幽門螺桿菌的診斷方法及其評價*

彭 磊 魏舒純 張偉鋒 張國新

南京醫(yī)科大學第一附屬醫(yī)院消化科(210029)

幽門螺桿菌(Hp)是一種革蘭陰性螺旋桿菌，最初由Marshall和Warren從慢性胃炎和消化性潰瘍的胃黏膜中分離而來[1-2]。近年來，Hp已成為全球感染率最高的細菌之一，亞洲Hp感染率高于北歐和北美，高達54%～76%[3]。Hp感染與多種消化道疾病的發(fā)生相關(guān)。研究指出胃炎、消化性潰瘍、胃黏膜相關(guān)淋巴樣組織(MALT)淋巴瘤以及胃癌的發(fā)生與Hp感染有密切聯(lián)系[4-6]。在臨床實踐中，Hp感染可影響治療方案的選擇，因此檢測Hp尤為重要。目前Hp診斷方法主要分為侵入性檢測和非侵入性檢測，不同方法有其優(yōu)缺點。本文就Hp的診斷方法及其評價作一綜述。

一、非侵入性檢測

非侵入性檢測具有經(jīng)濟、舒適、安全性高等優(yōu)點，是進行流行病學調(diào)查的最佳選擇，適用于不能行侵入性檢測的人群[7]。

1.13C或14C-尿素呼氣試驗(UBT)：13C-UBT檢測Hp的敏感性和特異性均高于90%，是一種簡便、可靠、無損傷的方法[8-9]。但13CO2的測定較為復雜，需應(yīng)用質(zhì)譜儀，費用昂貴。Maiga等[10]的研究發(fā)現(xiàn)13C-UBT亦可用于診斷結(jié)核分枝桿菌，因此可能影響13C-UBT診斷Hp的特異性。Maity等[11]指出13C與18O-尿素結(jié)合檢測可輔助診斷Hp，但需更多實驗數(shù)據(jù)證實其檢測價值。14C-UBT診斷Hp的敏感性和特異性分別為96%和93%[12]。14C價格低廉，但有放射性，對兒童、孕婦不適用。UBT是目前臨床應(yīng)用最廣泛、準確性相對較高的檢測方法，被認為是非侵入性檢測診斷Hp感染的“金標準”。

2. 血清學試驗：血清學試驗包含酶聯(lián)免疫吸附測定(ELISA)、蛋白質(zhì)印跡法和凝集試驗。ELISA法可檢測外周血中Hp全菌及其組分的抗體，通常使用試劑盒檢測，該法操作簡便。蛋白質(zhì)印跡法通過檢測Hp中不同分子質(zhì)量的蛋白組分，顯色后可判斷血清中不同蛋白的表達情況，但該法操作復雜，技術(shù)難度大且結(jié)果不穩(wěn)定。凝集試驗通過乳膠顆粒上的Hp抗原檢測血中抗體，血樣需要量少，但準確性稍低。血清學試驗的敏感性高達90%～97%，但特異性為50%～96%[13]。聯(lián)合使用血清學檢測可能會進一步增加檢測的敏感性和特異性，但不能用于診斷Hp現(xiàn)癥感染，即便成功根除Hp，血清Hp抗體仍需6個月以上才消失[14]。基于原位純化的谷胱甘肽S轉(zhuǎn)移酶的多重血清學研究[15]發(fā)現(xiàn)Hp感染在EB病毒陽性胃癌中起有重要作用。日本一項研究[16]在青少年中用唾液或尿液代替血清學試驗進行檢測Hp，結(jié)果顯示與血清學試驗相比，其敏感性和特異性較差，但在使用特殊裝置后可改善敏感性和特異性，分別可達88.4%和95%，但蛋白尿可能會產(chǎn)生假陽性。

3. 糞便抗原檢測(SAT)：SAT是基于糞便中Hp抗原的一種快速、簡單的檢測技術(shù)。目前使用的抗體由多克隆抗體逐漸轉(zhuǎn)變?yōu)閱慰寺】贵w，其敏感性和特異性均低于UBT，在Hp根除治療前，SAT與UBT診斷Hp的準確性相似，但在Hp根除治療后，SAT僅能作為UBT后的第2選擇[17]。

4. 其他：血清碳酸氫鹽和氨蒸氣檢測亦是基于尿素酶原理的檢測方法[18]。前一種方法可檢測血清中13C-碳酸鹽含量，適用于Hp治療后的檢測；后一種方法檢測患者呼氣中氨氣含量，價格較低?；贖p抗原檢測的Rapirun尿抗原檢測法的敏感性和特異性均低于13C-UBT或SAT[19]。一項研究[20]表明，唾液的抗原檢測準確性僅為59%，顯著低于活檢準確性。一項納入4 963名受試者的meta分析結(jié)果顯示，尿液抗Hp IgG檢測診斷Hp的敏感性為83%，特異性為89%[21]。

二、侵入性檢測

1. 快速尿素酶試驗(RUT)：RUT為侵入性檢測中的首選方法，診斷Hp的敏感性可高達95%，特異性為85%～95%[22]。Dolak等[23]用一種新型液體RUT對183例患者進行檢測，發(fā)現(xiàn)其診斷敏感性為85%，特異性為94%。一種超快速RUT的敏感性和特異性均與普通RUT相比無明顯差異，但診斷速度顯著快于RUT[24]。RUT的優(yōu)點為簡單、費用低、診斷速度快，診斷敏感性和特異性高，但檢測結(jié)果會受觀察時間、細菌數(shù)量、胃內(nèi)pH值、取材部位、取材大小、試劑質(zhì)量等因素的影響[25]。

2. 組織切片病理染色：常用的Hp染色方法有Warthin-Starry銀染色、Giemsa染色、Genta染色、甲苯胺藍染色、免疫組化染色、HE染色。Warthin-Starry銀染色效果最好，但對技術(shù)要求較高；Giemsa染色最為常見，敏感性較高，甲苯胺藍染色與Giemsa染色效果類似，但費用較高。組織學診斷Hp可同時進行胃黏膜病理學診斷，對有胃癌高危因素的患者更主張行組織學檢測，對判斷預(yù)后和制定治療措施意義重大。但其為依賴胃鏡的侵入性檢查，檢測結(jié)果除受取材部位、取材大小、細菌數(shù)量等因素影響外，組織的病理改變和染色方法亦會影響檢出率。一項包含2 896例活檢標本的研究[26]表明Giemsa染色、免疫組化染色對Hp的敏感性分別為83.3%、98.8%。目前歐洲共識推薦的Hp染色方法為免疫組化染色[27]。

3. 細菌培養(yǎng)：細菌培養(yǎng)指模擬體內(nèi)微氧環(huán)境和營養(yǎng)環(huán)境取胃黏膜組織進行Hp培養(yǎng)。培養(yǎng)基主要包括兩類，即非選擇性培養(yǎng)基和在非選擇性培養(yǎng)基基礎(chǔ)上加入抑制其他細菌生長的抗菌物質(zhì)(以提高標本中Hp的檢出率)。近期有研究[28]表明，將Hp培養(yǎng)條件改為厭氧條件時，Hp的生長顯著快于微氧環(huán)境。Kuhns等[29]在培養(yǎng)Hp的氣體中加入H2，發(fā)現(xiàn)Hp的生長速度增加了40%～60%。含有Hp的組織須在最短時間內(nèi)進行培養(yǎng)，且口腔和糞便樣本較少使用細菌培養(yǎng)。多數(shù)情況下細菌培養(yǎng)用于藥敏試驗以選擇合適的抗菌藥物行Hp根除治療。細菌培養(yǎng)診斷Hp的敏感性為50%～95%，特異性>95%[9]。

4. 聚合酶鏈反應(yīng)(PCR)相關(guān)技術(shù)：PCR的優(yōu)勢在于對標本要求較低，新鮮組織樣本、石蠟包埋或RUT后標本均可行PCR檢測?；赑CR技術(shù)衍生出多種檢測方法，包括PCR-限制性片段長度多態(tài)性(PCR-RFLP)、PCR-同源雙鏈優(yōu)先形成試驗(PCR-PHFA)、實時熒光定量PCR(qRT-PCR)、細菌基因組重復序列PCR、反向雜交技術(shù)、基因型HelicoDR試驗、雙引物寡核苷酸-PCR(DPO-PCR)。PCR-RFLP 主要擴增Hp 23S rRNA基因中可能含有突變的片段，該技術(shù)操作簡便，敏感性較高，但準確性受實驗條件、標本取材等因素影響[30]。PCR-PHFA利用雙標記的DNA探針與未標記的DNA樣本進行混合、變性，當序列一致時退火雜交，該方法可同時處理多個樣本。Ogura等[31]用PCR-PHFA檢測461例標本，Hp陽性率為78.1%。qRT-PCR是一種定量檢測方法，敏感性和特異性均高于普通PCR。Bakri[32]采用qRT-PCR檢測100例糞便樣本，結(jié)果顯示對克拉霉素耐藥基因檢測的敏感性為93%，特異性為100%。Chung等[33]應(yīng)用DPO-PCR對胃活檢標本進行Hp的檢測，結(jié)果顯示其敏感性為97.2%、特異性為91.8%。DPO-PCR能在數(shù)小時內(nèi)完成Hp感染的判斷和耐藥性的檢測。Lehours等[34]對胃黏膜標本進行DPO-PCR檢測，發(fā)現(xiàn)其敏感性為97.7%，特異性為83.1%?？傊?，PCR相關(guān)技術(shù)檢測Hp的敏感性較高，但其對胃鏡檢查、實驗操作的要求較高。

5. DNA測序：DNA測序主要用于檢測耐藥基因突變，新一代測序(NGS)技術(shù)的出現(xiàn)可實施大規(guī)模測序并減少成本。目前應(yīng)用NGS技術(shù)檢測克拉霉素、喹諾酮、四環(huán)素等抗菌藥物耐藥情況主要集中于對數(shù)個基因片段的耐藥突變檢測[35]，但該方法成本過高，大規(guī)模臨床應(yīng)用仍存在諸多問題。

6. 熒光原位雜交(FISH)：FISH是基于熒光素標記的靶向Hp 16S rRNA和23S rRNA基因的寡核苷酸探針，將探針雜交至染色體或DNA纖維切片上，再利用單克隆抗體與探針分子特異性結(jié)合，從而對DNA序列進行定性、定位、相對定量的分析。其優(yōu)點為僅需在組織塊上完成檢測，特異性較高，檢測快速，且能進行克拉霉素耐藥性的檢測，但無法檢測其他抗菌藥物的耐藥性。FISH的探針可能被樣本中的蛋白酶和核酸酶降解，到達rRNA的目標區(qū)域較困難。其總敏感性達97%、特異性達94%[36]。目前出現(xiàn)了一些基于FISH的新技術(shù)，如熒光體內(nèi)雜交(FIVH)，其是激光共聚焦顯微鏡、FISH和免疫組化技術(shù)的結(jié)合。一項對小鼠的研究[37]發(fā)現(xiàn)，F(xiàn)IVH可直接觀察Hp在胃黏膜組織和胃上皮細胞中的分布和運動，但其應(yīng)用于臨床仍需進一步探索。

7. 內(nèi)鏡診斷：隨著內(nèi)鏡技術(shù)的不斷發(fā)展，學者們越來越關(guān)注內(nèi)鏡診斷Hp的能力。Hp感染的普通白光內(nèi)鏡下表現(xiàn)主要為黏液附著、彌漫性發(fā)紅、點狀發(fā)紅、皺襞增生、黏膜水腫、排列規(guī)則的集合小靜脈消失、黏膜馬賽克樣改變或馬賽克樣改變伴中心或周圍充血[38]。色素內(nèi)鏡將色素染料導入內(nèi)鏡下需觀察的黏膜，使病灶與正常黏膜顏色對比更突出，有利于病變的檢出和診斷，但其容易形成假陽性且不可重復觀察。放大內(nèi)鏡在普通白光內(nèi)鏡的基礎(chǔ)上進行放大，小梁結(jié)構(gòu)不清、集合靜脈不規(guī)則或消失、胃黏膜腺管開口為白色或純白色、胃小凹為短棒狀、樹枝狀或條紋狀、斑塊狀或網(wǎng)格狀提示Hp感染[39]。此外，一些電子染色內(nèi)鏡技術(shù)如窄帶成像內(nèi)鏡(NBI)、智能電子染色內(nèi)鏡(i-scan)、智能分光比色內(nèi)鏡(FICE)、聯(lián)動成像技術(shù)(LCI)、藍激光成像(BLI)等操作簡單，可隨時切換模式，增強病變的對比性，但電子染色內(nèi)鏡的光強度較弱，難以觀察到整個胃部[39-40]。共聚焦激光顯微內(nèi)鏡是將微型共聚焦激光顯微鏡整合于傳統(tǒng)白光內(nèi)鏡的頭端而成，診斷Hp的敏感性為 89.2%，特異性為 89.2%[41]。共聚焦激光顯微內(nèi)鏡不僅無創(chuàng)、便捷、準確，還可實現(xiàn)黏膜病變的靶向活檢。但其發(fā)展時間尚短，內(nèi)鏡醫(yī)師經(jīng)驗不足等因素均可能影響診斷結(jié)果。

三、結(jié)語

在胃腸道疾病的臨床治療過程中，Hp感染會影響治療方案的選擇。檢測手段通常分為侵入性和非侵入性兩大類：①侵入性檢測是指內(nèi)鏡下診斷或在內(nèi)鏡下取胃黏膜活組織進行檢測，主要包括RUT、組織學檢查、Hp培養(yǎng)、PCR相關(guān)技術(shù)、DNA測序等，此類檢測方法準確性較高，但操作過程中患者較痛苦，且檢查價格較昂貴；②非侵入性檢測包括13C或14C-UBT、糞便Hp抗原檢測以及血清學試驗，此類檢查無創(chuàng)，易于被患者接受。在臨床工作中，13C或14C-UBT由于準確性和敏感性高且患者耐受性良好，被認為是非侵入性檢測診斷Hp感染的“金標準”。在科研工作中，免疫組化染色、PCR以及FISH則是較常應(yīng)用且準確性、敏感性較高的Hp檢測手段。綜上所述，各種Hp檢測方法均有其優(yōu)缺點，為提高診斷效率，可將多種技術(shù)聯(lián)合應(yīng)用。