劉 昊 杜 嘉 馮培培 阮 晨 張偉波 朱仲華 周 馳 李新偉
腦出血(intracerebral hemorrhage,ICH)是一種常見且具有較高的死亡率和發(fā)病率的卒中亞型,每年占全球腦卒中的10%~15%[1]。幸存患者多因血腫引起神經(jīng)元死亡,導(dǎo)致嚴(yán)重的神經(jīng)功能缺損[2]。隨著對(duì)ICH 腦損傷機(jī)制研究的日益深入,防治腦損傷、提高神經(jīng)細(xì)胞存活率、保護(hù)神經(jīng)細(xì)胞功能已成為ICH 機(jī)理研究和探索治療方法的重要突破點(diǎn)。ICH后細(xì)胞死亡主要有三種類型,包括細(xì)胞壞死、凋亡和自噬性細(xì)胞死亡[3]。研究表明,血腫周邊組織細(xì)胞中存在大量自噬小體結(jié)構(gòu),證實(shí)腦出血可以誘導(dǎo)自噬的激活[4]。自噬的激活很可能是細(xì)胞為了清除胞質(zhì)中受損的細(xì)胞器和有害物質(zhì)而發(fā)生的自我保護(hù)機(jī)制[5]。本研究通過建立自體血ICH 大鼠模型,運(yùn)用免疫印跡、Western Blot 技術(shù),以自噬相關(guān)蛋白p62、Beclin-1 為切入點(diǎn),探究針刺對(duì)ICH 大鼠腦組織自噬表達(dá)的影響。
1.1 動(dòng) 物 本研究所有研究流程遵循科技部頒布的《關(guān)于善待實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的指導(dǎo)性意見》相關(guān)規(guī)定,符合浙江省立同德醫(yī)院實(shí)驗(yàn)動(dòng)物福利和倫理委員會(huì)標(biāo)準(zhǔn)(編號(hào):XMSB20180007)。80只SPF級(jí)雄性Sprague-Dawley 大鼠(250~300g)購置于浙江省實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心,許可證號(hào)SCXK(浙)2014-0001。飼養(yǎng)在室溫和濕度人工可控條件下,光照周期12h/12h,給予自由標(biāo)準(zhǔn)飲食飲水。
1.2 主要儀器與試劑 立體定位儀(STW-3X,中國成都儀器廠);石蠟切片機(jī)(CUT5062,德國SELL);生物組織包埋機(jī)(TKY-BMB,湖北泰康醫(yī)療設(shè)備有限公司);華佗牌針灸針(0.35mm×40mm,蘇州醫(yī)療用品廠有限公司);生物組織全自動(dòng)脫水機(jī)(TKY-BMB,常州郝思琳醫(yī)用儀器有限公司);電泳儀(B1650001,上海迪申生物技術(shù)有限公司);微量注射器(0406-029K,上海高鴿);顯微鏡(BX50,日本Oympus);低溫離心機(jī)(002421,美國Thermo)。多聚甲醛(批號(hào)AR1068,武漢博士德生物有限公司);PBS 緩沖液(批號(hào)AR0030,武漢博士德生物有限公司);BCA 蛋白濃度測定試劑盒(批號(hào)P0012S,碧云天試劑盒);PVDF膜(批號(hào)IPVH00010,德國Millipore);兔抗p62 多克隆抗體(批號(hào)ab56416,英國Abcam);兔抗Beclin-1多克隆抗體(批號(hào)ab62557,英國Abcam);兔抗GAPDH 多克隆抗體(批號(hào)ab8245,英國Abcam);羊抗兔IgG(批號(hào)ab6721,英國Abcam)。
2.1 腦出血模型制備方法 根據(jù)大鼠立體定位圖譜[6](見插頁圖1)制備大鼠腦出血(ICH)模型[7]。大鼠腹腔注射戊巴比妥鈉(30mg/kg)麻醉。將其俯臥位固定于腦立體定向儀上,頭皮中線切口以暴露顱骨和前囟點(diǎn),在右側(cè)前囟點(diǎn)后0.24mm,旁開3.5mm 鉆直徑1mm 的孔洞。50μL 自體血通過微量注射器注入到尾狀核(坐標(biāo):AP:-0.24mm,L:3.5mm,D:6mm),以10μL/min 的速度緩慢注入自體血,留針5min 后緩慢退針(見插頁圖1)。切口縫合消毒。假手術(shù)組中大鼠僅接受ICH 模型的各項(xiàng)手術(shù)過程但不注血。
圖1 大鼠立體定位圖譜確定自體血注入位置
2.2 動(dòng)物分組 將80 只SPF 級(jí)雄性SD 大鼠按隨機(jī)數(shù)字表法分為假手術(shù)組、模型組、非穴位組、針刺組,每組20 只。假手術(shù)組:僅接受ICH 模型制備手術(shù)過程,但不注血;模型組:50μL 自體血注入到尾狀核制備ICH 模型,但不進(jìn)行任何干預(yù);非穴位組:模型組基礎(chǔ)上針刺患側(cè)非穴位;針刺組:模型組基礎(chǔ)上針刺患側(cè)“百會(huì)”透“曲鬢”。
2.3 針刺干預(yù)方法 針刺組:大鼠完全蘇醒后,選擇0.35mm×40mm 華佗牌一次性針灸針,根據(jù)《實(shí)驗(yàn)針灸學(xué)》[8]選取患側(cè)“百會(huì)”、“曲鬢”穴位(見插頁圖2)。采用“百會(huì)”透“曲鬢”針刺法,透刺深度:1.5cm。留針30min,留針期間每5min 以180~200r/min 速度捻轉(zhuǎn)1 次,共捻轉(zhuǎn)3 次,每12h 1 次,連續(xù)針刺7 天;非穴位組:大鼠完全蘇醒后,取患側(cè)非穴位(定位:平行中線距“百會(huì)”穴1cm 處,見插頁圖2)采用透刺法,針刺透刺1.5cm,其他操作同針刺組。
圖2 針刺示意圖
2.4 指標(biāo)檢測
2.4.1 行為學(xué)評(píng)分 針刺干預(yù)7 天后進(jìn)行行為學(xué)[7]評(píng)估:前肢放置試驗(yàn)(也稱觸須誘導(dǎo)前肢放置試驗(yàn)),輕輕抓起大鼠軀干,緩慢移動(dòng)使之肌肉放松。通過接觸桌子邊緣來觸碰大鼠觸須,正常大鼠在刺激同側(cè)觸須時(shí)會(huì)將前肢放在桌子邊緣。此過程重復(fù)10 次。前肢放置試驗(yàn)評(píng)分=前肢成功放置次數(shù)/總次數(shù)×100%。拐角試驗(yàn),大鼠被置于一個(gè)由兩面相連的木板組成的30°拐角中,為了離開拐角,大鼠必須左轉(zhuǎn)或右轉(zhuǎn)。評(píng)估10 次大鼠轉(zhuǎn)動(dòng)情況,每次間隔至少30s。拐角試驗(yàn)評(píng)分=左轉(zhuǎn)數(shù)/全轉(zhuǎn)數(shù)×100%。
2.4.2 大鼠腦組織p62 免疫組化檢測 大鼠行為學(xué)評(píng)分結(jié)束后,腹腔注射倍量戊巴比妥鈉麻醉大鼠,摘取腦出血半暗帶區(qū)腦組織,用4%多聚甲醛固定,切成4μm 薄片進(jìn)行免疫組化染色。切片脫蠟到水,將組織切片置于0.1mol/L 的枸櫞酸溶液(pH=6.0)中修復(fù),水浴20min,用組化筆圈定組織周圍,滴加雙氧水孵育20min,再加入封閉液封閉1h,加入兔抗一抗(p62,1:1000;Beclin-1,1:1500)在37℃孵育2h,再用山羊抗兔IgG 二抗(1:2000),在37℃下孵育30min,洗滌、復(fù)染、脫水、透明、封片。在400×顯微鏡下拍攝5 個(gè)視野。Image-Pro Plus 6.0 圖像軟件計(jì)算平均光密度值(n=10)。
2.4.3 大鼠腦組織Western blot 檢測 用混合的RIPA 裂解緩沖液從腦出血半暗帶區(qū)腦組織中提取總蛋白。蛋白濃度用BCA 蛋白檢測試劑盒定量。離心后,用SDS-PAGE 電泳分離,將等量的蛋白質(zhì)電轉(zhuǎn)移到0.45μm 的PVDF 膜上。用5%脫脂牛奶室溫封閉1h,加入兔抗p62 一抗(1:1500)4℃過夜,再用HRP 標(biāo)記羊抗兔IgG 二抗(1:2000)在室溫下孵育2h。蛋白信號(hào)檢測采用ECL 化學(xué)發(fā)光試劑,使用ImageJ 軟件測量蛋白質(zhì)條帶的密度(n=10)。
2.5 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 數(shù)據(jù)應(yīng)用SPSS 18.0 軟件分析,組間比較采用ANOVA 方差分析,兩兩之間比較采用LSD-t 檢驗(yàn),數(shù)據(jù)以均值±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,P<0.05 表示差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
3.1 各組ICH 大鼠行為學(xué)評(píng)分比較 造模后7 天,與假手術(shù)組比較,模型組大鼠出現(xiàn)明顯神經(jīng)功能缺損體征(P<0.01)。針刺非穴位未改善ICH 大鼠神經(jīng)功能缺損體征。與模型組比較,針刺干預(yù)能夠明顯提高ICH 大鼠行為學(xué)評(píng)分(P<0.01)。見表1。
表1 各組大鼠行為學(xué)評(píng)分比較(%,±s)
表1 各組大鼠行為學(xué)評(píng)分比較(%,±s)
注:與假手術(shù)組比較,*P<0.01;與模型組比較,△P<0.01;與非穴位組比較,▲P<0.01;假手術(shù)組:模擬ICH 制備過程但不注血;模型組:自體血誘導(dǎo)ICH 模型;非穴位組:模型組基礎(chǔ)上予針刺非穴位干預(yù);針刺組:模型組基礎(chǔ)上予針刺“百會(huì)”透“曲鬢”干預(yù)
3.2 各組ICH 大鼠腦組織p62 蛋白表達(dá)量比較 免疫組化結(jié)果顯示,與假手術(shù)組比較,腦出血模型大鼠p62 蛋白表達(dá)量明顯增高(P<0.01)。非穴位組與模型組p62 蛋白表達(dá)量相似。與模型組比較,針刺組大鼠腦組織p62 蛋白表達(dá)量明顯降低(P<0.01)。見表2、插頁圖3。
圖3 各組大鼠出血半暗帶區(qū)腦組織p62 蛋白表達(dá)量比較(免疫酶標(biāo)染色法,n=10,×400)
表2 各組ICH 大鼠腦組織p62 蛋白表達(dá)量比較(±s)
表2 各組ICH 大鼠腦組織p62 蛋白表達(dá)量比較(±s)
注:與假手術(shù)組比較,*P<0.01;與模型組比較,△P<0.01;與非穴位組比較,▲P<0.01;假手術(shù)組:模擬ICH 制備過程但不注血;模型組:自體血誘導(dǎo)ICH 模型;非穴位組:模型組基礎(chǔ)上予針刺非穴位干預(yù);針刺組:模型組基礎(chǔ)上予針刺“百會(huì)”透“曲鬢”干預(yù);ICH:腦出血
3.3 各組ICH 大鼠腦組織p62、Beclin-1 蛋白表達(dá)量比較 與假手術(shù)組比較,腦出血模型大鼠p62、Beclin-1 蛋白表達(dá)量明顯增高(P 均<0.01)。非穴位組與模型組p62、Beclin-1 蛋白表達(dá)量相似。與模型組比較,針刺組ICH 大鼠腦組織p62 表達(dá)明顯下調(diào)(P<0.01),Beclin-1 蛋白表達(dá)量明顯上調(diào)(P 均<0.01)。見表3、插頁圖4。
圖4 各組ICH 大鼠腦組織p62、Beclin-1 蛋白表達(dá)量比較(n=10)
表3 各組ICH 大鼠腦組織p62、Beclin-1 蛋白表達(dá)量比較(±s )
表3 各組ICH 大鼠腦組織p62、Beclin-1 蛋白表達(dá)量比較(±s )
注:與假手術(shù)組比較,*P<0.01;與模型組比較,△P<0.01;與非穴位組比較,▲P<0.01;假手術(shù)組:模擬ICH 制備過程但不注血;模型組:自體血誘導(dǎo)ICH 模型;非穴位組:模型組基礎(chǔ)上予針刺非穴位干預(yù);針刺組:模型組基礎(chǔ)上予針刺“百會(huì)”透“曲鬢”干預(yù);ICH:腦出血
在氧化應(yīng)激或營養(yǎng)不足的情況下,細(xì)胞內(nèi)的穩(wěn)態(tài)是通過降解受損的細(xì)胞或細(xì)胞內(nèi)的成分來維持的[9]。哺乳動(dòng)物Beclin-1 通過與III 型磷脂酰肌醇3-激酶相互作用,促進(jìn)磷脂酰肌醇3-磷酸的合成,從而促進(jìn)脂膜的延伸、貨物的募集和自噬小體的成熟,在自噬的形成中起著重要的作用[10-11]。p62 作為一種胞質(zhì)蛋白,是鏈接泛素化蛋白與自噬機(jī)制的重要調(diào)控分子[12]。當(dāng)自噬被激活時(shí),溶酶體與自噬體結(jié)合,將自噬泡中自噬底物p62 以及其他蛋白質(zhì)和細(xì)胞器降解,使得p62 水平降低;反之,p62 水平升高[13]。
腦出血后的腦損傷與炎癥反應(yīng)、凋亡激活和氧化應(yīng)激有關(guān),可導(dǎo)致不可逆轉(zhuǎn)的神經(jīng)元死亡[14]。近年研究表明,自噬途徑在腦出血后的損傷中也起著重要的作用,自噬的調(diào)節(jié)可能成為腦出血治療的新靶點(diǎn)[15]。研究發(fā)現(xiàn),ICH 后血腫周圍組織自噬被激活,從6h 開始,12~24h 達(dá)到高峰,3 天開始下降,7 天時(shí)自噬囊泡在神經(jīng)元內(nèi)高度聚集[16]。因此,自噬的激活可能在神經(jīng)細(xì)胞死亡和腦出血的發(fā)生發(fā)展中起重要作用。
本研究發(fā)現(xiàn),自體血誘導(dǎo)ICH 大鼠能夠引起較嚴(yán)重的神經(jīng)功能缺損體征,并上調(diào)腦組織Beclin-1蛋白和p62 蛋白表達(dá),提高自噬的水平。薈萃分析表明,基于百會(huì)穴針刺干預(yù)急性腦出血大鼠能改善神經(jīng)功能缺損評(píng)分,降低腦水含量[17]。與前期研究相一致,針刺干預(yù)可改善大鼠神經(jīng)功能缺損體征,同時(shí)提高ICH 后自噬水平(上調(diào)Beclin-1,下調(diào)p62)。此研究結(jié)果驗(yàn)證了針刺能夠上調(diào)ICH 大鼠自噬水平,并發(fā)揮其保護(hù)受損神經(jīng)細(xì)胞作用。
綜上所述,腦出血后能夠引起自噬相關(guān)蛋白表達(dá)的增高,而針刺干預(yù)能夠上調(diào)腦組織Beclin-1 蛋白,下調(diào)p62 蛋白表達(dá),提高自噬水平,進(jìn)而改善大鼠神經(jīng)功能缺損體征。