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    飛燕草素對(duì)光誘導(dǎo)的視網(wǎng)膜氧化損傷的保護(hù)作用

    2019-10-12 09:11:14彭佳媛杜旌暢劉婷婷楊利瓊吳藹林朱彥鋒余小平
    國(guó)際眼科雜志 2019年10期
    關(guān)鍵詞:檢測(cè)

    彭佳媛,杜旌暢,鐘 茜,劉婷婷,楊利瓊,吳藹林,陳 瑋,朱彥鋒,余小平

    0引言

    光污染(light pollution)廣泛存在于生活環(huán)境中,其導(dǎo)致的視網(wǎng)膜損傷已逐漸成為較嚴(yán)重的公共衛(wèi)生問題[1]。研究證實(shí),短時(shí)強(qiáng)光或長(zhǎng)時(shí)弱光照射對(duì)視網(wǎng)膜可造成光化學(xué)損傷、熱損傷和機(jī)械損傷,其中以視網(wǎng)膜光化學(xué)損傷(retina photochemical damage,RPD)為主[2]。流行病學(xué)研究表明[3],光損傷導(dǎo)致的視網(wǎng)膜疾病在未來20a將增加1倍,因而研究RPD的有效預(yù)防途徑顯得尤為迫切。花青素(anthocyanin)是一組天然黃酮類化合物,廣泛存在于有色蔬果中,具有多種生物活性,包括抗氧化[4-5]、抗炎[6-7]、抑癌[8]和神經(jīng)保護(hù)[9]作用?;ㄇ嗨刂饕?種單體,即飛燕草素(delphinidin,Dp)、花葵素(pelargonidin)、錦葵花素(malvidin)、矢車菊素(cyanidin)、芍藥花青素(peonidin)、矮牽牛素(petunidin),其中以花色苷Dp豐度較高,且羥基數(shù)量較多,其抗氧化生物特性高于其它單體[10-11]。我們前期研究[12-13]證實(shí),黑米花青素能通過抗氧化、抗凋亡途徑防護(hù)RPD,Dp是黑米花青素的主要活性成分,但是否能有效防護(hù)RPD尚不清楚。本研究以661W小鼠視網(wǎng)膜感光細(xì)胞和Sprague-Dawley(SD)大鼠為研究對(duì)象,從體內(nèi)和體外角度探討Dp是否通過調(diào)節(jié)氧化-抗氧化系統(tǒng)防護(hù)RPD。

    1材料和方法

    1.1材料

    1.1.1實(shí)驗(yàn)細(xì)胞和動(dòng)物661W感光細(xì)胞購自上海奧陸生物有限公司(來源于美國(guó)俄克拉何馬州大學(xué))。健康SPF級(jí)成年SD大鼠購自成都達(dá)碩實(shí)驗(yàn)動(dòng)物有限公司[動(dòng)物生產(chǎn)許可證號(hào):SCXK(川)2015-030],體質(zhì)量200±20g,飼養(yǎng)于SPF實(shí)驗(yàn)動(dòng)物屏障環(huán)境。本研究符合動(dòng)物倫理學(xué)要求,經(jīng)倫理委員會(huì)審批通過。

    1.1.2試劑和儀器主要試劑:Dp(美國(guó)Sigma公司,Dp為不溶于水的干粉,用DMSO配制成80mmol/L母液,-80℃保存);DMEM培養(yǎng)基、青霉素G、鏈霉素、胰蛋白酶(美國(guó)Hyclone公司);胎牛血清(美國(guó)Gibco公司);CCK-8試劑盒(日本同仁公司);乳酸脫氫酶(lactate dehydrogenase,LDH)、超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)、谷胱甘肽過氧化物酶(glutathione peroxidase,GSH-Px)檢測(cè)試劑盒(中國(guó)南京建成公司);硫代巴比妥酸活性物質(zhì)(thiobarbituric acid reactive substances,TBARS)(大鼠、小鼠)、LDH/SOD/GSH(大鼠)ELISA試劑盒(中國(guó)南京森貝伽公司);谷胱甘肽巰基轉(zhuǎn)移酶(glutathione S-transferase,GST)試劑盒、RIPA裂解液(中國(guó)Solarbio公司);BCA(美國(guó)Thermo公司)。主要儀器:CO2培養(yǎng)箱(美國(guó)Thermo Scientific公司);細(xì)胞光照儀(自制);CMC-01多功能光照箱(自制);IX71倒置熒光相差顯微鏡(日本Olympus);Power Wave XS2酶標(biāo)儀(美國(guó)BioTek);石蠟切片機(jī)(德國(guó)LEICA RM2235)。

    1.2方法

    1.2.1 661W細(xì)胞培養(yǎng)及分組661W細(xì)胞用含10%胎牛血清、青霉素G(100IU)和鏈霉素(100μg/mL)的高糖DMEM培養(yǎng)基常規(guī)培養(yǎng),每3~4d用胰蛋白酶消化傳代1次,收集對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的細(xì)胞進(jìn)行分組處理。(1)正常對(duì)照組:置于37℃、5% CO2培養(yǎng)箱中避光培養(yǎng)24h更換新培養(yǎng)基,繼續(xù)保持原條件培養(yǎng)24h;(2)光照處理組:置于37℃、5% CO2培養(yǎng)箱中,2 000Lx強(qiáng)度白色熒光持續(xù)光照24h,更換新培養(yǎng)基,繼續(xù)保持原條件光照24h;(3)Dp處理組:置于37℃、5% CO2培養(yǎng)箱中,2 000Lx強(qiáng)度白色熒光持續(xù)光照24h,將Dp處理組的3組細(xì)胞分別更換為含5、10、20μmol/L濃度Dp的培養(yǎng)基,繼續(xù)光照24h[9,14]。

    1.2.2 CCK-8法檢測(cè)細(xì)胞活性收集對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的細(xì)胞,根據(jù)實(shí)驗(yàn)分組接種細(xì)胞至96孔培養(yǎng)板,每孔加入200μL細(xì)胞懸液(5×104個(gè)/mL)。根據(jù)各組處理方法處理細(xì)胞后參考CCK-8試劑盒說明書,每孔加入新鮮配置的CCK-8溶液(培養(yǎng)基總體積的10%),同時(shí)設(shè)3個(gè)空白復(fù)孔,繼續(xù)培養(yǎng)2h后在酶標(biāo)儀450nm波長(zhǎng)處測(cè)定光吸收值。

    1.2.3細(xì)胞LDH、TBARS、SOD、GSH-Px、GST含量或活力測(cè)定制備處于對(duì)數(shù)期的661W細(xì)胞懸液(2×106個(gè)/mL),分別接種于5個(gè)T75培養(yǎng)瓶中,每瓶8mL,于37℃、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24h。根據(jù)各組處理方法處理細(xì)胞后,于顯微鏡下觀察細(xì)胞形態(tài),收集各組細(xì)胞上清液,-80℃保存,BCA法測(cè)定蛋白濃度,按LDH試劑盒說明書檢測(cè)其活力。然后收集細(xì)胞,低溫離心,超聲粉碎,低溫提取蛋白,BCA法檢測(cè)蛋白濃度,嚴(yán)格按照TBARS、SOD、GSH-Px、GST試劑盒說明書檢測(cè)TBARS含量以及抗氧化酶系(SOD、GSH-Px、GST)活性。

    圖1 Dp對(duì)光損傷后細(xì)胞活性的影響 bP<0.01 vs光照處理組。

    1.2.4 RPD動(dòng)物模型的建立和分組將60只SD大鼠隨機(jī)分為正常對(duì)照組、光照組和Dp處理組,每組各20只。對(duì)照組大鼠常規(guī)飼養(yǎng)30d;光照組大鼠常規(guī)飼養(yǎng)29d后以3 000Lx光照處理24h;Dp處理組大鼠先以Dp[100mg/(kg·d)]每日一次灌胃給藥28d,停藥暗適應(yīng)24h后以3 000Lx光照處理24h[12-13]。

    1.2.5大鼠視網(wǎng)膜形態(tài)學(xué)觀察脫頸椎處死大鼠后摘取左側(cè)眼球,用預(yù)冷的生理鹽水洗去浮血,濾紙吸干后置于4%多聚甲醛中固定2h,常規(guī)脫水,浸蠟、石蠟包埋,經(jīng)視神經(jīng)矢狀縱切,制成厚度5μm的切片。石蠟切片常規(guī)脫蠟至水,0.01mmol/L PBS緩沖液漂洗1次,5min;蘇木精染色5min,自來水沖洗1min;1%鹽酸-70%乙醇分色30s,自來水沖洗或浸泡30min至切片變藍(lán)色;1%伊紅溶液染色10min。梯度乙醇脫水:75%乙醇1min,85%乙醇3min,95%乙醇7min,100%乙醇Ⅰ 10min,100%乙醇Ⅱ 10min。二甲苯透明:二甲苯Ⅰ 20min,二甲苯Ⅱ 20min。中性樹膠封片,晾干,于倒置光學(xué)顯微鏡下觀察視網(wǎng)膜形態(tài)。

    1.2.6抗氧化指標(biāo)檢測(cè)脫頸椎處死大鼠后摘取右側(cè)眼球,用預(yù)冷的生理鹽水洗去浮血,濾紙吸干后,剝?nèi)∫暰W(wǎng)膜,置于預(yù)冷的細(xì)胞裂解液機(jī)械勻漿,4℃下3 000r/min離心10min。提取視網(wǎng)膜組織蛋白,BCA法檢測(cè)蛋白含量。按南京森貝伽公司ELISA試劑盒說明書檢測(cè)各組大鼠視網(wǎng)膜TBARS、SOD、GSH-Px、GST含量。

    2結(jié)果

    2.1 Dp對(duì)光損傷后細(xì)胞活性的影響CCK-8法檢測(cè)結(jié)果顯示,正常對(duì)照組、光照處理組、Dp處理組(5、10、20μmol/L濃度Dp)細(xì)胞活性(OD值)分別為3.280±0.075、1.690±0.201、3.405±0.168、3.398±0.360、2.587±0.012,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(F=40.092,P<0.001)。與正常對(duì)照組相比,光照處理組細(xì)胞活性明顯下降(P<0.01);與光照處理組比較,Dp處理組細(xì)胞活性均明顯升高(P<0.01),且呈劑量相關(guān)性(圖1)。

    圖2 Dp對(duì)光損傷后細(xì)胞形態(tài)的影響(×100) A:正常對(duì)照組:細(xì)胞生長(zhǎng)旺盛,排列緊密;B:光照處理組,細(xì)胞皺縮,大量脫落;C:5μmol/L Dp處理組:細(xì)胞脫落較少;D:10μmol/L Dp處理組:細(xì)胞脫落較少;E:20μmol/L Dp處理組:細(xì)胞脫落較多。箭頭所指為死亡細(xì)胞。

    圖3 Dp對(duì)光損傷后細(xì)胞LDH、TBARS、SOD、GSH-Px、GST的影響 A:LDH;B:TBARS;C:SOD;D:GSH-Px;E:GST。aP<0.05,bP<0.01 vs 光照處理組。

    表1 Dp對(duì)光損傷后細(xì)胞LDH、TBARS、SOD、GSH-Px、GST的影響

    2.2 Dp對(duì)光損傷后細(xì)胞形態(tài)的影響倒置顯微鏡下觀察,正常對(duì)照組細(xì)胞生長(zhǎng)良好。光照48h后細(xì)胞大量脫落、死亡,懸浮于培養(yǎng)基中,且存活細(xì)胞的胞壁出現(xiàn)皺縮,貼壁生長(zhǎng)能力降低。不同濃度Dp處理組細(xì)胞的數(shù)量和貼壁能力明顯較光照處理組升高,且該升高趨勢(shì)呈現(xiàn)Dp劑量相關(guān)性(圖2)。

    2.3 Dp對(duì)光損傷后細(xì)胞LDH、TBARS、SOD、GSH-Px、GST的影響正常對(duì)照組、光照處理組、Dp處理組(5、10、20μmol/L濃度Dp)細(xì)胞LDH活力、TBARS含量及SOD、GSH-Px、GST活性差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.001,表1)。光照處理組細(xì)胞LDH活力較正常對(duì)照組明顯增高(P<0.01),而Dp處理組細(xì)胞LDH活力均較光照處理組顯著降低(P<0.01),且呈劑量相關(guān)性。與正常對(duì)照組相比,光照處理組細(xì)胞TBARS含量明顯升高,SOD、GSH-Px、GST活力均明顯降低(P<0.01),經(jīng)不同濃度Dp處理后,各組細(xì)胞TBARS含量均降低;SOD、GSH-Px、GST活性均升高(P<0.01),且具有劑量依賴性(圖3)。

    2.4各組大鼠視網(wǎng)膜形態(tài)學(xué)結(jié)構(gòu)倒置光學(xué)顯微鏡下觀察各組大鼠視網(wǎng)膜結(jié)構(gòu)發(fā)現(xiàn),光照損傷會(huì)導(dǎo)致大鼠視網(wǎng)膜外核層細(xì)胞間隙增大,光感受器細(xì)胞結(jié)構(gòu)紊亂,外核層厚度變薄,而Dp可保護(hù)大鼠視網(wǎng)膜結(jié)構(gòu)(圖4)。

    2.5各組大鼠視網(wǎng)膜組織TBARS、SOD、GSH-Px、GST變化正常對(duì)照組、Dp處理組、光照處理組的大鼠視網(wǎng)膜組織中TBARS、SOD、GSH-Px、GST含量差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.001,表2)。與正常對(duì)照組相比,光照處理組的大鼠視網(wǎng)膜組織中TBARS含量上升,SOD、GSH-Px、GST含量均下降(P<0.01);與光照處理組相比,Dp處理組的大鼠視網(wǎng)膜組織中TBARS含量下降,SOD、GSH-Px、GST含量均升高(P<0.01,圖5)。

    圖4 各組大鼠視網(wǎng)膜形態(tài)學(xué)結(jié)構(gòu)(A~C×200,D~F×400) A、D:正常對(duì)照組,外核層中感光細(xì)胞致密、排列有序;B、E:Dp處理組,外核層中感光細(xì)胞排列較為有序,細(xì)胞數(shù)量較多;C、F:光照處理組,外核層中感光細(xì)胞排列松散,細(xì)胞數(shù)量減少,外核層厚度變薄。箭頭所示為大鼠視網(wǎng)膜外核層。

    圖5 各組大鼠視網(wǎng)膜組織TBARS、SOD、GSH-Px、GST變化 A:TBARS;B:SOD;C:GSH-Px;D:GST。bP<0.01 vs 光照處理組。

    表2 各組大鼠視網(wǎng)膜組織TBARS、SOD、GSH-Px、GST變化

    3討論

    視覺的形成需要一定光量刺激視網(wǎng)膜,視網(wǎng)膜病變尤其是視錐細(xì)胞損傷會(huì)導(dǎo)致夜盲和視野縮窄,最終導(dǎo)致中心視力嚴(yán)重受損,然而視錐細(xì)胞繼發(fā)損傷的病理機(jī)制卻仍未明確。近年來,本課題組[12-13]及其他研究[2,15]均證實(shí),在3 000Lx連續(xù)光照下,視紫紅質(zhì)可吸收過量光子產(chǎn)生較多自由基,進(jìn)而使膜結(jié)構(gòu)(盤膜、線粒體膜、核膜及內(nèi)質(zhì)網(wǎng)膜)中的脂類發(fā)生過氧化連鎖反應(yīng),形成脂質(zhì)過氧化物和活性氧介質(zhì)(reactive oxygen intermediate,ROI),組織內(nèi)過氧化產(chǎn)物累積會(huì)導(dǎo)致視錐細(xì)胞發(fā)生氧化應(yīng)激損傷。本研究中過度光照導(dǎo)致661W細(xì)胞形態(tài)發(fā)生改變,CCK-8檢測(cè)結(jié)果表明,細(xì)胞活力明顯下降,并釋放大量LDH,與陳勝等[16]和Zhou等[17]研究結(jié)果一致,說明過度光照會(huì)抑制細(xì)胞活力,誘導(dǎo)細(xì)胞受損。光照后661W細(xì)胞和大鼠視網(wǎng)膜組織中脂質(zhì)過氧化TBARS明顯上調(diào),與Izawa等[18]采用小鼠構(gòu)建RPD模型后檢測(cè)視網(wǎng)膜組織中TBARS結(jié)果相似,表明過度光照會(huì)導(dǎo)致視網(wǎng)膜組織中TBARS含量增加。SOD、GSH-Px、GST是體內(nèi)重要的抗氧化酶系,對(duì)機(jī)體的氧化與抗氧化平衡起到至關(guān)重要的作用[19-20]。本研究發(fā)現(xiàn),光照后661W細(xì)胞和大鼠視網(wǎng)膜組織中抗氧化酶系(SOD、GSH-Px、GST)活性降低,說明光照促使視網(wǎng)膜細(xì)胞氧化應(yīng)激水平升高,打破視網(wǎng)膜中氧化-抗氧化系統(tǒng)平衡,損傷感光細(xì)胞形態(tài),長(zhǎng)期光損傷可導(dǎo)致視網(wǎng)膜光感受器丟失,是視網(wǎng)膜變性發(fā)生和發(fā)展的高危因素。

    氧化應(yīng)激不是視網(wǎng)膜功能障礙和變性發(fā)展的唯一因素,其它因素如炎癥、血管改變和細(xì)胞變性等也是導(dǎo)致視網(wǎng)膜疾病發(fā)生發(fā)展的主要因素,但減少氧化應(yīng)激已被公認(rèn)為是視網(wǎng)膜疾病的有效的姑息治療方法。黃體酮、硫辛酸(lipoic acid,LA)和蘿卜硫素(sulforaphane,SFN)是常用的臨床前研究該類疾病的抗氧化劑。黃體酮可減少自由基引起的損傷[21],增加抗氧化酶SOD的表達(dá)[22],還可通過清除細(xì)胞內(nèi)自由基減少脂質(zhì)過氧化,抑制氧化應(yīng)激[23];LA是親水親脂分子,其能在水和脂質(zhì)環(huán)境中發(fā)揮抗氧化和抗炎作用[24]。視網(wǎng)膜光損傷的體內(nèi)研究證實(shí),SFN能促進(jìn)核因子NF-E2相關(guān)因子(nuclearfactor erythroidderived 2-like 2,Nrf2)和硫氧還蛋白-1(thioredoxin-1,Trx1)的表達(dá),具有抗Caspase活性,抑制氧化后炎癥反應(yīng)的作用[25]。

    目前,關(guān)于視網(wǎng)膜功能障礙治療的研究中使用的抗氧化劑種類頗多,但均未涉及天然化合物花色苷。Dp被認(rèn)為是花青素中的一種高效抗氧化劑[26-27]。新近研究發(fā)現(xiàn),Dp能通過抗活性氧(reactive oxygen species,ROS)依賴性的氧化應(yīng)激反應(yīng)保護(hù)骨髓源性肝干細(xì)胞(BDHSCs)[28]。Ogawa等[14]也發(fā)現(xiàn),Dp能顯著減少光損傷后661W細(xì)胞中ROS含量。本研究發(fā)現(xiàn),在光照后的661W細(xì)胞中加入不同濃度的Dp處理24h,鏡下觀察和CCK-8檢測(cè)結(jié)果顯示,細(xì)胞的數(shù)量和活性明顯升高,且該升高趨勢(shì)呈現(xiàn)Dp劑量相關(guān)性(尤其在5~10μmol/L升高明顯);661W細(xì)胞釋放出的LDH檢測(cè)結(jié)果中,Dp明顯降低了LDH活性,呈劑量相關(guān)性(5μmol/L降低效果最明顯),說明Dp具有抗光誘導(dǎo)的661W細(xì)胞損傷的作用。另外,我們還發(fā)現(xiàn)Dp處理后,細(xì)胞內(nèi)過氧化物產(chǎn)物TBARS在Dp濃度為10~20μmol/L內(nèi)下降明顯,抗氧化酶體系(SOD、GSH-Px、GST)活性均在Dp濃度為5μmol/L升高明顯,動(dòng)物實(shí)驗(yàn)進(jìn)一步證實(shí)Dp能通過調(diào)節(jié)氧化-抗氧化系統(tǒng)防護(hù)RPD,與課題組前期研究動(dòng)物體內(nèi)花青素防護(hù)RPD結(jié)果一致[12-13]。此外,課題組前期體內(nèi)實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)花青素能夠升高核因子κB(nuclear factor kappa B,NF-κB)活性,同時(shí)降低Caspase-1表達(dá),抑制感光細(xì)胞凋亡,Dp是否具備同樣的功效,值得我們進(jìn)一步探討。

    綜上所述,本研究通過構(gòu)建RPD的體外細(xì)胞模型和體內(nèi)動(dòng)物模型發(fā)現(xiàn),Dp可以降低光損傷后細(xì)胞內(nèi)過氧化物產(chǎn)物TBARS含量,提高抗氧化酶系(SOD、GSH-Px、GST)活性,說明Dp對(duì)光誘導(dǎo)的視網(wǎng)膜的氧化應(yīng)激損傷具有防護(hù)作用,為研究與光感受器細(xì)胞氧化損傷相關(guān)的視網(wǎng)膜疾病的發(fā)病機(jī)制和植物化學(xué)藥物調(diào)控眼科疾病的研究提供了實(shí)驗(yàn)依據(jù)。

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