李星論,鞏婷,陳晶晶,陳天嬌,喬云明,楊金玲,朱平
重組人源超氧化物歧化酶研究進展
李星論,鞏婷,陳晶晶,陳天嬌,喬云明,楊金玲,朱平
100050 北京,中國醫(yī)學(xué)科學(xué)院北京協(xié)和醫(yī)學(xué)院天然藥物活性物質(zhì)與功能國家重點實驗室/國家衛(wèi)健委天然藥物生物合成重點實驗室<
超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)是動物、植物和微生物中普遍存在的一類酶,是生物抗氧化系統(tǒng)的第一道防線,也是體內(nèi)唯一能夠特異性清除氧自由基的抗氧化酶。SOD 為金屬酶,按其結(jié)合的金屬離子種類不同,目前已知的 SOD 主要分為三類,即 Cu/Zn-SOD(SOD1)、Mn-SOD(SOD2)和 Fe-SOD(SOD3)[1]。人體內(nèi)外源化合物在各種酶的作用下會產(chǎn)生氧自由基,氧自由基在 SOD 的催化作用下轉(zhuǎn)變?yōu)檫^氧化氫,體內(nèi)的過氧化氫酶(CAT)和過氧化物酶(POD)會立即將其分解為完全無害的水(圖 1)。當(dāng)生物體沒有足夠多的 SOD 時,活性氧將會大量累積,如不能及時清除就會引發(fā)氧化損傷,導(dǎo)致機體損害,比如堿基突變、DNA 鏈斷裂、膜脂過氧化和蛋白質(zhì)損傷等,從而加速衰老或?qū)е录膊2]。除了抗氧化作用外,SOD 還具有抗炎[3]、抗腫瘤[4]及調(diào)控免疫[5]等重要作用,并且在免疫防御中起殺死病毒的作用[6]。SOD 具有廣泛的醫(yī)療價值,臨床上可用 SOD 治療和預(yù)防急性炎癥和水腫、氧中毒、肺氣腫、輻射病、老年性白內(nèi)障及衰老等。此外,SOD 還可以作為食品和化妝品的添加劑。
國外主要從牛羊等動物的血液中提取SOD,國內(nèi)主要從豬的血液中提取 SOD[7]。動物來源的 SOD 存在與人交叉感染、過敏性反應(yīng)等不良現(xiàn)象。此外,因為瘋牛病等致病因子的傳播,從動物血液中提取SOD 的安全性受到嚴重質(zhì)疑。歐盟于 1999 年已禁止將動物來源的 SOD 用于人類醫(yī)療和保健。但因為從動物血液中提取 SOD 成本低、工藝簡單,至今無法全面禁止[8]。天然 SOD 在應(yīng)用方面有其局限性:①半衰期短(5 ~ 10 min),代謝迅速[9];②異源性——由于天然 SOD 的制劑多來源于動物或微生物,對人體來說存在免疫原性問題[10];③不易透皮或透膜,吸收困難。天然 SOD 屬于大分子蛋白,在細胞膜上沒有專一受體,難以迅速進入細胞內(nèi)發(fā)揮作用[11]。多年來人們一直不斷嘗試各種方法來獲取 SOD 并改造其結(jié)構(gòu)和性質(zhì),從而拓展其應(yīng)用范圍。常用的方法有化學(xué)修飾法[12]、SOD 模擬化合物[13]和基因工程法[14]等,其中通過基因工程技術(shù)獲取和改造 SOD 的相關(guān)研究發(fā)展尤為迅速。1983 年,Sherman 等[15]首次克隆得到人源 Cu/Zn-SOD(hCu/Zn-SOD)的 cDNA 序列,為通過基因工程獲取和改造 SOD 奠定了基礎(chǔ)。近年來,科
圖 1 SOD 的作用機制(GSH:還原型谷胱甘肽;GSSG:氧化型谷胱甘肽;PHS:前列腺素合成酶;LPO:脂質(zhì)過氧化物;NAD+:輔酶 I;NADPH:還原型輔酶 II;G-6-P:6-磷酸葡萄糖;G-6-PDH:6-葡萄糖磷酸脫氫酶;6-phosphogluconate:6-磷酸葡萄糖酸酯)學(xué)家們通過基因工程技術(shù),并結(jié)合細胞工程、酶工程、蛋白質(zhì)工程和微生物工程等技術(shù),大大推動了重組 SOD 在醫(yī)藥領(lǐng)域的應(yīng)用。目前,基因工程在工業(yè)化生產(chǎn) SOD 中的地位愈發(fā)重要,與化學(xué)修飾法和 SOD 模擬化合物方法相比,基因工程廣開酶源,潛力巨大,是降低 SOD 生產(chǎn)成本和獲得無抗原性人源 SOD 的有效途徑[16]。
目前,關(guān)于 SOD 的綜述有很多,研究者們分別從 SOD 的來源、分類、功能和催化機理等方面進行了總結(jié),并列舉了 SOD 在醫(yī)學(xué)、農(nóng)業(yè)、化妝品和食品開發(fā)等方面的應(yīng)用現(xiàn)狀及前景[16]。本文重點綜述了重組人源 SOD 的研究策略與進展,以期為 SOD 的理論研究與實際應(yīng)用提供參考。
選擇合適的表達系統(tǒng)是決定重組人源 SOD 高效表達的重要因素(表 1)。在選擇蛋白表達系統(tǒng)時,需要考慮的主要因素是蛋白活性、可溶性、得率及培養(yǎng)周期等。
在各種表達系統(tǒng)中,最早開展研究的是大腸桿菌表達系統(tǒng),它也是目前最成熟的表達系統(tǒng)。大腸桿菌表達系統(tǒng)具有遺傳背景清楚、表達量高、繁殖快、成本低、穩(wěn)定性好、抗污染能力強和產(chǎn)物容易純化等優(yōu)點[17]。張弘浩等[18]將人源 SOD 基因?qū)氪竽c桿菌,得到包涵體形式的重組蛋白,經(jīng)過尿素處理、透析,重組蛋白由包涵體轉(zhuǎn)化為可溶性蛋白。研究指出 Cu2+、Zn2+的加入對于恢復(fù) SOD 的活性和穩(wěn)定性是必不可少的,且適當(dāng)提高溫度將大大縮短復(fù)性時間,獲得的重組人源 SOD 比活力可達到 6000 U/mg 以上。Zhu 等[19]克隆了人源胞外超氧化物歧化酶(human extracellular superoxide dismutase,hEC-SOD)的 cDNA,并在大腸桿菌中進行了重組表達,得到包涵體形式的重組蛋白。通過尿素處理獲得可溶性蛋白,并通過固定化金屬親和層析柱對重組 hEC-SOD 進行逐步復(fù)性,得到了正確折疊的二聚體蛋白和單體蛋白,兩種蛋白的比活力分別為 3475 U/mg 和 510 U/mg,二聚體的活性明顯高于單體。
大腸桿菌表達系統(tǒng)雖有許多優(yōu)點,但存在蛋白不能正確折疊、易形成包涵體、密碼子體系與真核生物差別較大、翻譯后修飾不完善和內(nèi)毒素等應(yīng)用瓶頸。
酵母表達系統(tǒng)可高水平表達蛋白,并具有翻譯后修飾功能,兼具原核與真核表達系統(tǒng)的優(yōu)點,因此在基因工程領(lǐng)域中得到日益廣泛的應(yīng)用。其中甲醇酵母表達系統(tǒng)是目前應(yīng)用最廣泛的酵母表達系統(tǒng),并以畢赤酵母應(yīng)用最多。釀酒酵母分泌外源蛋白效率低,且大規(guī)模發(fā)酵時產(chǎn)生的乙醇會影響菌體自身生長,因此難以進行高密度發(fā)酵[20]。林士森等[21]將 hEC-SOD 在畢赤酵母中表達,從上清液中獲得重組蛋白,經(jīng)純化后測得重組蛋白的比活力為 1700 U/mg。鄭屹峰等[22]以表達 hCu/Zn-SOD 的重組畢赤酵母為出發(fā)菌株,采用甲醇-甘油混合飼喂的方法進行 5 L 發(fā)酵罐高密度發(fā)酵培養(yǎng),最終獲得的重組 hCu/Zn-SOD 比活力達到 13 539 U/ml。畢赤酵母表達體系表達的重組蛋白能夠直接分泌至胞外,故有利于工業(yè)化分離與純化,其表達的蛋白能夠形成二硫鍵、進行糖基化修飾等,且表達量高[23]。然而,畢赤酵母表達體系不足之處在于使用甲醇作為誘導(dǎo)劑,具有一定危害,且糖基化與哺乳動物細胞有所不同。
植物表達系統(tǒng)能夠表達來自病毒、細菌和動物等的蛋白,易于大規(guī)模培養(yǎng)與生產(chǎn),在基因表達及修飾方面也有獨特的優(yōu)勢。目前已在煙草、水稻、紅花和馬鈴薯等植物中實現(xiàn)了許多外源蛋白的表達[24]。由于煙草具有生物產(chǎn)量高、轉(zhuǎn)化簡單、不進入食物鏈及生物安全風(fēng)險小等優(yōu)勢,因此成為目前發(fā)展最成熟的植物表達體系。Park 等[25]通過植物瞬時表達系統(tǒng)在煙草葉細胞中表達出具有催化活性的重組hEC-SOD,為植物表達系統(tǒng)生產(chǎn)重組 SOD 開啟了新的大門。但由于利用植物表達生產(chǎn)外源蛋白相關(guān)技術(shù)起步較晚,部分技術(shù)并非特別成熟,因此目前利用植物系統(tǒng)生產(chǎn)目的蛋白與其他系統(tǒng)相比尚不具備競爭力[26]。
20 世紀 80 年代起,以桿狀病毒為載體的外源基因表達體系日趨成熟,極大促進了昆蟲細胞表達系統(tǒng)的發(fā)展。昆蟲細胞表達系統(tǒng)既能表達原核基因也能表達真核基因,并兼具了原核表達系統(tǒng)產(chǎn)量高和真核表達系統(tǒng)蛋白翻譯后修飾的優(yōu)點。昆蟲細胞表達載體采用了昆蟲核型多角體病毒(multiple nuclear polyhedrosis virus,MNPV)中多角體蛋白基因(polyhedrin gene,phg)的強啟動子,可以實現(xiàn)很多真核蛋白的有效表達。常用的宿主細胞則來源于草地貪夜蛾的 Sf-9 和 Sf-21 細胞系[27]。范立強等[28]將 hEC-SOD 基因插入昆蟲桿狀病毒供體質(zhì)粒 pFastBacHTb 中,再將其轉(zhuǎn)染粉紋夜蛾細胞 Tn-5B1-4,SDS-PAGE 和 Western blot 結(jié)果顯示 hEC-SOD 在粉紋夜蛾細胞中成功表達,其細胞裂解物中的hEC-SOD比活力為 260 U/mg。Shrestha 等[29]將全長和截短的 hEC-SOD 基因分別克隆到供體質(zhì)粒 pFastBacHTb,并轉(zhuǎn)染到 SF9 桿狀病毒表達系統(tǒng),也成功表達出了有活性的全長和截短的 hEC-SOD,且 Western blot 顯示重組 hEC-SOD 同時以單體(33 kD)和二聚體(66 kD)形式存在。
昆蟲細胞表達系統(tǒng)可以同時表達數(shù)個外源基因,在生產(chǎn)蛋白復(fù)合體時尤其有效。目前,昆蟲表達系統(tǒng)已經(jīng)廣泛應(yīng)用于疫苗生產(chǎn)和重組病毒殺蟲劑等眾多領(lǐng)域。但由于鱗翅類昆蟲的蛋白加工路徑和高等真核生物不同,且桿狀病毒感染可能對宿主的蛋白加工具有負面影響,因此其應(yīng)用還存在一定的限制。
一般通過質(zhì)粒轉(zhuǎn)染或病毒載體感染的方法在哺乳動物細胞中表達外源蛋白。利用病毒表達體系可以快速感染細胞,在幾天內(nèi)使外源基因整合到病毒載體中,而利用質(zhì)粒轉(zhuǎn)染獲得穩(wěn)定的轉(zhuǎn)染細胞則需要幾周甚至幾個月時間。Lu 等[30]采用編碼 hCu/Zn-SOD 和 hEC-SOD 的兩個序列,以及山羊 β-酪蛋白的 5' 端和 3' 端的調(diào)控元件,構(gòu)建了乳腺特異性表達載體,通過共轉(zhuǎn)染法制備山羊胚胎成纖維細胞作為供體細胞,Western blot 檢測顯示重組 hCu/Zn-SOD 和 hEC-SOD 在轉(zhuǎn)雙基因山羊乳腺中均有表達。聯(lián)合酶聯(lián)免疫吸附試驗(ELISA)顯示,重組 hCu/Zn-SOD 的表達量為 100.14 mg/L,重組 hEC-SOD 的表達量為 279.10 mg/L。酶活性測定結(jié)果顯示,羊奶中重組 hCu/Zn-SOD 和 hEC-SOD 的總生物活性為 1451 U/ml。這些結(jié)果證明了哺乳動物細胞具有生產(chǎn)重組 SOD 的潛力。
表 1 不同系統(tǒng)表達的重組人源 SOD 比活力比較
hCu/Zn-SOD 作為抗氧化酶能夠減輕活性氧自由基對細胞的損傷,且不會引起免疫反應(yīng),但是hCu/Zn-SOD 的大規(guī)模生產(chǎn)和臨床使用受到產(chǎn)量和可溶性的限制。通過定點突變改變 hCu/Zn-SOD 的一些氨基酸殘基可以改善其產(chǎn)量和品質(zhì)。
hCu/Zn-SOD 包含 2 個亞基,每個亞基又包含 4 個半胱氨酸(Cys)殘基,其對應(yīng)的位置分別是 6、57、111 和 146,其中 Cys57 和 Cys146 之間形成分子內(nèi)二硫鍵,6 位和 111 位是游離的半胱氨酸殘基。周贊虎等[36]應(yīng)用 PCR 定點突變技術(shù)把 hCu/Zn-SOD 基因的 Cys111密碼子突變?yōu)?Ala111密碼子,通過隨機同源重組將突變后的 hCu/Zn-SOD 整合到聚球藻sp. PCC7942 中并實現(xiàn)表達,表達產(chǎn)物在 80 ℃保溫 30 min 后仍具有 95% 的活力,耐熱能力比天然 hCu/Zn-SOD 有了較大的提高。張琨等[37]通過重疊 PCR 技術(shù)將天然 hCu/Zn-SOD 基因的 Cys6密碼子突變?yōu)?Ala6密碼子,Cys111密碼子突變?yōu)?Ser111密碼子,通過大腸桿菌重組表達得到改構(gòu)體蛋白 rmhCu/Zn-SOD6Ala,111Ser,從 1 g 濕菌體中獲得的活性蛋白總量高于未改構(gòu)體的 2 倍,改構(gòu)體的熱穩(wěn)定性也獲得大幅度提高。高淑彬[38]分別構(gòu)建天然 hCu/Zn-SOD 和 Cys111突變成 Ala111的突變 hCu/Zn-SOD 表達載體,并在大腸桿菌中表達,其表達量都占菌體總蛋白的 45%以上,突變 hCu/Zn-SOD 酶活力和穩(wěn)定性均高于天然 hCu/Zn-SOD,證明通過基因突變可以改善酶的性能。通過隨機整合方式將突變的 hCu/Zn-SOD 基因整合到藍藻sp.PCC7942 染色體上,動物實驗證明轉(zhuǎn)突變 hCu/Zn-SOD 基因的藍藻口服后具有較強的抗氧化作用,為進一步研究開發(fā)半衰期長的可直接口服的 hCu/Zn-SOD 奠定了基礎(chǔ)。Zhang 等[39]將 hCu/Zn-SOD 的 6 位和 111 位的半胱氨酸(C)突變?yōu)榻z氨酸(S),構(gòu)建了 3 個突變體 mhSOD1/C6S、mhSOD1/C111S 和 mhSOD1/C6S/C111S。結(jié)果表明,與野生型相比,除了 C6S 突變使重組蛋白可溶性表達降低以外,C111S 和 C6S/C111S 突變均能增加重組蛋白在大腸桿菌中的可溶性表達,進而提高重組蛋白的產(chǎn)量,且 C111S 突變效果優(yōu)于 C6S/C111S。此外,mhSOD1/C111S 顯示了更低的毒性和更強的美白和抗輻射活性。因此,C111S 突變是工業(yè)化大規(guī)模生產(chǎn)和開發(fā)重組人源 SOD 的一個有效策略。
融合蛋白技術(shù)是指利用基因工程技術(shù),將兩段或多段編碼功能蛋白的基因有目的地連接在一起并進行表達,從而產(chǎn)生一種新的人工融合蛋白的方法。由相對較小的結(jié)構(gòu)域拼裝成較大的多功能蛋白是自然進化的一個重要因素。因此,在基因水平上將不同的結(jié)構(gòu)域進行連接,并且使其表達成融合蛋白,是形成多功能蛋白、降低原蛋白毒副作用及改造天然蛋白的重要方法。由于有新功能蛋白加入,融合蛋白的性能被優(yōu)化,并產(chǎn)生新的生物功能和活性,所以這種新型的人工蛋白具有重要的理論意義和潛在的應(yīng)用價值[40]。
細胞膜上沒有專一的 SOD 通道或受體,外源 SOD 難以進入細胞內(nèi)發(fā)揮抗氧化作用,因而限制了其臨床應(yīng)用[11]。HIV-1 反式激活蛋白 TAT 的蛋白轉(zhuǎn)導(dǎo)結(jié)構(gòu)域(protein transduction domain,PTD)是一種廣譜的能攜帶大分子物質(zhì)穿透動物細胞膜的小分子多肽,可以解決 SOD 蛋白透膜相關(guān)難題。PTD 可以引導(dǎo)多種多肽和蛋白進入目標細胞,具有轉(zhuǎn)導(dǎo)速度快、效率高和溫度適應(yīng)性廣等優(yōu)點,且能夠透過血腦屏障[41]。大部分 PTD 或與 PTD 共價結(jié)合的蛋白在跨過細胞膜后轉(zhuǎn)運到細胞核而不是細胞質(zhì)或其他細胞器,因此PTD 運輸系統(tǒng)只適用于在細胞核內(nèi)發(fā)揮功能的藥物分子的轉(zhuǎn)運[42]。王宇等[43]研究 PTD4 介導(dǎo)的 Cu/Zn-SOD 對大鼠心肌細胞缺氧-復(fù)氧損傷(HRI)的影響,發(fā)現(xiàn)重組的 PTD4-Cu/Zn-SOD 融合蛋白可以明顯減少 HRI 導(dǎo)致的細胞凋亡,從而減輕大鼠心肌細胞的 HRI,證明了重組 PTD4-Cu/Zn-SOD 可以高效穿透心肌細胞,改善心肌細胞缺血再灌注損傷。Yao 等[44]在骨癌研究中發(fā)現(xiàn),活性氧在一定程度上參與了腫瘤疼痛的發(fā)展和持續(xù),而重組 PTD-Cu/Zn-SOD 可以減弱這種作用,因此其在骨癌治療中可作為一種潛在的輔助治療劑。Zhang 等[45]將所獲得的 Mn-SOD、PTD-Mn-SOD 和脂質(zhì)體 Mn-SOD 用于保護人臍靜脈內(nèi)皮細胞(HUVECs)氧化損傷,結(jié)果發(fā)現(xiàn),與天然 Mn-SOD 相比,PTD-Mn-SOD 和脂質(zhì)體 Mn-SOD 可發(fā)揮更強的藥理作用。孟麗華和薛榮亮[46]通過檢測 PTD4-Cu/Zn-SOD 進入人星形膠質(zhì)細胞內(nèi)的熒光蛋白的分布情況,發(fā)現(xiàn) PTD4-Cu/Zn-SOD 融合蛋白能夠穿過細胞膜,且可以降低因細胞缺氧損傷所致的細胞凋亡。PTD 與 SOD 進行融合的方法簡單易行,可提供大量廉價、安全、高活性的重組 SOD 制品。需要強調(diào)的是,盡管 PTD-Cu/Zn-SOD 融合蛋白具有良好的穿透細胞膜特性,但沒有組織特異性,若是靜脈給藥可能會迅速導(dǎo)入血管內(nèi)皮細胞或血細胞,不能很好地到達靶區(qū)發(fā)揮作用,因此需要進一步改進結(jié)構(gòu)或給藥途徑以解決其靶向問題[47]。
PEP-1 是一種人工設(shè)計的主要用于轉(zhuǎn)導(dǎo)大分子蛋白的細胞穿透肽(cell penetrating peptide,CPP),它能高效率地攜帶具有治療效果的蛋白進入細胞并發(fā)揮其生物學(xué)效應(yīng)。Liu 等[48]構(gòu)建了表達 PEP-1-hMnSOD 融合蛋白的表達載體,并在雙歧桿菌中成功表達了 PEP-1-hMnSOD 融合蛋白。在進一步臨床研究中,將透膜性和穩(wěn)定性較差的 hMnSOD 通過 PEP-1 遞送到結(jié)腸炎癥細胞內(nèi),通過對炎癥細胞因子 TNF-α、IL-1β、IL-6 和 IL-8 水平以及結(jié)腸組織學(xué)損傷檢測,發(fā)現(xiàn) PEP-1-hMnSOD 融合蛋白能夠有效地減輕葡聚糖硫酸鈉誘導(dǎo)的潰瘍性結(jié)腸炎。因此口服表達 PEP-1-hMnSOD 融合蛋白的雙歧桿菌工程菌可作為治療潰瘍性結(jié)腸炎的新方法。
神經(jīng)干細胞(neural stem cells,NSCs)移植已被證明是一種潛在的治療創(chuàng)傷性腦損傷(traumatic brain injury,TBI)的策略。Jia 等[49]探索 NSCs 移植配合 PEP-1-SOD1 共同治療大鼠腦缺血的可能性。體外實驗證明,PEP-1-SOD1 能提高神經(jīng)干細胞的增殖和分化;體內(nèi)實驗表明,與單獨 NSCs 移植相比,PEP-1-SOD1 聯(lián)合 NSCs 移植策略對大鼠 TBI 后的功能恢復(fù)有明顯的促進作用。Yoo 等[50]探討了Cu/Zn-SOD 對脂肪組織來源間充質(zhì)干細胞(adipose tissue-derived mesenchymal stromal cells,Ad-MSCs)抗脊髓缺血損傷的促進作用。結(jié)果顯示 PEP-1-SOD1 和 Ad-MSCs聯(lián)合應(yīng)用進一步增強了 Ad-MSCs 對神經(jīng)元缺血損傷的保護作用。相對于 PTD 融合蛋白,PEP 融合蛋白具有其獨特優(yōu)勢。PTD 融合蛋白進入細胞后,所攜帶的功能蛋白需要在細胞內(nèi)分子伴侶 HSP90 的幫助下重折疊才能發(fā)揮其生物學(xué)效應(yīng),靶蛋白的生物活性依賴于細胞內(nèi) HSP90 的重折疊效率,因此 PTD 融合蛋白技術(shù)的臨床應(yīng)用受到了一定限制[51]。而 PEP 融合蛋白能夠直接攜帶具有生物活性的功能蛋白進入細胞發(fā)揮生物學(xué)效應(yīng),同時它還具有轉(zhuǎn)導(dǎo)效率高、無毒性及不受血清影響等優(yōu)勢,這使細胞穿透肽 PEP 在應(yīng)用上更具有潛力,可能成為更適合于蛋白治療的載體工具。
研究者們曾嘗試將不同功能的蛋白與 SOD 進行組合,將不同蛋白的優(yōu)勢和特點融合在一起,以賦予目的蛋白多種新的屬性和功能。周宇飛等[14]為了增強胸腺素 α1(Thyα1)的穩(wěn)定性和免疫功能,采用胸腺素 α1 與人源 SOD 融合的策略,構(gòu)建了 6His-hSOD-(G4S)1-Thyα1 和 6His-hSOD-(G4S)2-Thyα1 兩個融合基因,并在畢赤酵母中實現(xiàn)了高水平表達。重組表達的融合蛋白經(jīng)過進一步純化后進行了活性檢測,結(jié)果表明這兩個融合蛋白既有 SOD 的活性,又有 Thyα1 的活性。盛明明等[52]采用基因工程技術(shù)通過大腸桿菌制備一種兼具人源 SOD 和過氧化氫酶(CAT)活性的多功能融合蛋白 CAT-PTD-SOD,該融合蛋白大部分以兼具 SOD 和 CAT 活性的可溶形式存在。在 0.033 mol/L、甚至 0.067 mol/L 的 H2O2溶液中,SOD 活性在 20 min 內(nèi)無明顯下降,證明其具備抗氧化和分解過氧化氫的雙重作用。潘劍茹等[53]構(gòu)建了 SOD1 和穿膜肽 R9 的融合蛋白表達質(zhì)粒 GST(谷胱甘肽巰基轉(zhuǎn)移酶)-SOD1-R9,通過大腸桿菌 BL21(DE3)表達出具有雙效抗氧化功能的 GST-SOD1-R9 融合蛋白。該融合蛋白不僅能夠清除多余的活性氧自由基,而且還能夠修復(fù)或清除體內(nèi)已被氧化損傷的生物分子,并再生氧化損傷的含巰基蛋白。Pan 等[54]研究了 GST-TAT-SOD 對順鉑損傷細胞的保護作用,證明 GST-TAT-SOD 通過直接清除多余的細胞內(nèi)自由基和增強細胞抗氧化防御,可以解除順鉑治療引起的生長抑制和細胞凋亡,因此GST-TAT-SOD 可以作為順鉑誘導(dǎo)的細胞損傷的保護劑。此外,Pan 等[55]還通過小鼠全身X 射線輻射實驗,表明雙功能 GST-TAT-SOD 對 X 射線輻射所致?lián)p傷有一定的防護作用,能夠有效提高小鼠脾臟和肝臟的抗氧化能力、脾臟白髓數(shù)目和胸腺指數(shù)等,不僅顯著提高了X 射線輻照小鼠體重增長率,而且提高了接受致死量照射小鼠的存活率。GST-TAT-SOD 的整體效果比阿米福汀好一些,所以 GST-TAT-SOD 可作為一種安全的輻射防護劑。Luangwattananun 等[56]設(shè)計并研制了三功能融合蛋白CAT-CuZnSOD/6His-CuZnSOD-TAT(CS/S-TAT),與其之前設(shè)計的 6His-MnSOD-TAT/CAT-MnSOD(M-TAT/CM)相比,分子大小減小 42%,其 SOD 和 CAT 活性分別提高 22% 和 99%。在 70 ℃孵育 10 min 后,CS/S-TAT 保留了 54% 的殘余 SOD 活性,而 M-TAT/CM 的 SOD 活性完全消除。此外,在 70 ℃時,CS/S-TAT 的半衰期比 M-TAT/CM 提高了 5 倍。該酶能夠跨膜進入哺乳動物細胞,可作為氧化損傷細胞的保護劑或治療劑。因此,這項工作為設(shè)計和合成一種更穩(wěn)定的多功能抗氧化酶提供了參考??傊喙δ艿娜诤系鞍自诳寡趸矫?,往往比單一的抗氧化蛋白具有更大的優(yōu)勢。因此,融合蛋白的巨大優(yōu)勢使其有望成為新一代抗氧化藥物的有力競爭者,為開發(fā)高效率抗氧化蛋白開辟了新途徑。
SOD 是生物體內(nèi)一種重要的氧自由基清除劑,具有重要的生物學(xué)功能。許多疾病(如肌萎縮側(cè)索硬化、動脈硬化閉塞癥、腫瘤轉(zhuǎn)移和感染性疾病等)的產(chǎn)生和發(fā)展與 SOD 缺乏或不正確折疊有關(guān)[57-60]。隨著 SOD 研究不斷深入和工業(yè)化生產(chǎn)規(guī)模逐漸擴大,SOD 還被應(yīng)用于化學(xué)、生物學(xué)、食品科學(xué)和植物病害預(yù)防等多個領(lǐng)域。但是受天然 SOD 的理化性質(zhì)所限,如靜脈注射后體內(nèi)半衰期僅為 6 min[9],口服后在胃腸道中容易被破壞而失去療效,膜透過率低等,這些因素使其在應(yīng)用方面受到了很大的限制。目前,人們對 SOD 蛋白進行了化學(xué)修飾、人工有機合成 SOD 模擬物和運用基因工程法制備 SOD 等方面的探索,普遍認為通過基因工程制備重組人源 SOD 是最為經(jīng)濟、快捷、有效且安全的方法[16]。隨著現(xiàn)代生物技術(shù)的快速發(fā)展,國內(nèi)外在微生物發(fā)酵生產(chǎn)重組 SOD 的菌種選育、高產(chǎn)菌開發(fā)和發(fā)酵工藝的優(yōu)化等方面都取得了一定進展。通過基因工程技術(shù)生產(chǎn)重組人源SOD,既降低了其他來源 SOD 的免疫原性問題,又解決了人源 SOD 的來源問題,并且可以克服傳統(tǒng)工藝限制,使人們可以按照自己的意愿定向改造目的蛋白。隨著研究的進一步深入,基于基因工程主導(dǎo)的生物工程將逐漸推進重組 SOD 實現(xiàn)產(chǎn)業(yè)化,利用 SOD 開發(fā)的產(chǎn)品也將會得到更為廣泛的應(yīng)用。
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