王瑩 唐季云 李玉娟 談峰 郭聰 李敏
摘要 [目的]建立耐鹽彩葉杜梨的莖尖組培快繁技術(shù)體系。[方法]以耐鹽彩葉杜梨莖尖為試材,對(duì)影響莖尖離體培養(yǎng)的取材時(shí)期、外植體消毒、培養(yǎng)基和激素配比等因素進(jìn)行研究。[結(jié)果]休眠期水培促萌發(fā)的嫩芽污染率較低,最利于莖尖誘導(dǎo)成活。采用正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)篩選出最佳滅菌處理為75%乙醇 +0.1% HgCl2 8 min,污染率和發(fā)芽率分別為27.36%和57.47%;適于莖尖增殖培養(yǎng)的培養(yǎng)基和激素組合為MS+1.0 mg/L 6-BA+1 mg/L IBA,增殖系數(shù)為9.23。[結(jié)論]通過耐鹽彩葉杜梨莖尖繁育技術(shù)的優(yōu)化,為建立其優(yōu)良無性系和進(jìn)行遺傳轉(zhuǎn)化奠定基礎(chǔ)。
關(guān)鍵詞 耐鹽彩葉杜梨;莖尖培育;組織培養(yǎng);快繁技術(shù)
中圖分類號(hào) S604+.3文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼 A
文章編號(hào) 0517-6611(2019)13-0056-02
doi:10.3969/j.issn.0517-6611.2019.13.018
開放科學(xué)(資源服務(wù))標(biāo)識(shí)碼(OSID):
Study on the Influencing Factors of Stem Tip Breeding of SaltTolerant? Pyrus betulaefolia
Abstract [Objective]To establish a rapid propagation technique system of stem tip tissue culture for salttolerant Pyrus betulaefolia.[Method] The stem tip of? Pyrus betulaefolia was used to study the influencing factors such as the period of sampling,the disinfection of explants,the medium and the ratio of hormones.[Result]The contamination rate of young shoots promoted by hydroponic culture in dormant stage was lower,which was most beneficial to stem tip induction and survival.The optimal sterilization treatment was 75% alcohol for 30s+0.1% HgCl2 for 8 min,and the contamination rate and germination rate were respectively 27.36% and 57.47%.The suitable multiplication culture medium and hormone combination for stem tip tissue was MS+1.0 mg/L 6BA+1.0 mg/L IBA,the multiplication coefficient was 9.23.[Conclusion]Through the optimization of stem tip breeding technology of salttolerant? Pyrus betulaefolia,it layed a foundation for establishing its excellent clone and genetic transformation.
Key words Salttolerant Pyrus betulaefolia;Stem tip culture;Tissue culture;Rapid propagation technology
杜梨為薔薇科梨屬落葉喬木,別名棠梨、灰梨、海棠梨等,原產(chǎn)我國(guó)北部,長(zhǎng)江流域以及遼寧南部、河北、山西、河南、陜西、甘肅、安徽、江西、湖北均有分布,常生于海拔50~1 800 m的平原或山坡上[1]。杜梨是梨樹砧木中抗寒、抗旱、耐澇、耐鹽堿綜合抗性最強(qiáng)的砧木,對(duì)所有的白梨、砂梨、秋子梨系統(tǒng)品種具有親和力,為我國(guó)梨樹砧木最佳選擇[2]。與其他木本果樹一樣,由于杜梨的高度雜合性以及童期較長(zhǎng)等特點(diǎn),使常規(guī)育種周期較長(zhǎng)。在田間繁殖也相對(duì)費(fèi)時(shí)費(fèi)力、占用較多土地[3]。隨著生物技術(shù)的不斷進(jìn)展,杜梨的離體培養(yǎng)取得了長(zhǎng)足進(jìn)展,并為種苗工廠化及種質(zhì)資源離體保存提供了有效途徑。筆者以杜梨為試材,采用正交設(shè)計(jì)法,獲得杜梨快速生長(zhǎng)及擴(kuò)繁培養(yǎng)基,旨在為建立其優(yōu)良無性系和進(jìn)行遺傳轉(zhuǎn)化奠定基礎(chǔ)。
1 材料與方法
1.1 試驗(yàn)材料 試驗(yàn)材料為露地栽培于江蘇沿江地區(qū)農(nóng)業(yè)科學(xué)研究所苗圃中的耐鹽彩葉杜梨。
1.2 外植體的采集與處理
以耐鹽彩葉杜梨的莖尖作為外植體,分別在3個(gè)不同時(shí)期進(jìn)行取材:①休眠期枝條于溫室內(nèi)水培催芽(S1);②新梢生長(zhǎng)初期頂端新芽(S2);③盛花期的枝條頂端莖尖(S3)。
1.3 消毒滅菌
用細(xì)毛軟刷將枝條表面清洗干凈,剪取1.5 cm長(zhǎng)的帶芽莖段,用洗潔精浸泡30 min,再用流水沖洗1 h以上,在超凈工作臺(tái)上用75%乙醇消毒30 s,再分別用01%的HgCl2滅菌6、8、10 min,無菌水沖洗5~6遍接種到啟動(dòng)培養(yǎng)基上,10 d后統(tǒng)計(jì)污染率,20 d后統(tǒng)計(jì)萌發(fā)率。培養(yǎng)基pH為57,培養(yǎng)溫度(25±2)℃,光照強(qiáng)度為2 000 lx,光照時(shí)間12 h/d。
1.4 叢生芽誘導(dǎo)和增殖培養(yǎng)
選取在啟動(dòng)培養(yǎng)基上繼代3次以上生長(zhǎng)健壯的無菌芽,接種到叢生芽誘導(dǎo)和增殖培養(yǎng)基中。設(shè)計(jì)L9(34)正交設(shè)計(jì):6-BA(0.5、1.0、1.5 mg/L),IBA(0.25、0.50、1.00 mg/L),NAA(0、0.2、0.4 mg/L),30 d后統(tǒng)計(jì)增殖系數(shù)及生長(zhǎng)狀況。
1.5 壯苗生根
選擇生長(zhǎng)健壯、長(zhǎng)勢(shì)均一的叢生芽,轉(zhuǎn)接至壯苗生根培養(yǎng)基中。壯苗生根培養(yǎng)基用MS+(0.1、0.5、1.0) mg/L IBA,30 d后統(tǒng)計(jì)生根率、根數(shù)和生長(zhǎng)狀況。
1.6 煉苗與移栽
將繼代培養(yǎng)45 d、高度超過3 cm、生長(zhǎng)健壯、根系發(fā)育良好的無菌苗,在組培室中進(jìn)行煉苗。首先去掉瓶子的橡皮筋煉苗2 d,然后將封口膜打開一半煉苗2 d,最后完全去封口膜煉苗7 d。煉苗結(jié)束后,取出組培苗,用無菌水將根系上的瓊脂清洗干凈,并用800倍的多菌靈浸泡15 min。移栽到草炭:珍珠巖=3:1(體積比)的混合基質(zhì)中。移栽前,基質(zhì)用高錳酸鉀消毒,放置一個(gè)晚上后使用,移栽后澆透水使基質(zhì)和根部緊密結(jié)合,放置在25℃的人工氣候箱中培養(yǎng)7~14 d,之后放置在溫室內(nèi)常規(guī)培養(yǎng)。
2 結(jié)果與分析
2.1 最佳取材時(shí)期的選擇
由表1可知,取材時(shí)間對(duì)莖尖的誘導(dǎo)效果有顯著差異。休眠期枝條于溫室內(nèi)水培外植體與其他取材時(shí)期相比,莖尖污染率最低,而發(fā)芽率與成活率最高,成活率與其他各組差異達(dá)極顯著水平。盛花期的枝條頂端莖尖誘導(dǎo)效果較其他2組較差,污染率接近50%,發(fā)芽率僅為33.51%。對(duì)3次取材結(jié)果進(jìn)行評(píng)價(jià)得出,污染率由低到高依次為休眠期枝條于溫室內(nèi)水培催芽、新梢生長(zhǎng)初期頂端新芽、盛花期枝條頂端莖尖。前2個(gè)時(shí)期取材,莖尖污染率相對(duì)較低,誘導(dǎo)成活率和發(fā)芽率較高,是較適宜的取材時(shí)期。
2.2 啟動(dòng)培養(yǎng)
由表2可知,用HgCl2消毒不同時(shí)間,隨著滅菌時(shí)間的延長(zhǎng),污染率逐漸降低,相應(yīng)的萌發(fā)率先升高后降低。綜合考慮污染情況和發(fā)芽結(jié)果,杜梨滅菌最適宜的方法為75%乙醇30 s,0.1% HgCl2滅菌8 min,此時(shí)的污染率為27.36%,發(fā)芽率為57.47%,其發(fā)芽率與其他滅菌方式差異達(dá)極顯著水平。
2.3 叢生芽誘導(dǎo)和增殖培養(yǎng)
由表3可知,高濃度IBA和NAA均能促進(jìn)叢生芽的增殖生長(zhǎng),而過高濃度的6-BA對(duì)植株生長(zhǎng)及叢生芽增殖不利,6-BA濃度1 mg/L時(shí),隨著IBA濃度的增加,增殖系數(shù)升高。極差分析結(jié)果表明,叢生芽誘導(dǎo)和增殖培養(yǎng)效果影響因素由大到小依次為IBA、6-BA和NAA。6-BA與IBA的濃度比為1∶1時(shí)效果最好,明顯優(yōu)于其他組合。最適宜誘導(dǎo)叢生芽的組合為1 mg/L 6-BA+1 mg/L IBA,此時(shí)的增殖系數(shù)為9.23,叢生芽長(zhǎng)勢(shì)最好,葉色鮮艷(圖1)。
2.4 無菌苗生根培養(yǎng)
從表4可以看出,IBA在一定濃度范圍內(nèi)均可誘導(dǎo)外植體生出不定根,但濃度過高會(huì)使平均生根數(shù)和平均根長(zhǎng)降低,且3種濃度的IBA平均根長(zhǎng)差異極顯著。但I(xiàn)BA濃度為1.0 mg/L時(shí),誘導(dǎo)的不定根數(shù)較少,根系變粗且短,植株生長(zhǎng)不良。IBA濃度為0.5 mg/L時(shí),生根的數(shù)量最多且根長(zhǎng)最長(zhǎng),為最適宜的生根濃度。
2.5 試管苗移栽
移栽后前7 d每天噴水2~3次,之后每天噴水1次,保持空氣濕度在80%左右,14 d后即可移出培養(yǎng)箱,直接放置在溫室中進(jìn)行常規(guī)管理,移栽成活率達(dá)90%以上,之后在氣候合適時(shí)可移栽大田。
3 結(jié)論與討論
適宜的取材時(shí)期是降低莖尖污染率、提高莖尖誘導(dǎo)成活率的重要因素[4]。李艷霞等[5]在建立越橘品種‘Koralle莖尖繁殖體系中發(fā)現(xiàn),利用休眠期水培后萌發(fā)出的嫩芽為外植體時(shí),材料的污染最低。范世杰等[6]對(duì)3種越橘(桔)莖尖初代培養(yǎng)與增殖進(jìn)行研究,結(jié)果表明不同取材時(shí)期莖尖污染率和誘導(dǎo)成苗率有很大差異。該試驗(yàn)也獲得了相似的研究結(jié)果,用休眠期水培后萌發(fā)出的嫩芽可顯著降低接種的污染率,提高莖尖誘導(dǎo)成活率,為最適宜取材時(shí)期。新梢生長(zhǎng)初期頂端新芽和盛花期的枝條頂端莖尖由于長(zhǎng)時(shí)間暴露在室外,污染嚴(yán)重,接種后不易滅菌,導(dǎo)致污染率較高;另外莖尖頂端分生組織分化相對(duì)緩慢,以致于誘導(dǎo)成活率較低,應(yīng)盡量避免這些時(shí)期取材。
在莖尖培養(yǎng)過程中,培養(yǎng)基是影響莖尖成活率以及苗木狀態(tài)的主要因素之一,當(dāng)然,同一屬的不同種以及不同品種對(duì)培養(yǎng)基的反映有所不同,使用的培養(yǎng)基不能同一而論[7-9]。植物激素是影響莖尖誘導(dǎo)和增殖的關(guān)鍵因子之一,在組織培養(yǎng)中起重要作用。林靜等[10]利用杜梨子葉誘導(dǎo)不定芽,結(jié)果顯示,培養(yǎng)基和激素濃度對(duì)叢生芽誘導(dǎo)起關(guān)鍵性作用,而生長(zhǎng)素NAA對(duì)愈傷組織的生長(zhǎng)起主要作用。只有選用合適的激素及質(zhì)量濃度,才能獲得理想的結(jié)果。該研究中對(duì)叢生芽誘導(dǎo)和增殖培養(yǎng)效果影響最大的是IBA,其次為6-BA,尤其6-BA與IBA的濃度比接近1時(shí)效果最好,這可能因品種的基因型而有所差異。
耐鹽彩葉杜梨作為一種新型的適合沿海灘涂利用的彩葉樹種,具有極高的觀賞價(jià)值和市場(chǎng)前景。該試驗(yàn)以彩葉杜梨莖尖為外植體,初步建立了莖尖組培快繁技術(shù)體系,在保證生根成活率的同時(shí),大大縮短了育苗周期,為實(shí)現(xiàn)耐鹽彩葉杜梨優(yōu)質(zhì)組培苗工廠化生產(chǎn)和規(guī)?;_發(fā)提供了參考。
參考文獻(xiàn)
[1] 張祺超,桂炳中,趙麗麗.華北地區(qū)鹽堿地杜梨栽培[J].中國(guó)花卉園藝,2018(10):57.
[2] 劉振廷,牛鵬斐,潘文明,等.杜梨砧木苗二次移植培育嫁接苗技術(shù)探討[J].河北果樹,2018(2):7-8.
[3] 張盼飛.中條山65份杜梨資源遺傳多樣性分析及矮化特性評(píng)價(jià)[D].太谷:山西農(nóng)業(yè)大學(xué),2016.
[4] 桂平.珍稀觀賞樹種紅豆樹組織培養(yǎng)技術(shù)研究[D].貴陽(yáng):貴州大學(xué),2018.
[5] 李艷霞,劉忠玲,劉建明,等.越橘品種‘Koralle莖尖繁殖體系建立[J].東北林業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2018,46(3):37-39,44.
[6] 范世杰,楊忠華,尹文龍,等.3種越橘(桔)莖尖初代培養(yǎng)與增殖研究[J].林業(yè)科技,2018,43(3):5-9.
[7] 楊麗萍.卓尼縣馬鈴薯培養(yǎng)基制作與組織培養(yǎng)[J].農(nóng)業(yè)科技與信息,2017(23):93-94.
[8] 趙會(huì)芳,陳姣.不同培養(yǎng)基對(duì)勿忘我組織培養(yǎng)的影響[J].農(nóng)技服務(wù),2017,34(23):42,41.
[9] 秦梅,張燕,徐美恩,等.甘薯莖尖脫毒及組培快繁技術(shù)[J].安徽農(nóng)業(yè)科學(xué),2014,42(32):11238-11239,11258.
[10] 林靜,李疆,田嘉,等.杜梨子葉離體再生體系的建立[J].中國(guó)農(nóng)學(xué)通報(bào),2015,31(19):41-47.