yǎng)液:Gibco公司。

    1.2 儀器與設(shè)備

    SW-CJ-2FD 型超凈工作臺:上海璽恒實(shí)業(yè)有限公司;KS16000G 型臺式高速離心機(jī):上海冠森生物科技有限公司;EL-320 型電子天平:常州市天之平儀器設(shè)備有限公司。

    1.3 方法

    1.3.1 超聲波-微波協(xié)同法提取蛹蟲草多糖

    1.3.1.1 提取工藝[11-13]

    蛹蟲草→粉碎→加蒸餾水浸泡→置于超聲-微波協(xié)同反應(yīng)儀→超聲波提?。ü潭ㄎ⒉üβ剩x心得上清液→濃縮→加入乙醇沉淀→靜置→離心得沉淀→無水乙醇、丙酮分別洗滌→低溫干燥→蛹蟲草多糖

    1.3.1.2 蛹蟲草多糖的測定[14]

    利用苯酚-硫酸法進(jìn)行測定多糖,標(biāo)準(zhǔn)曲線見圖1。把葡萄糖的毫克數(shù)作為橫坐標(biāo),吸光度值(波長490 nm)作為縱坐標(biāo),得到葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線的回歸方程為:Y=6.718 8X,相關(guān)系數(shù)R2=0.999 1。隨后測定出多糖樣品的吸光度,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線的回歸方程,計算出試驗(yàn)樣品中多糖的含量。

    1.3.2 試驗(yàn)設(shè)計

    1.3.2.1 單因素試驗(yàn)

    1)最佳物料粒度的確定

    圖1 苯酚-硫酸標(biāo)準(zhǔn)曲線Fig.1 Standard curve of phenol-vitriol

    設(shè)置料液比1∶30(g/mL),固定微波功率為400 W,超聲波功率為200 W,超聲波時間35 min,提取溫度60 ℃,超聲波提取 1 次,乙醇和濃縮液之比 3 ∶1(體積比)。將粉碎后的蛹蟲草菌體粉末分別通過孔徑為0.106 mm(140 目)、0.125 mm(120 目)、0.150 mm(100 目)、0.180 mm(80目)、0.250 mm(60 目)的篩網(wǎng)進(jìn)行過濾,按照多糖提取工藝流程進(jìn)行試驗(yàn),探究物料粒度對多糖提取率的影響,進(jìn)而確定最佳的物料粒度[15]。

    2)最適料液比的確定

    采用得到的最佳物料粒度,固定微波功率為400 W,超聲波功率200 W,超聲波提取時間35 min,提取溫度為 60 ℃,提取次數(shù) 1 次,乙醇和濃縮液之比 3 ∶1(體積比)。調(diào)節(jié)料液比分別為 1 ∶30、1 ∶40、1 ∶50、1 ∶60、1 ∶70(g/mL),按多糖提取工藝流程進(jìn)行試驗(yàn),探索料液比對多糖提取率的影響,進(jìn)而確定合適的料液比。

    3)最佳超聲波功率的確定

    采用得到的最佳物料粒度和料液比,固定微波功率為400 W,超聲波時間為35 min,提取溫度60 ℃,提取次數(shù)設(shè)為1 次,乙醇和濃縮液之比3 ∶1(體積比)。設(shè)置超聲波功率分別為 100、200、300、400、500 W,按照多糖提取工藝流程進(jìn)行試驗(yàn),探究超聲波功率對多糖提取率的影響,進(jìn)而確定出最佳的超聲波功率。

    4)最佳超聲時間的確定

    采用得到的最佳物料粒度、超聲波功率和料液比,固定微波功率為400 W,提取溫度調(diào)節(jié)到60 ℃,提取次數(shù)設(shè)定在1 次,乙醇和濃縮液之比3 ∶1(體積比)。調(diào)節(jié)超聲波時間分別為 20、25、30、35、40 min,依照多糖的提取工藝流程進(jìn)行試驗(yàn)操作,分析超聲波提取時間的改變對多糖提取率的影響,進(jìn)而確定最佳的超聲波時間。

    5)最適提取溫度的確定

    采用得到的最佳物料粒度、超聲波功率、超聲波時間和料液比,固定微波功率為400 W,提取次數(shù)1 次,乙醇和濃縮液之比在3 ∶1(體積比)。設(shè)定提取溫度分別為 40、50、60、70、80 ℃,按照多糖提取工藝流程完成試驗(yàn)操作,研究提取溫度對多糖提取率的影響,進(jìn)而得到合適的提取溫度。

    6)最適超聲提取次數(shù)的確定

    采用得到的最佳物料粒度、超聲波功率、超聲波時間、提取溫度和料液比,固定微波功率為400 W,乙醇和濃縮液之比在3 ∶1(體積比)。超聲波提取次數(shù)分別為 1 次、2 次、3 次、4 次、5 次,按多糖提取工藝流程進(jìn)行試驗(yàn),研究超聲波提取次數(shù)對多糖提取率的影響,進(jìn)而確定合適的超聲波提取次數(shù)。

    7)最佳乙醇與濃縮液之比的確定

    采用得到的最佳物料粒度、超聲波功率、超聲波時間、提取溫度、超聲波提取次數(shù)和料液比,固定微波功率為400 W。調(diào)節(jié)乙醇與濃縮液之比(體積比)分別為 1 ∶1、2 ∶1、3 ∶1、4 ∶1、5 ∶1,按照多糖提取工藝流程進(jìn)行試驗(yàn)操作,研究分析乙醇與濃縮液之比對蛹蟲草多糖提取率的影響,進(jìn)而確定出最佳的乙醇與濃縮液之比。

    1.3.2.2 正交試驗(yàn)

    固定微波功率為400 W,選取7 個影響蛹蟲草多糖提取效果的主要因素,即物料粒度、料液比、超聲波功率、超聲波時間、提取次數(shù)、提取溫度、乙醇與濃縮液之比,進(jìn)行七因素三水平的正交試驗(yàn)。

    正交試驗(yàn)因素水平表見表1。

    表1 正交試驗(yàn)因素水平表Table 1 Factors and levels of orthogonal test

    1.3.2.3 蛹蟲草多糖對小鼠脾細(xì)胞增殖的影響[14]

    頸椎脫臼處死小鼠,無菌條件下取脾,磨碎,過不銹鋼篩網(wǎng),在1 000 r/min 條件下離心10 min,收集脾細(xì)胞,然后RPMI-1640(Roswell Park Memorial Institute-1640)不完全培養(yǎng)液洗滌,進(jìn)行活細(xì)胞計數(shù)(臺盼藍(lán)染色法),用RPMI-1640 完全培養(yǎng)液(含10%的小牛血清)進(jìn)行調(diào)整,使細(xì)胞密度達(dá)到 2×106(個/mL),制備成脾細(xì)胞懸液。于96 孔酶標(biāo)板中加入100 μL 細(xì)胞懸液(每孔都加)。陰性對照:再加完全培養(yǎng)液20 μL;陽性對照:Con A(刀豆蛋白A)和完全培養(yǎng)液各加10 μL;試驗(yàn)組:Con A(刀豆蛋白A)和樣品溶液各加10 μL。其中,陰性對照、陽性對照和試驗(yàn)孔,各設(shè)置3 個重復(fù)孔。將96 孔細(xì)胞培養(yǎng)板放入CO2飽和濕度培養(yǎng)箱(37 ℃,5%CO2)中培養(yǎng)。培養(yǎng)至 66 h 后加 10 μL 無菌噻唑藍(lán)(5 mg/mL,每孔都加)。培養(yǎng)至72 小時后,加入十二烷基硫酸鈉(sodium dodecyl sulfate,SDS,10%的SDS,每孔都加)終止反應(yīng),測定OD490nm值。結(jié)果以刺激指數(shù)(stimulate index,SI)來表示,SI 值大于 1 時,多糖樣品對小鼠脾淋巴細(xì)胞的增殖具有促進(jìn)作用(反之則具有抑制作用),SI 值越高,表示多糖樣品對小鼠脾細(xì)胞增殖的促進(jìn)作用越大,即免疫調(diào)節(jié)活性越大[16]。

    樣品溶液:取蛹蟲草多糖樣品,配制成3 組不同劑量的溶液,分別為低劑量組(0.5 mg/mL)、中劑量組(1.0 mg/mL)和高劑量組(2.0 mg/mL)。

    2 結(jié)果與討論

    2.1 單因素試驗(yàn)

    2.1.1 物料粒度對多糖提取率的影響

    物料粒度對蛹蟲草多糖提取率的影響如圖2。

    圖2 物料粒度對蛹蟲草多糖提取率的影響Fig.2 The material size influencing for extractionrate of polysaccharide from Cordyceps militaris

    物料粒度的大小將影響最終的多糖提取率,物料粒度越小即粉末越細(xì)時,菌絲體被充分粉碎,致使菌體中更多的多糖從中溶解出來,那么多糖的提取率也會相應(yīng)升高,但是如果物料粒度太小,在提取過程中會出現(xiàn)焦糊現(xiàn)象,所以提取率又會有所下降。由圖2看出,物料粒度在0.150 mm 時提取率最高,蛹蟲草多糖提取率為5.09%。所以后續(xù)單因素試驗(yàn)均采用物料粒度為0.150 mm。

    2.1.2 料液比對蛹蟲草多糖提取率的影響

    料液比對蛹蟲草多糖提取率的影響如圖3。

    圖3 料液比對蛹蟲草多糖提取率的影響Fig.3 The ratio of material to liquid influencing for extraction rate of polysaccharide from Cordyceps militaris

    在提取的過程中的加水量將對多糖的提取率產(chǎn)生影響,伴隨著試驗(yàn)中加水量的增加,多糖溶出越充分,多糖的提取率變大,但過多的加水量又會降低提取率,可能是由于超聲波破碎細(xì)胞的阻力變大,提取率降低。由圖3 可知,料液比為1 ∶40(g/mL)時多糖提取率最高,蛹蟲草多糖提取率為5.20%。所以后續(xù)單因素試驗(yàn)采用料液比 1 ∶40(g/mL)。

    2.1.3 超聲波功率對蛹蟲草多糖提取率的影響

    超聲波功率對蛹蟲草多糖提取率的影響如圖4。

    圖4 超聲功率對蛹蟲草多糖提取率的影響Fig.4 The ultrasonic power influencing for extraction rate of polysaccharide from Cordyceps militaris

    由圖4 可知,在一定范圍內(nèi)超聲波功率與多糖提取率成正比,在功率300 W 時達(dá)到最大值,之后提取率又會顯現(xiàn)出有所降低,這主要是因?yàn)楣β势蜁r,超聲波空化作用偏小,進(jìn)而提取率偏低,反之,提取率增大,但是如果超功率過大,反而會使溶劑中出現(xiàn)較多的空化氣泡,其產(chǎn)生的阻礙作用會降低多糖的提取率。超聲波功率在300 W 時多糖提取率最高,蛹蟲草多糖提取率為5.41%。所以后續(xù)單因素試驗(yàn)采用功率300 W。

    2.1.4 超聲波時間對蛹蟲草多糖提取率的影響

    超聲波時間對蛹蟲草多糖提取率的影響如圖5。

    圖5 超聲時間對蛹蟲草多糖提取率的影響Fig.5 The ultrasonic time influencing for extraction rate of polysaccharide from Cordyceps militaris

    由圖5 可得,初期超聲波時間的加長,會使提取率升高,在30 min 時提取率最高,隨后卻出現(xiàn)了負(fù)相關(guān)趨勢,這可能是由于隨著超聲波輻射時間的加長,蛹蟲草菌體細(xì)胞壁充分破裂,致使越來越多的蟲草多糖流出,所以多糖的提取率也隨之升高,但時間逐漸加長也會導(dǎo)致部分蟲草多糖的糖苷鍵損壞,會有更多的蟲草多糖被降解,因此提取率又會降低。多糖提取的最佳超聲波時間為30 min,蛹蟲草多糖提取率為5.41%。所以后續(xù)單因素試驗(yàn)采用超聲波時間為30 min。

    2.1.5 提取溫度對蛹蟲草多糖提取率的影響

    提取溫度對蛹蟲草多糖提取率的影響見圖6。

    圖6 提取溫度對蛹蟲草多糖提取率的影響Fig.6 The extraction temperature influencing forextraction rate of polysaccharide from Cordyceps militaris

    溫度的高低設(shè)定是多糖提取過程中不可以忽略的一個因素,由圖6 可知,溫度與多糖提取率成正比,到60 ℃是最高,然后隨著溫度的升高,多糖提取率雖然同樣呈現(xiàn)出增高的趨勢,但增長極其緩慢,再考慮到能源消耗問題,采用60 ℃即可。故多糖提取的最佳溫度為60 ℃,蛹蟲草多糖提取率為5.53%。所以后續(xù)單因素試驗(yàn)采用提取溫度60 ℃。

    2.1.6 超聲波提取次數(shù)對蛹蟲草多糖提取率的影響

    提取次數(shù)對蛹蟲草多糖提取率的影響如圖7。

    圖7 超聲波提取次數(shù)對蛹蟲草多糖提取率的影響Fig.7 The extraction times influencing for extraction rate of polysaccharide from Cordyceps militaris

    在多糖提取過程中,提取次數(shù)對得率大小存在一定的影響,提取次數(shù)越少,溶出的多糖就會更不完全,提取率越低,由圖7 可知,提取次數(shù)從2 次開始,提取率增長極其緩慢,故綜合操作的簡易性和經(jīng)濟(jì)因素,選擇提取2 次最佳,蛹蟲草多糖提取率為5.79%。所以后續(xù)單因素試驗(yàn)采用提取次數(shù)2 次。

    2.1.7 乙醇和濃縮液之比對蛹蟲草多糖提取率的影響

    乙醇和濃縮液之比對蛹蟲草多糖提取率的影響如圖8。

    圖8 乙醇和濃縮液之比對蛹蟲草多糖提取率的影響Fig.8 The ratio of ethanol to concentrate influencing for extraction rate of polysaccharide from Cordyceps militaris

    分析圖8,得知當(dāng)乙醇與濃縮液之比逐漸增大時,多糖提取率增大,到達(dá)最大值以后,又隨著乙醇與濃縮液之比的增大反而開始出現(xiàn)降低的趨勢。由圖8 可知,多糖提取率最大值出現(xiàn)在乙醇與濃縮液之比為4 ∶1(體積比)時,蛹蟲草多糖提取率為6.11%。所以多糖提取過程中乙醇與濃縮液之比最佳應(yīng)控制在4 ∶1(體積比)。

    2.2 L1(837)正交試驗(yàn)優(yōu)化提取蛹蟲草多糖工藝的研究

    正交試驗(yàn)優(yōu)化數(shù)據(jù)分析結(jié)果見表2、表3。

    表2 正交試驗(yàn)對蛹蟲草多糖提取率影響分析Table 2 Orthogonal test analysis of the impact of extraction rate of Cordyceps militaris polysaccharides

    續(xù)表2 正交試驗(yàn)對蛹蟲草多糖提取率影響分析Continue table 2 Orthogonal test analysis of the impact of extraction rate of Cordyceps militaris polysaccharides

    表3 正交試驗(yàn)對蛹蟲草多糖提取率影響的顯著性分析Table 3 Orthogonal test of the impact of significant extraction rate of Cordyceps militaris polysaccharide analysis

    由表2 可知,按照各個因素影響多糖最終得率的重要性可得:C>A>F>G>D>E>B,即超聲波功率>物料粒度>料液比>乙醇與濃縮液體積比>超聲波時間>提取溫度>提取次數(shù),確定出了蛹蟲草多糖提取工藝的最佳試驗(yàn)組合為:A2B3C2D2E3F2G2。由表3 可知,物料粒度和超聲波功率對蛹蟲草多糖提取的得率都表現(xiàn)出顯著影響。采用得出的最佳提取工藝組合進(jìn)行后續(xù)驗(yàn)證試驗(yàn),做3 個平行樣,通過計算平均數(shù)后得出蛹蟲草多糖得率為6.28%,高于熱水浸提法提取蛹蟲草菌絲體多糖的提取率(1.84%)[5],也高于單獨(dú)采用超聲法提取蛹蟲草菌絲體多糖的提取率(5.57%)[10]或微波法提取蛹蟲草菌絲體多糖的提取率(5.78%)[17],表明微波法和超聲波法協(xié)同提取蛹蟲草多糖具有意義。

    2.3 蛹蟲草多糖對小鼠脾細(xì)胞增殖的影響

    提取的蛹蟲草多糖對小鼠脾細(xì)胞增殖的影響見表4。

    表4 蛹蟲草多糖對小鼠脾細(xì)胞增殖的影響Table 4 Effect of Cordyceps militaris polysaccharide on proliferation of mouse spleen cells

    如表4 所示,蛹蟲草多糖低劑量組、中劑量組和高劑量組與對照組相比,SI 差異顯著(P<0.05);中劑量組和高劑量組與低劑量組相比,SI 差異顯著(P<0.05);中劑量組和高劑量組相比,SI 差異不顯著(P>0.05)。低劑量組的SI 顯著低于中劑量組和高劑量組的SI,中劑量組對應(yīng)的SI 最大,表明此劑量時蛹蟲草多糖對小鼠脾細(xì)胞增殖的促進(jìn)作用最大,具有最強(qiáng)的免疫調(diào)節(jié)活性,但隨著劑量的提高,高劑量組的免疫調(diào)節(jié)活性與中劑量組相比卻呈現(xiàn)出下降的趨勢。該結(jié)果與朱軼鋒等的報道類似:朱軼鋒等研究了不同濃度的黃芪多糖對ConA 誘導(dǎo)的雞脾臟淋巴細(xì)胞增殖的影響,發(fā)現(xiàn)黃芪多糖對免疫調(diào)節(jié)活性有重要影響,在一定劑量范圍內(nèi),隨著黃芪多糖劑量的提高,免疫調(diào)節(jié)活性呈現(xiàn)先上升后下降的趨勢[18]。

    3 結(jié)論

    從正交試驗(yàn)結(jié)果得出蛹蟲草多糖的最佳提取工藝條件是:物料粒度為0.150 mm,提取次數(shù)為3 次,微波功率400 W,超聲波功率為300 W,超聲波時間為30 min,提取溫度為 70 ℃,料液比為 1 ∶40(g/mL),乙醇與濃縮液體積比為4 ∶1。此條件下可得到多糖提取率為6.28%。超聲波功率、物料粒度對蛹蟲草多糖的得率均呈現(xiàn)出顯著的影響,其中,對蛹蟲草多糖得率影響最大的因素是超聲波功率。

    蛹蟲草多糖低劑量組、中劑量組和高劑量組的SI均大于1,表明不同劑量的蛹蟲草多糖對小鼠的脾淋巴細(xì)胞增殖活性均表現(xiàn)出促進(jìn)作用,蛹蟲草多糖能明顯提高小鼠的免疫調(diào)節(jié)活性。在一定劑量范圍內(nèi),隨著劑量的提高,免疫調(diào)節(jié)活性也相應(yīng)的提高,但隨著劑量的進(jìn)一步提高,免疫調(diào)節(jié)活性并沒有相應(yīng)的提高,而是達(dá)到峰值后出現(xiàn)下降的趨勢,表明蛹蟲草多糖的免疫調(diào)節(jié)作用具有劑量效應(yīng),只有在適宜的劑量時才具有較高的免疫調(diào)節(jié)活性,其機(jī)理還需要進(jìn)一步進(jìn)行研究。本試驗(yàn)僅檢測蛹蟲草多糖的免疫調(diào)節(jié)活性(細(xì)胞免疫試驗(yàn)),接下來將做非特異性免疫試驗(yàn)和體液免疫試驗(yàn)[16],進(jìn)一步研究蛹蟲草多糖的免疫活性。

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