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    酶轉(zhuǎn)化三七莖葉總皂苷制備稀有人參皂苷C-K

    2020-01-13 01:43:32王彩艷劉春瑩肖永坤左康澤陳雙徐龍權(quán)宋建國魚紅閃
    食品與發(fā)酵工業(yè) 2019年22期
    關(guān)鍵詞:糖基產(chǎn)酶皂苷

    王彩艷,劉春瑩,肖永坤,左康澤,陳雙,徐龍權(quán),宋建國,魚紅閃*

    1(大連工業(yè)大學(xué) 生物工程學(xué)院,遼寧 大連,116034)2(大連大學(xué),遼寧 大連,116622) 3(葵花藥業(yè)集團(天津)藥物研究院,天津,300457)

    三七為常用的貴重中藥,但其入藥部位大多為其根部,其莖葉部分還沒有得到充分利用。在三七莖葉中總皂苷含量為5%(質(zhì)量分數(shù))以上,其中主要為Rb3、C-Mx1、Fa、Rc、Fc、Rd、Rb1、Gyp17等人參二醇類皂苷,它們含有相同的人參二醇苷元非糖基部分,但是帶有不同的3-O-和20-O-糖基[1-3],故導(dǎo)致其功效有所差異。三七莖葉總皂苷中含量高的Rb1、Rc等分子,由于帶多個糖基,故生理活性很低,但口服后能在腸道內(nèi)轉(zhuǎn)化為低糖基的皂苷C-K等,但是這種轉(zhuǎn)化非常微弱,而且大部分很難被利用[4-5]。與三七莖葉總皂苷含有相同苷元的人參稀有皂苷C-K、Rg3、Rh2等,具有很好的抗癌、抗血栓、抗炎、抗皮膚老化以及治療神經(jīng)系統(tǒng)疾病等功效,對醫(yī)藥、保健食品、化妝品的生產(chǎn)意義很大[6-10]。

    為了從低活性的三七莖葉總皂苷中生物轉(zhuǎn)化得到高活性人參稀有皂苷,柴瑞華等用酶法將三七莖葉總皂苷轉(zhuǎn)化制備人參稀有皂苷C-K,但是其轉(zhuǎn)化得率很低[11-12]。本實驗室相繼報道了4種人參皂苷糖苷酶:即轉(zhuǎn)化原人參二醇類皂苷Rb1、Rb2、Rc和Rd的第3(碳)-O-和20(碳)-O-多種糖基的人參皂苷糖苷酶I型[13-15];轉(zhuǎn)化原人參二醇類皂苷的20-O-多種糖基的人參皂苷酶Ⅱ型[16];克隆在E.coliC41(DE3)菌種中表達的人參皂苷酶Ⅲ型,能轉(zhuǎn)化原人參二醇類皂苷的3-O-多種糖基[17],能轉(zhuǎn)化原人參三醇類皂苷的6-O-多種糖基的人參皂苷糖苷酶Ⅳ型[18]。本實驗室也報道了不同菌來源的人參皂苷糖苷酶I型[13-15],雖然都能轉(zhuǎn)化原人參二醇類皂苷第3(碳)-O-和20(碳)-O-多種糖基,但是在個別性質(zhì)上有所差異。如來源于A.nigersp.G4菌的酶(分子質(zhì)量80kDa),能轉(zhuǎn)化人參二醇類皂苷變成F2、C-K和少量的Rh2[13];來源于A.nigersp.G8菌的酶(分子質(zhì)量75 kDa),經(jīng)2個途徑轉(zhuǎn)化人參二醇類皂苷Rb1和Rb3的3-O-和20-O-糖基,即Rb1→Rd→F2→C-K和Rb1→Gyp17→Gyp75→C-K途徑;Rb3→C-Mx1→C-Mx→C-K和Rb3→Rd→F2→C-K途徑[14];也報道過利用來源于A.nigersp.G8菌的人參皂苷糖苷酶I型,生物轉(zhuǎn)化三七莖葉總皂苷制備高生理活性的稀有皂苷C-K、C-Mx[19-20];但是,上述研究的C-K轉(zhuǎn)化得率低,并且反應(yīng)后殘留中間產(chǎn)物C-Mc。

    本文為了提高三七莖葉總皂苷的C-K轉(zhuǎn)化得率,嘗試了3種菌來源的人參皂苷酶、混合酶轉(zhuǎn)化三七莖葉總皂苷,并對其酶反應(yīng)條件進行優(yōu)化,為充分利用三七莖葉總皂苷提供新的研究方向。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    三七莖葉總皂苷,遼寧桓仁陽光保健品公司;人參皂苷對照品Rb3、C-Mx1、Rc、Rb1、Rd等,天津天宿光華健康科技公司;人參皂苷對照品C-K、C-Mx、C-Mc、R7、Fc等,由本實驗室提供(全部經(jīng)國家電化學(xué)和光譜研究中心以核磁共振核對結(jié)構(gòu))[19-20]。Aspergillusnigersp.G4菌[13]、Aspergillusnigersp.G8菌[14]、Aspergillusoryzaesp.G9菌[18],從大曲中篩選;AB-8大孔吸附樹脂、D-280離子交換樹脂,天津興南允能高分子技術(shù)有限公司;薄層層析板Silica gel 60-F254,德國默克公司。

    1.2 儀器與設(shè)備

    Waters2695高效液相色譜分析儀(帶Waters2996光電二極管陣列(PDA)檢測器及Empower色譜工作站),Waters公司。

    1.3 實驗方法

    1.3.1 酶液制備

    配制150 mL 50 g/L麥芽汁中加入0.5 g/L的三七莖葉總皂苷的溶液,共制備30瓶,經(jīng)高壓蒸汽滅菌,冷卻至室溫。經(jīng)嚴格無菌操作,A.nigersp.G4菌、A.nigersp.G8菌和A.oryzaesp.G9菌各接種10瓶;在30 ℃恒溫振蕩培養(yǎng)箱中培養(yǎng)5~7 d,將發(fā)酵培養(yǎng)好的150 mL發(fā)酵液,用高速冷凍離心機在8 000 r/min下離心15 min,去除菌體,收集上清液;在磁力攪拌條件下,緩慢加入已研磨好的硫酸銨粉末至80%飽和度,于4 ℃下靜置4 h。再用高速冷凍離心機在13 000 r/min下離心20 min,棄上清,收集蛋白質(zhì)沉淀。沉淀用10 mL、20 mmol/L、pH 5.0 醋酸-醋酸鈉緩沖液溶解,然后裝入透析袋,用相同緩沖液透析24 h,約每2 h更換一次緩沖液。透析結(jié)束后,用高速冷凍離心機在13 000 r/min下離心10 min,除去不溶性雜蛋白,所得上清液即為粗酶液。

    1.3.2 酶反應(yīng)方法

    取0.1 mL酶液與0.1 mL 50 g/L的三七莖葉總皂苷底物溶液,加入1.5 mL離心管中,混合均勻,在45 ℃下反應(yīng)24 h,反應(yīng)結(jié)束后,加入0.2 mL水飽和正丁醇,混合均勻后離心,取正丁醇層溶液采用1.3.4中的TLC方法進行定性分析,取正丁醇層溶液濃縮蒸干后采用1.3.5中HPLC法進行定量分析。

    C-K產(chǎn)率的計算方法如公式(1)所示:

    (1)

    式中:PC-K-酶反應(yīng)產(chǎn)物進行HPLC分析,根據(jù)對照品C-K的回歸方程計算出產(chǎn)物中C-K的含量;S-酶反應(yīng)中底物(三七莖葉總皂苷)的含量。

    1.3.3 C-K等稀有皂苷的制備

    稱取50.0 g三七莖葉總皂苷,溶于1 000 mL 20 mmol/L pH 5.0 醋酸-醋酸鈉緩沖液中,然后加入1 000 mL酶液混合,置于反應(yīng)釜中,在45℃下反應(yīng)24 h時。反應(yīng)結(jié)束后,加入6 000 mL 950 g/L乙醇沉淀酶,并在13 000 r/min下離心20 min,取上清液濃縮,去除溶液中的乙醇,得到粗產(chǎn)品濃縮液。上述粗產(chǎn)品的濃縮液經(jīng)預(yù)先處理好的1 000 mL AB-8大孔吸附樹脂柱反復(fù)吸附后(重復(fù)吸附3~4次,使皂苷充分吸附),用6倍柱體積的去離子水洗脫去除糖等雜質(zhì),再用5倍柱體積的840 g/L乙醇溶液洗脫皂苷,其洗脫液再經(jīng)D-280樹脂柱脫色,減壓濃縮、干燥,得到三七莖葉總皂苷酶轉(zhuǎn)化產(chǎn)物混合皂苷[19-20]。

    1.3.4 薄層層析法[21](thin layer chrmatographic,TLC)

    薄層層析板采用Silica gel 60-F254,展開劑比例為V(氯仿)∶V(甲醇)∶V(水) = 7∶2.5∶0.5,顯色劑為10% H2SO4溶液。

    1.3.5 高效液相色譜(HPLC)

    色譜條件[21]:采用Waters 2695高效液相色譜分析儀,Waters 2996光電二極管陣列(PDA)檢測器及Empower色譜工作站;色譜柱:Hypersil C18柱(5 μm,φ 4.6 mm×250 mm);流動相:乙腈(A)-水(B):0~20 min,20%A等度;20~31 min,20%A~32%A線性梯度,31~40 min,32%A~43%A線性梯度;40~70 min,43%A~100%A線性梯度;進樣量:10 μL;柱溫:35℃;體積比流速:0.6 mL/min;檢測波長:203 nm。

    待測樣品的溶液配制:稱取三七莖葉總皂苷4 mg,加1 mL色譜級甲醇充分溶解,待用;取4 mg酶轉(zhuǎn)化產(chǎn)物,充分溶解于1 mL色譜級甲醇溶液中,待用;分別精密稱取對照品人參皂苷Rb1、R7、Fc、Rc、Rb3、Rd、C-Mx1、C-K、C-Mc和C-Mx,分別配制成1 g/L色譜級甲醇溶液,待用;上述配置待用的樣品溶液,經(jīng)過0.22 μm濾膜過濾后,進行HPLC分析。

    1.3.6 C-K標準曲線及回歸方程

    取上述配制好的對照品C-K溶液適量,加入適量的色譜級甲醇等倍稀釋成5個濃度的對照液,分別取10 μL按1.3.5色譜條件進樣分析,以對照品質(zhì)量濃度為X坐標,面積值為Y坐標,繪制標準曲線并進行回歸計算,回歸方程為Y=3.72×106X-1.44×104,相關(guān)系數(shù)為0.999 2。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 三七莖葉總皂苷的組成成分分析

    市銷的三七莖葉總皂苷的組成,因廠家、生產(chǎn)批次的不同,而有所差別。對本溪陽光保健品公司的三七莖葉總皂苷產(chǎn)品和人參皂苷產(chǎn)品進行高效液相色譜分析,其結(jié)果如圖1、圖2、表1所示。

    1-人參皂苷Rb1;2-人參皂苷Fc;3-人參皂苷Rc;4-人參皂苷Rb3;5-人參皂苷R7;6-人參皂苷Rd;7-人參皂苷C-Mx1;8-人參皂苷C-Mc;9-人參皂苷C-Mx;10-人參皂苷C-K圖1 人參皂苷對照品的HPLC圖譜Fig.1 The HPLC of ginsenoside standards

    圖2 市銷三七莖葉總皂苷的HPLC圖譜Fig.2 The HPLC of notoginseng stem-leaf ginsenosides

    表1 三七莖葉總皂苷中各組分的含量Table 1 Contents of each component in total saponins of Panax notoginseng

    由圖2和圖1比對可知,市銷的三七莖葉總皂苷中含有皂苷:Fa、Rb1、Fc、Rc、Rb2、Rb3、R7、Rd、Gyp17、C-Mc1和C-Mx1共11種。把HPLC圖中各皂苷的峰面積比近似認為各皂苷的含量比[20],則各皂苷的質(zhì)量分數(shù)為Fa 7.18%、Rb1 5.19%、Fc 10.25%、Rc 12.73%、Rb3 26.38%、R7 1.42%、Rd 3.51%、Gyp 17 2.30%、C-Mc1 6.50%、C-Mx1 14.28%,即在三七莖葉總皂苷中含量最高的是Rb3,其次是C-Mx1。

    2.2 三七莖葉總皂苷的酶轉(zhuǎn)化反應(yīng)

    取A.nigersp.G4菌、A.nigersp.G8菌和A.oryzaesp.G9菌所產(chǎn)酶以及它們兩者的等體積混合液各0.1 mL,分別與0.1 mL 50 g/L三七莖葉總皂苷溶液混合,在pH 5.0、45℃下反應(yīng)24 h;加0.2 mL水飽和正丁醇,混合均勻后離心,上清液采用TLC法進行定性分析,結(jié)果如圖3所示。

    NGL-三七莖葉總皂苷;C-K、C-Mc、C-Mx、R7、Fc-人參皂苷對照品;1-A. niger sp.G4菌所產(chǎn)酶和A. niger sp.G8菌所產(chǎn)酶的等體積混合酶液;2-A. niger sp.G4菌所產(chǎn)酶和A. oryzae sp.G9菌所產(chǎn)酶的等體積混合酶液;3-A. niger sp.G8菌所產(chǎn)酶和A. oryzae sp.G9菌所產(chǎn)酶的等體積混合酶液;4-A. niger sp.G4菌所產(chǎn)酶;5-A. niger sp.G8菌所產(chǎn)酶;6-A. oryzae sp.G9菌所產(chǎn)酶圖3 酶轉(zhuǎn)化三七莖葉總皂苷的TLC圖Fig.3 Enzyme on notoginseng stem-leaf in TLC

    由圖3可知,A.nigersp.G8菌所產(chǎn)酶和A.nigersp.G4菌所產(chǎn)酶的等體積混合酶液轉(zhuǎn)化三七莖葉總皂苷生成C-K的效果最好,其次為A.nigersp.G8菌所產(chǎn)酶;而A.nigersp.G8菌所產(chǎn)酶和A.oryzaesp.G9菌所產(chǎn)酶的等體積混合酶、A.nigersp.G4菌所產(chǎn)酶和A.oryzaesp.G9菌所產(chǎn)酶的等體積混合酶、A.oryzaesp.G9菌所產(chǎn)酶、A.nigersp.G4菌所產(chǎn)酶對三七莖葉總皂苷的轉(zhuǎn)化效果差。因此本文采用了A.nigersp.G8菌所產(chǎn)酶和A.nigersp.G4菌所產(chǎn)酶的等體積混合酶(以下簡稱G8-G4混合酶),以及A.nigersp.G8菌所產(chǎn)酶轉(zhuǎn)化三七莖葉總皂苷制備稀有皂苷C-K。

    2.3A. niger sp.G8菌所產(chǎn)酶和G8-G4混合酶的最佳酶反應(yīng)條件

    2.3.1 反應(yīng)時間的優(yōu)化

    G8-G4混合酶與三七莖葉總皂苷溶液等體積混合,在底物質(zhì)量濃度25 g/L,pH 5.0,45 ℃下反應(yīng)3、6、9、12、24、36、48 h,反應(yīng)結(jié)束后,分別取樣0.2 mL,與0.2 mL水飽和正丁醇混合,混合均勻后離心,取正丁醇層用TLC法進行定性檢測,并采用HPLC法進行定量分析,TLC結(jié)果如圖4所示。

    NGL-三七莖葉總皂苷;C-K、C-Mc、C-Mx、R7、Fc、C-Mx1-人參皂苷對照品;1、2、3、4、5、6、7-3、6、9、12、24、36、48 h圖4 不同時間對G8-G4混合酶轉(zhuǎn)化三七莖葉總皂苷的影響Fig.4 Reaction time effect on the hydrolysis of notoginseng stem-leaf ginsenosides by enzyme mixture of A. niger sp.G8 and A. niger sp.G4 strains

    由圖4可知,G8-G4混合酶與三七莖葉總皂苷的反應(yīng),隨時間的延長C-K產(chǎn)率越來越高,當反應(yīng)進行到24 h,C-K產(chǎn)率達到28.6%(質(zhì)量分數(shù))。同理,A.nigersp.G8菌所產(chǎn)酶的反應(yīng)時間優(yōu)化表明,反應(yīng)24 h,C-K產(chǎn)率最高,為22.4%(質(zhì)量分數(shù))。

    2.3.2 酶反應(yīng)溫度和pH的優(yōu)化

    G8-G4混合酶液與三七莖葉總皂苷溶液等體積混合,反應(yīng)溫度分別設(shè)在35、40、45、50、55、60 ℃,底物質(zhì)量濃度25 g/L,pH 5.0,反應(yīng)24 h。結(jié)果如圖5所示。G8-G4混合酶與三七莖葉總皂苷溶液等體積混合,反應(yīng)pH值設(shè)為3.0、4.0、5.0、6.0、7.0,底物質(zhì)量濃度為25 g/L,45 ℃反應(yīng)24 h。結(jié)果如圖6所示。

    圖5 溫度對酶反應(yīng)生成C-K的影響Fig.5 The effects of temperature on enzyme reaction to C-K

    圖6 pH對酶反應(yīng)生成C-K的影響Fig.6 the effects of pH on enzyme reaction to C-K

    由圖5可知,G8-G4混合酶與三七莖葉總皂苷在45℃條件下反應(yīng)后,C-K的產(chǎn)率最高,達27.68%(質(zhì)量分數(shù)),由圖6可知,在pH 5.0條件下,G8-G4混合酶轉(zhuǎn)化三七莖葉總皂苷的C-K產(chǎn)率最高,為21.56%(質(zhì)量分數(shù))。故G8-G4混合酶轉(zhuǎn)化三七莖葉總皂苷的最佳反應(yīng)條件為pH 5.0,45℃,底物質(zhì)量濃度25 g/L,反應(yīng)24 h。

    A.nigersp.G8菌所產(chǎn)酶與三七莖葉總皂苷溶液等體積混合,反應(yīng)溫度分別設(shè)在:35、40、45、50、55、60℃,底物質(zhì)量濃度25 g/L,pH 5.0,反應(yīng)24 h。結(jié)果如圖7所示。A.nigersp.G8菌所產(chǎn)酶與三七莖葉總皂苷溶液等體積混合,反應(yīng)pH設(shè)為3.0、4.0、5.0、6.0、7.0,45℃,底物質(zhì)量濃度25 g/L,反應(yīng)24 h。結(jié)果如圖8所示。

    圖7 溫度對酶反應(yīng)生成C-K的影響Fig.7 The effects of temperature on enzyme reaction to C-K

    圖8 pH對酶反應(yīng)生成C-K的影響Fig.8 the effects of pH on enzyme reaction to C-K

    由圖7可知,A.nigersp.G8菌所產(chǎn)酶與三七莖葉總皂苷在45℃反應(yīng)后,C-K的產(chǎn)率最高,達19.67%;由圖8可知,A.nigersp.G8菌所產(chǎn)酶轉(zhuǎn)化三七莖葉總皂苷的pH為5.0時,C-K產(chǎn)率最高,為20.08%。故A.nigersp.G8菌所產(chǎn)酶轉(zhuǎn)化三七莖葉總皂苷的最佳反應(yīng)條件為pH 5.0,45℃,底物質(zhì)量濃度25 g/L,反應(yīng)24 h。

    2.3.3 酶轉(zhuǎn)化產(chǎn)物的HPLC檢測

    用HPLC法檢測三七莖葉總皂苷經(jīng)G8-G4混合酶和A.nigersp.G8菌所產(chǎn)酶轉(zhuǎn)化后的產(chǎn)物,如圖9及表2所示。

    A-G8-G4混合酶轉(zhuǎn)化三七莖葉總皂苷的產(chǎn)物;B-A. niger sp.G8菌所產(chǎn)酶轉(zhuǎn)化三七莖葉總皂苷的產(chǎn)物圖9 G8-G4混合酶和A. niger sp.G8菌所產(chǎn)酶轉(zhuǎn)化三七莖葉總皂苷的HPLC圖Fig.9 Enzyme from G8-G4 enzyme mixture and G8 strains hydrolysis on notoginseng stem-leaf ginsenoside in HPLC注:反應(yīng)時間為24 h。

    表2 G8-G4混合酶、A. niger sp.G8菌所產(chǎn)酶轉(zhuǎn)化三七莖葉總皂苷的產(chǎn)物皂苷比較Table 2 Products from notoginseng stem-leaf ginsenosides by the G8-G4 enzyme mixture, A. niger sp.G8 enzyme

    由圖9和表2可知,A.nigersp.G8菌所產(chǎn)酶轉(zhuǎn)化三七莖葉總皂苷的產(chǎn)物有5種:C-K、C-Mx、Fc、R7、C-Mc;而G8-G4混合酶轉(zhuǎn)化三七莖葉總皂苷的產(chǎn)物有4種:C-K、C-Mx、Fc、R7。

    分析得知,三七莖葉總皂苷中的部分皂苷經(jīng)酶催化降解3-O-或20-O-糖基主要生成C-K、C-Mx、R7、C-Mc,其結(jié)構(gòu)如圖10中所示。初步推斷酶催化降解底物皂苷生成產(chǎn)物的對應(yīng)情況如下:

    Rb1、Rd、Gyp17→降解3-O-和20-O-葡萄糖基→生成C-K;Rc和C-Mc1→降解3-O-葡萄糖基→生成C-Mc和C-K;Rb3和C-Mx1→降解3-O-葡萄糖基→生成C-Mx;Fa→降解20-O-葡萄糖基→生成R7。

    G8-G4混合酶液轉(zhuǎn)化三七莖葉總皂苷的C-K轉(zhuǎn)化得率,相比A.nigersp.G8菌所產(chǎn)酶有所提高,這可能是C-Mc的20-O-阿拉伯糖基繼續(xù)被酶降解轉(zhuǎn)化生成C-K的緣故,圖9-A中沒有檢測到C-Mc,也能說明此結(jié)果。而G8-G4混合酶液和A.nigersp.G8菌所產(chǎn)酶,均不能水解C-Mx的20-O-末端木糖基,也不能水解R7和Fc的3-O-末端木糖基,因此上述2種酶液的催化反應(yīng)產(chǎn)物中均有Fc的殘留。

    圖10 圖2 HPLC中三七莖葉總皂苷的結(jié)構(gòu)式Fig.10 Structure of notoginseng leaf ginsenosides of figure 2 HPLC

    2.4 三七莖葉總皂苷酶轉(zhuǎn)化產(chǎn)物C-K等的制備

    綜上結(jié)果可知G8-G4混合酶液轉(zhuǎn)化三七莖葉總皂苷的C-K得率相比A.nigersp.G8菌所產(chǎn)酶有所提高。其結(jié)果由如下制備生產(chǎn)來驗證。

    將50.0 g三七莖葉總皂苷溶于1 000 mL的20 mmol/L pH 5.0 醋酸-醋酸鈉緩沖液中,分別與等體積G8-G4混合酶或等體積A.nigersp.G8菌所產(chǎn)酶液混合,置于生化反應(yīng)器中,在45℃下攪拌反應(yīng)24 h。反應(yīng)結(jié)束后,分別加入3倍體積的95%(體積分數(shù))乙醇沉淀酶,其上清濃縮后,經(jīng)AB-8脫糖、D-280脫色、濃縮干燥,得到酶反應(yīng)產(chǎn)物混合皂苷。50.0 g三七莖葉總皂苷經(jīng)G8-G4混合酶反應(yīng)后,得到產(chǎn)物33.1 g,得率為66.2%,其中C-K為32.7%;50 g三七莖葉總皂苷經(jīng)A.nigersp.G8菌所產(chǎn)酶反應(yīng)后,得到產(chǎn)物34.9 g,得率為69.8%,其中C-K為24.6%。

    3 結(jié)論

    市銷的三七莖葉總皂苷中,主要為人參二醇類皂苷,其組成成分和含量(質(zhì)量分數(shù))如下:Rb3 26.38%,C-Mx1 14.28%,Rc 12.73%,F(xiàn)c 10.25%,還含有Rb1、Rb2、Rd、Gyp17、R7、C-Mc1等皂苷。

    G8-G4混合酶和A.nigersp.G8菌所產(chǎn)酶轉(zhuǎn)化三七莖葉總皂苷的最佳反應(yīng)條件為45 ℃,pH 5.0,底物質(zhì)量濃度25 g/L、反應(yīng)24 h。

    A.nigersp.G8菌所產(chǎn)酶轉(zhuǎn)化三七莖葉總皂苷的產(chǎn)物有5種:C-K、C-Mx、Fc、R7、C-Mc;而G8-G4混合酶液轉(zhuǎn)化三七莖葉總皂苷的產(chǎn)物有4種:C-K、C-Mx、Fc、R7;且G8-G4混合酶液轉(zhuǎn)化三七莖葉總皂苷的C-K產(chǎn)率比A.nigersp.G8菌所產(chǎn)酶高,推斷是C-Mc被繼續(xù)降解轉(zhuǎn)化生成C-K所致。

    三七莖葉總皂苷和酶轉(zhuǎn)化產(chǎn)物的分析結(jié)果表明,三七莖葉總皂苷中Rb1、Rd、Gyp17、Rc、 Rb3、C-Mc1、 C-Mx1和Fa的3-O-和20-O-葡萄糖基或阿拉伯糖基被酶水解,產(chǎn)物中約含24%~30%(質(zhì)量分數(shù))的C-K。而Fc的3-O-和20-O-末端木糖基無法被酶降解,在酶轉(zhuǎn)化產(chǎn)物中有所殘留。今后,還需進一步開發(fā)能夠降解C-Mx、Rb3、R7、Fa、Fc的3-O-和20-O-末端木糖基的酶,以提高酶轉(zhuǎn)化產(chǎn)物中C-K的含量。

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