王立斌,王丹妮,馬榮,張旭,田進(jìn)海,李曉菡,馮惠敏,馬芳
(1.寧夏醫(yī)科大學(xué)總醫(yī)院 生物芯片工程研究中心,寧夏 銀川 750004,2.寧夏醫(yī)科大學(xué)臨床醫(yī)學(xué)院,寧夏 銀川 750004)
MicroRNAs(miRNAs)是一類內(nèi)源性非編碼RNA,與mRNA 的3’-UTR 結(jié)合,調(diào)控mRNA 的表達(dá),影響細(xì)胞的基因轉(zhuǎn)錄、翻譯及表觀遺傳等環(huán)節(jié),參與腫瘤細(xì)胞的發(fā)生、發(fā)展[1]。miR-18a 是一個新的腫瘤相關(guān)miRNA。有文獻(xiàn)報道m(xù)iR-18a 能通過調(diào)控多種靶基因影響腫瘤細(xì)胞的功能[2-4]。miR-18a 在形成過程中存在2 種形式,即miR-18a-3P 和miR-18a-5P,目前已有關(guān)于miR-18a-5P 在腫瘤發(fā)生中作用的研究報道,而miR-18a-3P 與腫瘤的關(guān)系很少報道[5]。本研究通過建立miR-18a-3P 慢病毒載體,鑒定其在人乳腺腫瘤細(xì)胞系MDA-MB-231 中的表達(dá),為研究miR-18a-3P 對乳腺癌發(fā)生、發(fā)展的影響及探究機(jī)制奠定實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)。
人乳腺癌細(xì)胞系MDA-MB-231 購自美國典型培養(yǎng)物保藏中心,大腸桿菌菌株DH5α、慢病毒載體GV369 和GV280 及Polybrene 購自上海吉凱基因有限公司,DMEM 細(xì)胞培養(yǎng)液、標(biāo)準(zhǔn)胎牛血清(fetal bovine serum,FBS)購自美國Gibco 公司;PrimeScript?RT reagent Kit、SYBR?Premix Ex Taq ? Ⅱ及Premix Ex Taq?Version2.0 等購自日本TaKaRa 公司,Trizol 試劑購自美國Invitrogen 公司,1 kP DNA Ladder Marker購自美國Fermentas 公司,限制性內(nèi)切酶Age Ⅰ、Nhe Ⅰ及EcoR Ⅰ購自美國NEB 公司,質(zhì)粒抽提試劑盒購自德國Qiagen 公司,U6、miR-18a-3P 引物合成及質(zhì)粒測序由上海生工生物工程有限公司完成。二氧化碳CO2細(xì)胞培養(yǎng)箱購自美國Thermo 公司,超凈工作臺購自新加坡藝思高科技有限公司,臺式細(xì)胞離心機(jī)購自德國Eppendorf 公司,倒置熒光顯微鏡購自德國LEICA 公司;Light Cycler480 Ⅱ型qRT-PCR 儀購自美國Roche 公司。以不轉(zhuǎn)染病毒載體作為空白對照組,轉(zhuǎn)染病毒空載體作為陰性對照組,將轉(zhuǎn)染的miR-18a-3P 作為miR-18a-3P 轉(zhuǎn)染組。
1.2.1 引物合成及目的基因片段獲取 為構(gòu)建miR-18a-3P 過表達(dá)慢病毒載體,首先通過miRbase 數(shù)據(jù)庫查找miR-18a-3P 成熟引物序列,依據(jù)序列組成設(shè)計(jì)合成引物,其中包含交換配對堿基、酶切位點(diǎn)及用于PCR 擴(kuò)增microRNA 的5'端部分序列。所采用的過表達(dá)載體為上海吉凱公司的慢病毒載體GV369,元件順序?yàn)閁bi-MCS-SV40-EGFP-IRES-puromycin。構(gòu)建miR-18a-3P 干擾表達(dá)慢病毒載體為GV280,載體的元件順序?yàn)閔U6-MCS-Ubiquitin-EGFP-IRESpuromycin。經(jīng)查詢和確認(rèn),所設(shè)計(jì)反向互補(bǔ)序列分別合成2 段寡聚核苷酸,其上游為5'-,其下游把合成的引物用ddH2O 在90℃水浴中溶解稀釋,室溫自然冷卻。抽提人乳腺癌MDA-MB-231 細(xì)胞的基因組DNA,并以此為模板用上述引物,PCR 擴(kuò)增miR-18a-3P,分別以限制性內(nèi)切酶Age Ⅰ/Nhe Ⅰ和Age Ⅰ/EcoR Ⅰ酶切收集目的基因片段。
1.2.2 載體的構(gòu)建與鑒定 分別用限制性內(nèi)切酶Age Ⅰ/和Nhe Ⅰ在37℃條件下酶切載體GV369,在37℃條件下,用限制性內(nèi)切酶Age Ⅰ/和EcoR Ⅰ酶切載體GV280,3 h 后獲得酶切后的線性載體。然后將1.2.1 中獲得的目的基因片段移入線性表達(dá)載體,以1 ∶2 的摩爾比將線性載體DNA 和純化的PCR 產(chǎn)物混合,16℃條件下孵育6 h,使其充分反應(yīng)。將上述連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化入感受態(tài)細(xì)胞,在含有Amp 的LB 固體培養(yǎng)基平板上均勻涂布,37℃過夜孵育,挑取陽性的單克隆菌落,用PCR 進(jìn)行菌落鑒定,并取菌液測序,選擇PCR 鑒定陽性的克隆與測序結(jié)果,并進(jìn)行對比 分析。
1.2.3 慢病毒包裝與濃縮 采用三質(zhì)粒共轉(zhuǎn)染293T細(xì)胞的方法進(jìn)行病毒包裝,用質(zhì)粒抽提試劑盒分別提取GV 載體質(zhì)粒、pHelper1.0 載體質(zhì)粒和pHelper 2.0載體質(zhì)粒DNA,將提取的質(zhì)粒DNA 溶于無菌TE 中,測定其濃度及純度,確認(rèn)質(zhì)粒DNA 的純度(A260/A280)在1.8~2.1。消化處于對數(shù)生長期的293T 細(xì)胞,接種于10 cm3細(xì)胞培養(yǎng)皿中培養(yǎng),待細(xì)胞融合度達(dá)60%~70%時,更換為無血清培養(yǎng)基,繼續(xù)培養(yǎng)2 h 后,緩慢滴加含GV 載體質(zhì)粒20μg、pHelper 1.0載體質(zhì)粒15μg、pHelper 2.0 載體質(zhì)粒10μg 及一定體積轉(zhuǎn)染試劑的混合液,繼續(xù)在培養(yǎng)箱中培養(yǎng)6 h 后,棄去轉(zhuǎn)染混和液后用PBS 液清洗1 遍,加入10%血清培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng),分別于48 和72 h 收集培養(yǎng)細(xì)胞上清液,4℃、12 000 r/min 離心10 min,除去細(xì)胞碎片;0.45μm 過濾后,4℃、25 000 r/min 離心2 h,棄上清,加病毒保存液,分裝,-80℃保存。
1.2.4 病毒滴度測定 取3 個無菌Ep 管,依次編號1、2、3,每管均加入無血清培養(yǎng)基90μl,在1 號管內(nèi)加入10μl 待測原液病毒,吹打混勻后取10μl 加入到2號管中;2 號管再吹打混勻后取10μl 加入到3 號管。1 號管內(nèi)加入10μl 病毒原液,計(jì)為1E+1μl;2 號管中進(jìn)行第1 次10 倍稀釋,所得病毒原液為1 號管中的1/10,計(jì)為1E+0μl;3 號管中進(jìn)行第2 次10 倍稀釋,計(jì)為1E-1μl。將293T 細(xì)胞按1×105個/孔接種于96 孔板,細(xì)胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)12 h,待細(xì)胞融合度達(dá)60%時,棄培養(yǎng)基,加入90μl 上述稀釋好的病毒,繼續(xù)培養(yǎng)24 h,再添加完全培養(yǎng)基100μl,48 h 后熒光顯微鏡下觀察熒光亮度并拍照。根據(jù)綠色熒光蛋白的表達(dá)量計(jì)算病毒滴度,病毒滴度=熒光細(xì)胞數(shù)/原液病毒數(shù)。
MDA-MB-231 細(xì)胞按1×104個/孔接種至96 孔板中,共接種8孔。將慢病毒稀釋后分別加入其中4孔,使其感染復(fù)數(shù)(multiplicity of infection,MOI)值分別為0、5、10 及20;另外4 孔在加入相應(yīng)濃度病毒的同時,還添加1μg/ml Polybrene。轉(zhuǎn)染12 h 后,將上層培養(yǎng)基吸除,添加新鮮培養(yǎng)基,繼續(xù)培養(yǎng)48 h,熒光顯微鏡下觀察并拍照。通過對細(xì)胞感染效果的評估,明確MDA-MB-231 細(xì)胞的感染條件并計(jì)算MOI。
MDA-MB-231 細(xì)胞按1×105個/孔接種于6 孔板中,37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h,待細(xì)胞密度達(dá)50%時病毒轉(zhuǎn)染。先將6 孔板中細(xì)胞上清液吸除,每孔中加入1 ml 無血清培養(yǎng)基配制的轉(zhuǎn)染液,培養(yǎng)24 h,待病毒轉(zhuǎn)染進(jìn)細(xì)胞后吸除轉(zhuǎn)染液,加入含1μg/m1 嘌呤霉素培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng),隔天更換1 次培養(yǎng)基,3 或4 d 后即可獲得能穩(wěn)定傳代的轉(zhuǎn)染細(xì)胞,經(jīng)傳代培養(yǎng)后,分別凍存同一批次的各組細(xì)胞5 支備用。
取穩(wěn)定轉(zhuǎn)染的MDA-MB-231 細(xì)胞,按照miR Neasy Mini Kit 試劑說明書提取細(xì)胞總RNA。使用microRNA cDNA Synthesis Kit 試劑盒將各細(xì)胞總RNA逆轉(zhuǎn)錄成cDNA,逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng)體系內(nèi)共加入200 ng 總RNA,置于-80℃儲存?zhèn)溆?。取cDNA 行qRT-PCR:94℃預(yù)變性2 min,92℃變性20 s,56℃退火30 s,72℃延伸45 s,共30 個循環(huán),72℃繼續(xù)延伸7 min。用2-△△CT法計(jì)算各基因的相對表達(dá)量。見表1。
數(shù)據(jù)分析采用SPSS 23.0 和GraphPad Prism6 統(tǒng)計(jì)軟件。計(jì)量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,比較用方差分析,進(jìn)一步兩兩比較用LSD-t檢驗(yàn),P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
表1 qRT-PCR 的引物序列
將miR-18a-3P 過表達(dá)及干擾慢病毒載體GV369和GV280(見圖1A、B)。將篩選出來的陽性重組克隆菌落挑于液體LB 培養(yǎng)基中擴(kuò)增培養(yǎng),提取質(zhì)粒后進(jìn)行測序分析,并與miR-18a-3P 反向互補(bǔ)序列比對,結(jié)果完全匹配,未見堿基缺失或突變等異常(見 圖1C、D)。
構(gòu)建好的miR-18a-3P 過表達(dá)慢病毒滴度為2×109TU/ml,miR-18a-3P 干擾慢病毒滴度為1× 109TU/ml。見圖2、3。
圖1 GV369 和GV280 載體結(jié)構(gòu)及測序
圖2 過表達(dá)慢病毒熒光法滴度測定 (×100)
圖3 干擾表達(dá)慢病毒熒光法滴度測定 (×100)
miR-18a-3P 過表達(dá)及干擾慢病毒載體感染MDA-MB-231 細(xì)胞48 h 后,當(dāng)MOI 值為10 TU/ml,Polybrene 濃度為1μg/ml 時,轉(zhuǎn)染效率最高,且效 率>80%,篩選后得到滿意的目的細(xì)胞。見圖4~7。
圖4 MDA-MB-231 細(xì)胞未加Polybrene 時miR-18a-3P 過表達(dá)載體感染 (光鏡×100)
圖5 MDA-MB-231 細(xì)胞加Polybrene 后miR-18a-3P 過表達(dá)載體感染 (光鏡×100)
圖6 MDA-MB-231 細(xì)胞未加Polybrene 時miR-18a-3P 干擾載體感染 (光鏡×100)
圖7 MDA-MB-231 細(xì)胞加Polybrene 后miR-18a-3P 干擾載體感染 (光鏡×100)
miR-18a-3P 過表達(dá)慢病毒載體轉(zhuǎn)染后,各組miR-18a-3P 相對表達(dá)量比較,經(jīng)方差分析,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),miR-18a-3P 轉(zhuǎn)染組較其他兩組高(P<0.05)。miR-18a-3P 干擾表達(dá)慢病毒載體轉(zhuǎn)染后,各組miR-18a-3P 相對表達(dá)量比較,經(jīng)方差分析,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),miR-18a-3P 轉(zhuǎn)染組較其他兩組低(P<0.05)。見表2和圖8、9。
表2 各組miR-18a-3P 相對表達(dá)量比較 (±s)
表2 各組miR-18a-3P 相對表達(dá)量比較 (±s)
注:?與miR-18a-3P 轉(zhuǎn)染組比較,P <0.05。
miR-18a-3P 干擾 慢病毒空白對照組 1.000±0.000? 1.000±0.000?陰性對照組 1.175±0.035? 0.835±0.077?miR-18a-3P 轉(zhuǎn)染組 2.065±0.049 0.125±0.021 F 值 528.905 199.531 P 值 0.000 0.001組別 miR-18a-3P 過表達(dá)慢病毒
圖8 各組過表達(dá)miR-18a-3P 慢病毒載體轉(zhuǎn)染MDAMB-231 細(xì)胞后miR-18a-3P 的相對表達(dá)量比較 (±s)
圖9 各組干擾表達(dá)miR-18a-3P 慢病毒載體轉(zhuǎn)染MDAMB-231 細(xì)胞后miR-18a-3P 的相對表達(dá)量比較 (±s)
miRNA 是存在于多種真核細(xì)胞生物中的一類單鏈非編碼RNA 分子,多數(shù)miRNA 由大約70 個堿基組成的發(fā)夾結(jié)構(gòu)RNA 前體經(jīng)過Dicer 酶酶切加工形成。miRNA 前體在酶切過程中可以產(chǎn)生2 條有功能的成熟miRNA,以miRNA-5p 和miRNA-3p 命名[6]。miRNA通過與其靶基因配對,誘導(dǎo)靶基因mRNA降解,抑制mRNA 的翻譯。這種調(diào)控是多向發(fā)生的,一個miRNA 可以調(diào)控多個mRNA 的表達(dá),多個miRNA 也可以分別與同一個mRNA 序列結(jié)合[7-8]。由于存在調(diào)控方式和結(jié)合位點(diǎn)的多樣性,miRNA 在基因轉(zhuǎn)錄、翻譯及表觀遺傳等環(huán)節(jié)調(diào)控基因組表達(dá),參與腫瘤細(xì)胞增殖、轉(zhuǎn)移等過程[9]。
miR-18a 屬于miR-17-92 基因簇,通常與抑癌基因GUGC 序列結(jié)合發(fā)揮作用[10]。現(xiàn)已發(fā)現(xiàn)miR-18a與多種疾病相關(guān),RAO 等[11]證實(shí)四氫大麻酚通過調(diào)節(jié)miR-17-92 簇和誘導(dǎo)T 細(xì)胞,減輕葡萄球菌腸毒素B 刺激的小鼠炎性肺損傷,并防止死亡。MAO 等[12]證實(shí)在2 型糖尿病引起的腦損傷患者血清中,S100 蛋白和內(nèi)皮素-1 等生化指標(biāo)的升高與miRNA-18a 表達(dá)下調(diào)有關(guān)。YAU 等[13]發(fā)現(xiàn)miR-18a 的表達(dá)與非侵襲性結(jié)直腸腫瘤的發(fā)展密切相關(guān),認(rèn)為miRNA-18a 可以成為診斷結(jié)直腸癌的一個潛在生物標(biāo)志物。在乳腺腫瘤研究中,F(xiàn)AN[14]、KRUTILINA 等[15]和QI 等[16]發(fā)現(xiàn),miR-18a 可通過干擾缺氧誘導(dǎo)因子1α 亞基和調(diào)控mTOR 信號通路的表達(dá),增強(qiáng)乳腺癌細(xì)胞凋亡及自噬的比率。
2 種對miR-18a 存在形式的研究中,目前只有關(guān)于miR-18a-5p 與腫瘤關(guān)系的文獻(xiàn)報道,LIANG 等[5]發(fā)現(xiàn)miR-18a-5p 在非小細(xì)胞肺癌組織中高表達(dá),并通過抑制干擾素調(diào)節(jié)因子-2 的表達(dá),抑制非小細(xì)胞性肺癌細(xì)胞自噬,并促進(jìn)腫瘤細(xì)胞增殖和轉(zhuǎn)移。LU 等[17]證實(shí)miR-18a-5p 通過抑制IRF2 的表達(dá),促進(jìn)骨肉瘤細(xì)胞的侵襲和遷移?,斠琅瑺枴み_(dá)吾提等[18]發(fā)現(xiàn)miR-18a-5p 通過調(diào)控其靶基因的表達(dá),抑制SW480細(xì)胞增殖并促進(jìn)其凋亡。而目前關(guān)于miR-18a-3P 與腫瘤關(guān)系的報道較少。
穩(wěn)定轉(zhuǎn)染和瞬時轉(zhuǎn)染是目前在細(xì)胞中獲得穩(wěn)定表達(dá)載體的2 種主要方式。其中瞬時轉(zhuǎn)染的結(jié)果定量更加容易和快速,但該法觀察時間短,無法獲得穩(wěn)定傳氏細(xì)胞。一般用于獲得外源基因穩(wěn)定轉(zhuǎn)染的方式常用慢病毒載體,慢病毒載體包含病毒包裝、轉(zhuǎn)染和整合所需的所有遺傳信息,其通過感染細(xì)胞,并隨著宿主細(xì)胞的分裂而擴(kuò)增,實(shí)現(xiàn)外源基因在宿主細(xì)胞內(nèi)穩(wěn)定的表達(dá)。與瞬時轉(zhuǎn)染相比,慢病毒轉(zhuǎn)染效果更穩(wěn)定,結(jié)果定量更準(zhǔn)確[19]。
本研究首先構(gòu)建了miR-18a-3P 過表達(dá)慢病毒載體GV369 和miR-18a-3P 干擾慢病毒載體GV280,并對所構(gòu)建的載體進(jìn)行滴度測定。將構(gòu)建成功的慢病毒載體轉(zhuǎn)染人乳腺癌細(xì)胞株MDA-MB-231 中,qRTPCR 檢測經(jīng)轉(zhuǎn)染載體后MDA-MB-231 細(xì)胞株中miR-18a-3P 的表達(dá),發(fā)現(xiàn)慢病毒載體能顯著改變MDAMB-231 細(xì)胞內(nèi)miR-18a-3P 的表達(dá)。本研究成功構(gòu)建了miR-18a-3P 慢病毒過表達(dá)載體GV369 和干擾載體GV280,并能在乳腺癌細(xì)胞株MDA-MB-231 內(nèi)穩(wěn)定表達(dá),為后續(xù)開展miR-18a-3P 對乳腺癌發(fā)生、發(fā)展進(jìn)程的研究及其分子機(jī)制奠定了實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)。