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    一種共生藻PCR模板DNA的快速制備法

    2019-12-19 06:20:24禤金彩
    關(guān)鍵詞:條帶樹(shù)脂供試

    龍 寒,禤金彩

    (廣西民族大學(xué)海洋與生物技術(shù)學(xué)院、廣西海洋微生物資源產(chǎn)業(yè)化工程技術(shù)研究中心、廣西多糖材料與改性重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,廣西 南寧530008)

    共生藻(Symbiodinium)是共生于海洋無(wú)脊椎動(dòng)物體內(nèi)的單細(xì)胞藻類(lèi),依靠光合作用為宿主提供氨基酸、糖等生長(zhǎng)必需的化合物[1]。異養(yǎng)營(yíng)養(yǎng)盡管能為宿主供給部分代謝能量[2],但由于其自然來(lái)源的不穩(wěn)定性等特征,只能作為宿主的次要能量來(lái)源。因此,在含藻共生體生活史上,共生藻具有不可替代的重要性。

    目前國(guó)內(nèi)外對(duì)共生藻的研究主要包括共生藻的分類(lèi)鑒定[3]、共生藻的逆境生理[4]、共生藻與宿主的共生機(jī)制[5]等,其中利用基因組學(xué)和轉(zhuǎn)錄組學(xué)展開(kāi)的基因表達(dá)調(diào)控機(jī)制是共生藻研究的前沿和熱點(diǎn),而作為PCR模板的DNA制備是對(duì)共生藻開(kāi)展分子水平研究的基礎(chǔ)。

    對(duì)于共生藻DNA的提取,既有采用先與宿主分離再進(jìn)行DNA提取的方法[6],也有采用與宿主混合采樣的提取方法[7]。在實(shí)際操作中,許多共生體(如珊瑚)由于其產(chǎn)生大量粘多糖,共生藻往往難于分離,李秀保等(2009)提出用沖洗法對(duì)活體珊瑚共生藻進(jìn)行分離[8];張露(2017)比較了沖洗法、液氮研磨法和酒精研磨法對(duì)共生藻的分離效果,發(fā)現(xiàn)酒精研磨法分離效率高、分離質(zhì)量好[9];張躍環(huán)等(2018)提出了用毛細(xì)管法獲得硨磲單克隆共生藻[10]。在共生藻DNA提取方面,目前常用的方法有TRIZOL提取法、CTAB提取法、改良SDS提取法等。SDS對(duì)于多糖的去除能力較差,提取效果不佳;CTAB法操作繁瑣、耗時(shí)長(zhǎng)、試劑具有毒性;TRIZOL抽提法盡管樣品消耗量小操作較為簡(jiǎn)單,但苯酚、異硫氰酸胍等試劑毒性強(qiáng),對(duì)人體及環(huán)境危害性大。

    本研究采用Chelex-100樹(shù)脂法,制備可應(yīng)用于PCR的模板DNA,旨在探索一種便捷、高效、安全的共生藻DNA提取法。Chelex-100 是由苯乙烯、二乙烯苯共聚體組成的化學(xué)螯合樹(shù)脂,含有成對(duì)的亞氨基二乙酸鹽離子,可螯合多價(jià)離子,對(duì)高價(jià)金屬離子有很高的親和力和螯合作用。在低離子強(qiáng)度、堿性及煮沸的條件下,Chelex-100可以使細(xì)胞膜破裂、蛋白質(zhì)變性,能有效去除非核酸有機(jī)物,保留DNA。Chelex-100樹(shù)脂法由于其便捷性被廣泛應(yīng)用于法學(xué)鑒定如血液、血痕、組織和骨骼等DNA的提取中[11-13],在真菌[14]、細(xì)菌[15]、放線(xiàn)菌[16]等原核生物以及高等植物[17-18]DNA提取中也有使用,但目前未見(jiàn)用于藻類(lèi)DNA提取的報(bào)道。

    本研究首次將Chelex-100應(yīng)用于藻類(lèi)DNA提取,成功制備了共生狀態(tài)及純培養(yǎng)狀態(tài)下的27份共生藻樣品DNA,并通過(guò)葉綠體23S rDNA基因片段擴(kuò)增驗(yàn)證了提取效果(葉綠體23S rDNA含有演化速度很高的V區(qū)域,在共生藻種屬水平分類(lèi)上是十分有效的研究工具[19]),以期為共生藻分子分類(lèi)、功能基因研究等分子水平研究工作的效率提升提供一定的技術(shù)參考。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 供試生物 供試生物樣品及其編號(hào)見(jiàn)表1, 純培養(yǎng)共生藻GY-H50分離自東海舟山海域。

    表1 供試生物樣品及其編號(hào)Tab.1 Biological samples for experiment and numeration

    1.1.2 試劑 Chelex-100的制備:將Chelex-100膠體顆粒浸泡于去離子水中,在121℃下滅菌15 min用于DNA提??;23S-M引物由北京奧科鼎盛公司合成提供,序列為23S-M/F(5’-CACGACGTTGTAAAACGACGGCTGTAACTATAACGGTCC-3’),23S-M/R(5’-GGATAACAATTTCACACAGGCCATCGTATTGAACCCAGC-3’)[19];新設(shè)計(jì)引物23S-N由上海生工合成提供,序列為23S-N/F(5’-CCTGCATGAAACATAGAACGATT-3’),23S-N/R(5’-CAGGCCATCGTATTGAACCC-3’);2×Taq PCR Master Mix、DL2000 DNA marker購(gòu)自康為世紀(jì)。

    1.1.3 培養(yǎng)基 共生藻GY-H50采用f/2海水培養(yǎng)基進(jìn)行培養(yǎng)[20]。

    f/2海水培養(yǎng)基(1 000 cm3):NaNO375 mg,NaH2PO4·H2O 5 mg,維生素B10.1 mg,維生素B120.000 5 mg,生物素 0.000 5 mg,Na2SiO3·9H2O 30 mg,微量元素母液 1.0 cm3。

    微量元素母液(1 000 cm3):ZnSO4·7H2O 22 mg,EDTANa24.36 g,Na2MoO4·2H2O 6 mg,CuSO4·5H2O 10 mg,CoCl2·6H2O 10 mg,MnCl2·4H2O 180 mg,F(xiàn)eCl3·6H2O 3.15 g。

    1.2 方法

    1.2.1 實(shí)驗(yàn)取材 具有伸展組織的生物體在其自然伸展?fàn)顟B(tài)下迅速剪取小塊組織約2 mm3(如葵珊瑚的觸手、硨磲的外套膜等);腦珊瑚、海綿用眼科剪連骨剪取約3~4 mm3的組織。剪取的組織放入裝有0.5 cm3無(wú)菌海水的EP管內(nèi),輕輕震蕩后,將組織轉(zhuǎn)移至另一只裝有無(wú)菌海水的管內(nèi),如此進(jìn)行3~5次清洗,最后將組織轉(zhuǎn)移至裝有0.2 cm3無(wú)菌蒸餾水的EP管內(nèi),以滅菌解剖針對(duì)其進(jìn)行搗碎,搗碎時(shí),可見(jiàn)管內(nèi)液體變黃。吸取黃色樣品液0.1 cm3放入PCR管內(nèi),再加入 Chelex-100膠體顆粒25 mm3。

    在生物體(硨磲、海葵、葵珊瑚等)自然伸展?fàn)顟B(tài)下迅速剪取材料,可見(jiàn)生物體仍然保持伸展?fàn)顟B(tài),幾乎不受取樣影響,而所有的生物體在取樣后均能正常生長(zhǎng),可見(jiàn),此取樣方法對(duì)生物體基本不構(gòu)成傷害,能確保生物體繼續(xù)存活并可支持更多次實(shí)驗(yàn)。

    取共生藻GY-H50的純培養(yǎng)藻液1 cm3,于6 000 r/min下離心10 min收集藻體,沉淀用0.1 cm3無(wú)菌水重懸后轉(zhuǎn)移至PCR管,加入Chelex-100膠體顆粒25 mm3。

    1.2.2 DNA提取 樣品經(jīng)沸水浴(99~100℃)15 min后,6 000 r/min離心3 min,上清液即為DNA提取液。

    1.2.3 PCR擴(kuò)增及效果檢驗(yàn) PCR擴(kuò)增反應(yīng)25 mm3體系包括: 2×Taq PCR Master Mix 12.5 mm3、上游引物0.5 mm3、下游引物0.5 mm3、DNA提取液1 mm3、雙蒸水10.5 mm3。

    PCR程序?yàn)椋?5℃預(yù)變性7 min;95℃變性0.5 min,55℃退火1.5 min,74℃延伸1 min 30 s,循環(huán)30次;74℃延伸10 min。

    PCR產(chǎn)物初步檢驗(yàn):采用2%瓊脂糖凝膠進(jìn)行水平電泳。電泳在120 V電壓下進(jìn)行20 min左右。以DL2000 為 marker,marker與樣品上樣量均為2 mm3。電泳結(jié)束后將凝膠置于0.5 ug/cm3EB染液中浸泡30 min顯色,再于凝膠成像儀內(nèi)260 nm紫外光下進(jìn)行拍照。

    PCR產(chǎn)物測(cè)序:將電泳檢驗(yàn)中有條帶的擴(kuò)增樣品送至廣州天一輝遠(yuǎn)基因科技有限公司進(jìn)行測(cè)序,所得序列在NCBI中進(jìn)行Nucleotide BLAST查詢(xún)比對(duì)。

    1.2.4 引物設(shè)計(jì) 用序列比對(duì)軟件AlignX分析最初獲得的22條23S rDNA序列,判斷序列的保守區(qū)。選擇一條序列作為模板,載入引物設(shè)計(jì)軟件Oligo7,根據(jù)保守區(qū)選擇上游引物位置并設(shè)定預(yù)期擴(kuò)增片段長(zhǎng)度為650 bp,Search完成引物設(shè)計(jì)。設(shè)計(jì)完成的引物通過(guò)Analyse進(jìn)行評(píng)價(jià),確定序列。

    2 結(jié)果與討論

    2.1 瓊脂糖凝膠電泳結(jié)果

    經(jīng)過(guò)Chelex-100樹(shù)脂熱裂解后制備所得的27份DNA樣品,取1 mm3為模板,以23S-M為引物進(jìn)行PCR擴(kuò)增,擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)瓊脂糖凝膠水平電泳檢驗(yàn),結(jié)果如圖1所示,得到了22條清晰條帶的電泳圖,其中4、8、11、12、20號(hào)樣品為雙條帶,判斷原因?yàn)橐锾禺愋圆蛔阍斐桑?、5、10、15、19、21號(hào)生物樣品未擴(kuò)增出條帶。所有獲得條帶除23號(hào)樣品(750 bp)外,大小基本一致,在700 bp左右;marker及樣品上樣量均為2 mm3,從亮度對(duì)比來(lái)看,所獲得的擴(kuò)增產(chǎn)物具有較高的濃度,符合測(cè)序要求。

    圖1 供試生物樣品共生藻及GY-H50 DNA提取物的23S-M PCR擴(kuò)增結(jié)果Fig.1 23S-M PCR products by DNA extracts from experimental biological samples’ symbiodiniums and GY-H50M:DL2000 DNA marker;1~26、GY-H50:1~26號(hào)樣品共生藻及GY-H50 DNA提取物的23S-M PCR擴(kuò)增產(chǎn)物;其中,1~24對(duì)應(yīng)左側(cè)marker,25、26、GY-H50對(duì)應(yīng)右側(cè)marker。

    針對(duì)未擴(kuò)增出條帶的6份樣品,利用測(cè)序返回的22份序列,按照“1.2.4”的方法進(jìn)行引物設(shè)計(jì),得到新引物23S-N。PCR所使用的模板DNA仍然采用“1.2.2”制備的DNA提取液(-20℃保存),無(wú)需重新制備。擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)瓊脂糖凝膠水平電泳檢驗(yàn),結(jié)果如圖2所示,除3號(hào)樣品外,其余均擴(kuò)增出了700 bp左右的條帶,條帶明亮、清晰,符合測(cè)序要求。3號(hào)樣品未擴(kuò)增成功的原因,可能是所設(shè)計(jì)的引物不匹配。

    圖2 部分供試生物樣品共生藻DNA提取物的23S-N PCR擴(kuò)增結(jié)果Fig.2 23S-N PCR products by DNA extracts from part experimental biological samples’ symbiodiniumsM:DL2000 DNA marker;3、5、10、15、19、21: 3、5、10、15、19、21號(hào)樣品共生藻DNA提取物的23S-N PCR擴(kuò)增產(chǎn)物。

    2.2 擴(kuò)增序列測(cè)序結(jié)果

    擴(kuò)增產(chǎn)物針對(duì)700 bp片段進(jìn)行測(cè)序,共獲得26個(gè)基因序列,將序列依次在NCBI 中進(jìn)行Nucleotide BLAST查詢(xún)比對(duì),選擇分值最高項(xiàng)且E值最小項(xiàng)編入表2(E值是分值score的可靠性評(píng)價(jià),即隨機(jī)情況下,其他序列與目標(biāo)序列)。從表2可以看到,所有比對(duì)結(jié)果與擴(kuò)增的目的基因一致,均為葉綠體23S rDNA,覆蓋率最低為95%,一致性最低為90%,說(shuō)明比對(duì)結(jié)果可信度高,序列擴(kuò)增正確。該結(jié)果說(shuō)明由Chelex-100樹(shù)脂熱裂解制備的模板DNA具有PCR可操作性。

    從表2統(tǒng)計(jì)結(jié)果中可看到:在被測(cè)27份共生藻中,A類(lèi)群共生藻僅見(jiàn)于簾形目即番紅硨磲(Tridacnacrocea),B類(lèi)群共生藻跨類(lèi)珊瑚目和角???jī)赡?,存在于氣泡菇珊?Ricordeaflorida)及角???Cerianthussp.)中,C類(lèi)群共生藻共生范圍跨度最大,存在于石珊瑚目、軟珊瑚目、???、群體??考绊g海綿目中,東海舟山海域分離培養(yǎng)的共生藻GY-H50為E類(lèi)群共生藻,為共生藻屬中營(yíng)自由生活的種類(lèi)。本次實(shí)驗(yàn)為確保采樣種類(lèi)的多樣性,使用了3門(mén)3綱9目20科23屬26個(gè)物種作為生物樣品。測(cè)序結(jié)果發(fā)現(xiàn)C類(lèi)群共生藻是本次模擬調(diào)查范圍中的優(yōu)勢(shì)種,該結(jié)果與Huang等(2006)對(duì)造礁石珊瑚共生藻遺傳多樣性調(diào)查結(jié)果一致[21]。實(shí)驗(yàn)結(jié)果還可為后續(xù)共生藻分子系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)的構(gòu)建、共生藻的系統(tǒng)發(fā)生關(guān)系分析以及共生關(guān)系生態(tài)學(xué)研究提供參考數(shù)據(jù)。

    表2 供試生物樣品共生藻及GY-H50 的PCR擴(kuò)增序列比對(duì)結(jié)果
    Tab.2 BLAST results of PCR amplified sequences from experimental biological samples’ symbiodiniums and GY-H50

    編號(hào)比對(duì)結(jié)果描述最高分值總分值覆蓋率/%E值相似性/%來(lái)源1Symbiodiniumsp.Cp923SribosomalRNAgene,partialsequence;chloroplast1038103898099FJ461486.12Symbiodiniumsp.Achy17_Pool400cladeC23SribosomalRNAgene,partialsequence;chloroplast10661066990100HQ631382.14Symbiodiniumsp.Achy17_Pool400cladeC23SribosomalRNAgene,partialsequence;chloroplast10701070990100HQ631382.15Symbiodiniumsp.C1isolateCC3523SribosomalRNAgene,partialsequence;chloroplast9379371000100KR002412.16Symbiodiniumsp.clade_BisolatePk1323SribosomalRNAgene,partialsequence;chloroplastgeneforchloroplastproduct10861086980100AY055231.17Symbiodiniumsp.cladeCchloroplastgenefor23SribosomalRNA,partialsequence1081108199099AB159231.18NculturedSymbiodiniumsp.clonePavd1522c1FFS23SribosomalRNAgene,partialsequence;chloroplast30744595090KF623573.19Symbiodiniumsp.C1cpchloroplastpartial23SrRNAgene,isolate6341X10681068980100FN298482.110Symbiodiniumsp.cladeBisolateSSB0123SribosomalRNAgene,partialsequence;chloroplast9319311000100JX221048.111Symbiodiniumsp.cladeCchloroplastgenefor23SribosomalRNA,partialsequence1064106499099AB159231.112Symbiodiniumsp.cladeCchloroplastgenefor23SribosomalRNA,partialsequence61770098099AB159231.113Symbiodiniumsp.cladeCchloroplastgenefor23SribosomalRNA,partialsequence1077107799099AB159231.114Symbiodiniumsp.C1cpchloroplastpartial23SrRNAgene,isolate6341X10721072980100FN298482.1

    續(xù)表2

    注:3號(hào)供試生物樣品共生藻未擴(kuò)出。

    2.3 討論

    對(duì)于Chelex-100樹(shù)脂法,戴文申等(2006)利用該法提取痕量DNA的研究中指出,56℃保溫15~30 min、100℃保溫15 min左右(不超過(guò)30 min)有利于細(xì)胞核的裂解,促進(jìn)DNA的釋放[22],但周雙清等(2010)在對(duì)放線(xiàn)菌進(jìn)行Chelex-100樹(shù)脂熱裂解時(shí)僅通過(guò)沸水浴10 min即獲得了良好的PCR模板DNA[23]。共生藻在共生生物體內(nèi)含量可高達(dá)3.95×106cells/cm2[24],即使是少量的材料(如本次實(shí)驗(yàn)采樣量),在稍加攪拌或吹打的情況下,即可見(jiàn)棕黃色的藻液被釋放出來(lái),可見(jiàn)細(xì)胞含量充足,不屬于痕量DNA提取,因此可以縮短實(shí)驗(yàn)步驟,不進(jìn)行56℃保溫;而與原核生物相比,藻類(lèi)DNA提取又存在細(xì)胞壁破碎這一屏障,因此實(shí)驗(yàn)采用了Chelex-100樹(shù)脂熱裂解15 min提取的共生藻DNA樣品。擴(kuò)增產(chǎn)物電泳條帶明亮清晰、能夠測(cè)出有效序列,說(shuō)明Chelex-100樹(shù)脂法能夠快速實(shí)現(xiàn)腔腸動(dòng)物、海綿動(dòng)物、軟體動(dòng)物的共生藻-宿主混合樣品或者純培養(yǎng)共生藻樣品的DNA提取,且制備的模板DNA能夠滿(mǎn)足PCR擴(kuò)增需求。

    值得注意的是,許多含有共生藻的生物都屬于珍稀物種[如石珊瑚、庫(kù)氏硨磲(Tridacnagigas)等],進(jìn)行科研實(shí)驗(yàn)時(shí),在確保完成科研工作的基礎(chǔ)上探索更合理的可持續(xù)實(shí)驗(yàn)?zāi)J绞敲恳晃豢蒲泄ぷ髡叨紤?yīng)當(dāng)充分考慮的問(wèn)題,具體做法如盡可能減少樣品的消耗量、采用不危及生物體生命的采樣方式、采用人工養(yǎng)殖代替自然采集(如果是生態(tài)調(diào)查,應(yīng)當(dāng)在滿(mǎn)足調(diào)查的同時(shí)盡可能減少取樣量)、生態(tài)調(diào)查中所取的樣品合理地放歸原環(huán)境等[25]。

    3 結(jié)論

    采用Chelex-100進(jìn)行了3門(mén)3綱9目20科23屬26個(gè)物種的共生藻及1株純培養(yǎng)共生藻的PCR模板DNA快速制備,并通過(guò)PCR擴(kuò)增23S rDNA基因片段進(jìn)行制備效果檢驗(yàn),結(jié)果表明,制備過(guò)程通過(guò)Chelex-100樹(shù)脂熱裂解15 min,即能為26份樣品提供合格的PCR擴(kuò)增DNA模板(有1份樣品未能擴(kuò)增成功判斷原因?yàn)橐锊黄ヅ?。實(shí)驗(yàn)結(jié)果說(shuō)明Chelex-100樹(shù)脂法能夠用于多種狀態(tài)及類(lèi)型共生藻的PCR模板DNA制備,且具有操作簡(jiǎn)單、耗時(shí)短、無(wú)污染、無(wú)設(shè)備要求、樣品消耗量小等優(yōu)點(diǎn)。

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