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    廣東地區(qū)豬群新發(fā)塞內(nèi)卡病毒流行株的分離鑒定及遺傳進(jìn)化分析

    2019-08-14 02:45:18林秀銀溫肖會(huì)呂殿紅翟少倫魏文康楊彩娟
    廣東農(nóng)業(yè)科學(xué) 2019年6期
    關(guān)鍵詞:病料水皰口蹄疫

    林秀銀,溫肖會(huì),呂殿紅,翟少倫,霍 瑋,翟 頎,魏文康,楊彩娟

    (1.仲愷農(nóng)業(yè)工程學(xué)院動(dòng)物科技學(xué)院,廣東 廣州 510225;2.廣東省農(nóng)業(yè)科學(xué)院動(dòng)物衛(wèi)生研究所/農(nóng)業(yè)農(nóng)村部獸用藥物與診斷技術(shù)廣東科學(xué)觀測(cè)實(shí)驗(yàn)站/廣東省畜禽疫病防治研究重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,廣東 廣州 510640;3. 廣東省動(dòng)物防疫物資儲(chǔ)備中心,廣東 廣州 510520)

    【研究意義】塞內(nèi)卡病毒(Senecavirus A,SVA),也稱(chēng)為塞內(nèi)加谷病毒(Seneca valley virus,SVV),屬于小RNA病毒科(Picornaviridae)塞內(nèi)卡病毒屬[1],與心病毒屬(Cardiovirus)的親緣關(guān)系較近。SVA病毒粒子的直徑為20~30 nm ,呈正二十面體,無(wú)囊膜。SVA具有小RNA病毒科病毒基因組的共同特點(diǎn),即呈現(xiàn)L-4-3-4分布[2]。SVA 基因組約7.2 kb,為單鏈正股RNA。雖然SVA造成的損失有限,但由于該病的臨床癥狀癥狀與口蹄疫(foot-and-mouth disease,F(xiàn)MD)、豬水皰病 (swine vesicular disease,SVD)、豬水皰疹(vescular exanthema of swine,VES)和水皰性口炎(vesicular stomatitis,VS)等豬原發(fā)性水皰病(porcine idiopathic vesicular disease,PIVD)極為相似,能引起豬的鼻吻和蹄部冠狀帶、蹄部出現(xiàn)水皰樣病變[3],臨床上很難區(qū)分,甚至容易誤診,必須借助實(shí)驗(yàn)室方法[4-6]來(lái)鑒別。SVA危害養(yǎng)豬業(yè)的健康,能引起很大的經(jīng)濟(jì)損失?!厩叭搜芯窟M(jìn)展】塞內(nèi)卡病毒病最早于2002年在美國(guó)分離,此后美洲陸續(xù)報(bào)道了SVA引起豬水皰性疾病的病例。從2015年開(kāi)始,巴西、美國(guó)、加拿大、哥倫比亞、泰國(guó)、越南[7-13]等多國(guó)相繼發(fā)生SVA感染豬的疫情,且呈蔓延之勢(shì)。2015年,我國(guó)廣東省發(fā)生由SVA引起的水皰性疾病,這是我國(guó)首次發(fā)現(xiàn)SVA的存在[14],此后,SVA在黑龍江、福建、河南、湖北等?。?5-20]陸續(xù)有相關(guān)報(bào)道?!颈狙芯壳腥朦c(diǎn)】我們于2016—2018年從廣東地區(qū)兩個(gè)養(yǎng)殖場(chǎng)收集及保存了108份臨床樣品,包括口鼻部、蹄冠部位帶有水皰樣病變的水皰皮及水皰液病料,采用熒光RT-PCR的方法排查FMD、SVD,初步懷疑豬病由SVA感染引起。本研究采用細(xì)胞分離、電子顯微鏡檢查、RT-PCR等鑒定方法,對(duì)病料進(jìn)行分離和鑒定,最后分離得到兩株SVA毒株,并進(jìn)行基因序列測(cè)定及遺傳進(jìn)化分析?!緮M解決的關(guān)鍵問(wèn)題】目前,國(guó)內(nèi)分離到的SVA流行毒株數(shù)量較少,對(duì)于SVA的研究還不夠深入。本研究通過(guò)對(duì)樣品進(jìn)行篩選,從而分離鑒定出兩株SVA,為研究SVA的生物學(xué)特性、發(fā)病機(jī)理、遺傳進(jìn)化提供試驗(yàn)材料。

    1 材料與方法

    1.1 試驗(yàn)材料

    供試病料為2016—2018年于廣東省兩個(gè)養(yǎng)殖場(chǎng)收集的疑似SVA的108份病料組織,供試細(xì)胞為BHK-21細(xì)胞、ST細(xì)胞,均由廣東省農(nóng)業(yè)科學(xué)院動(dòng)物衛(wèi)生研究所保存。

    主要試劑:高糖DMEM培養(yǎng)基、胎牛血清、0.25% 胰蛋白酶,均購(gòu)自賽默飛世爾有限公司;PrimeScript ? One Step RT- PCR Kit試 劑 盒、pMD19-T載體、DNA 膠回收試劑盒、DL2000 DNA Marker,均購(gòu)自大連 TaKaRa 公司;感受態(tài)細(xì)胞TOP 10,購(gòu)自天根生化(北京)公司;AxyPrepTM體液病毒DNA/ RNA小量提取試劑盒,購(gòu)自康寧生命科學(xué)有限公司;口蹄疫病毒通用型/豬水皰病毒/塞內(nèi)卡病毒三重核酸檢測(cè)試劑盒(PCR-熒光探針?lè)ǎ?,?gòu)自深圳澳東檢驗(yàn)檢測(cè)科技有限公司。

    主要儀器:梯度PCR儀(美國(guó)BIO-RAD T100)、熒光定量PCR儀(Agilent Stratagene MX3000P)、CO2培養(yǎng)箱、超凈工作臺(tái)(蘇州凈化設(shè)備廠)、三目倒置顯微鏡(重慶光電XDS-1B)、電子顯微鏡(日立H-7650)。

    1.2 試驗(yàn)方法

    1.2.1 樣品采集與處理 無(wú)菌采集病豬蹄部水泡皮(病料1)、鼻鏡部水泡皮(病料2),-20 ℃保存。將病料剪碎、加入pH 7.4的PBS研磨,將制成的懸液反復(fù)凍融3次,12 000 g、4 ℃離心20 min ,取上清液。

    1.2.2 病毒提取 根據(jù)AxyPrep體液病毒 DNA/RNA小量提取試劑盒的說(shuō)明書(shū)對(duì)病料提取核酸,-80 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>

    1.2.3 熒光定量PCR鑒定 提取核酸后,利用口蹄疫病毒通用型/豬水皰病毒/塞內(nèi)卡病毒三重核酸檢測(cè)試劑盒鑒定所采集的病料。反應(yīng)體系制備:核酸擴(kuò)增反應(yīng)液16 μL,F(xiàn)MDV/SVD/SVA三重反應(yīng)液2 μL,RT-PCR酶混液2 μL,待檢樣品RNA 2 μL,總體積為25 μL,分別做陰性對(duì)照、陽(yáng)性對(duì)照。反應(yīng)程序:50 ℃反轉(zhuǎn)錄30 min,95 ℃預(yù)變性5 min,95 ℃變性10 s、55 ℃退火/延伸40 s,共40個(gè)循環(huán)。設(shè)置熒光信號(hào):熒光信號(hào)采集設(shè)定在退火/延伸時(shí)。對(duì)于多通道熒光PCR儀,口蹄疫病毒通用型選擇熒光素ROX為信號(hào)采集通道,豬水皰病毒選擇熒光素FAM為信號(hào)采集通道,SVA選擇熒光素CY5為信號(hào)采集通道,淬滅基團(tuán)選None,染料校正選None,記錄實(shí)驗(yàn)結(jié)果。

    1.2.4 病毒細(xì)胞分離 將經(jīng)過(guò)研磨的病料1和病料2,4 ℃下12 000 g離心10 min,取上清液,用孔徑0.22 μm的過(guò)濾器過(guò)濾。將處理好的病毒液分別接種到長(zhǎng)至80%~90%的單層ST細(xì)胞、BHK-21細(xì)胞上,在37℃、5%CO2的條件下孵育1 h,棄上清液,加入10 mL含 2%胎牛血清的DMEM,培養(yǎng)48 h,每隔12 h觀察細(xì)胞病變情況,盲傳10代,同時(shí)設(shè)立正常ST細(xì)胞、BHK-21細(xì)胞為對(duì)照。

    1.2.5 電子顯微鏡檢查 收集出現(xiàn)細(xì)胞病變的病毒液,利用蔗糖梯度密度離心法[21]純化,并進(jìn)行病毒液處理,具體步驟如下:取5 μL純化后的樣品滴于銅網(wǎng)上,靜置2 min后用濾紙從銅網(wǎng)邊緣吸去多余液體;滴加1滴3%、pH為7.0的磷鎢酸于銅網(wǎng)上,靜置2 min后用濾紙從銅網(wǎng)邊緣吸去多余的磷鎢酸;滴加1滴純水于銅網(wǎng)上,用濾紙從銅網(wǎng)邊緣吸取多余水分,約20 min銅網(wǎng)干燥后,在電子顯微鏡下觀察,拍照記錄。

    1.2.6 病毒的 RT-PCR鑒定 利用RT-PCR檢測(cè)方法對(duì)純化的病毒進(jìn)行鑒定。采用文獻(xiàn)[22]的SVA鑒定引物,上游引物F為5′-GTTCCACTC-CACCGACAA-3′,下游引物R為 5′-AAACCACCCTACAGCAAAT-3′,預(yù)期目的片段大小為429 bp。一步法反應(yīng)體系:基因組RNA模板2 μL,PrimeScript 1 Step Enzyme Mix 1 μL,上游引物 F 0.5 μL,下游引物 R 0.5 μL,2×1 Step Buffer 12.5 uL、滅菌蒸餾水8.5 μL,共25 μL。反應(yīng)程序:50 ℃反轉(zhuǎn)錄30 min,94 ℃預(yù)變性 5 min;94 ℃變性 30 s、55 ℃退火 30 s、72 ℃延伸60 s ,共 35 個(gè)循環(huán);72 ℃延伸10 min。反應(yīng)結(jié)束后,用1.2%瓊脂糖凝膠對(duì)PCR產(chǎn)物進(jìn)行電泳鑒定。將經(jīng)膠回收純化的PCR陽(yáng)性產(chǎn)物克隆至pMD19-T載體,重組質(zhì)粒送生工生物工程(上海)股份有限公司進(jìn)行測(cè)序。

    1.2.7 RT-PCR擴(kuò)增序列分析 對(duì)擴(kuò)增片段測(cè)序,測(cè)序結(jié)果提交至NCBI Blast進(jìn)行搜索比對(duì),對(duì)擴(kuò)增的核苷酸序列與GenBank中登錄的SVA序列進(jìn)行同源性比對(duì),并利用軟件Megalign、DNAStar繪制系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù)。

    1.2.8 病毒的TCID50檢測(cè) 利用半數(shù)組織細(xì)胞感染量(Tissue Culture Infective Dose,TCID50)的方法確定病毒液的滴度,并用Reed-Muench法計(jì)算。具體步驟如下:將長(zhǎng)勢(shì)良好的BHK-21細(xì)胞進(jìn)行傳代,待細(xì)胞長(zhǎng)到單層,用2 mL pH 7.4 PBS洗滌細(xì)胞表面,重復(fù)3次,用0.25%胰酶消化長(zhǎng)成單層的BHK-21細(xì)胞,用細(xì)胞培養(yǎng)基使細(xì)胞重新懸浮于液體中,制成細(xì)胞懸液;用全自動(dòng)細(xì)胞計(jì)數(shù)器TC20測(cè)定細(xì)胞懸液的濃度,濃度約2×105個(gè)/mL時(shí),將含有細(xì)胞的懸浮培養(yǎng)基接種到96孔板上,100 μL /孔,待細(xì)胞長(zhǎng)成單層后,棄去舊的培養(yǎng)基;每孔各加入100 μL用細(xì)胞維持液以10倍倍比稀釋的病毒液(10-1~10-8),每個(gè)稀釋度重復(fù)8個(gè)孔,并以正常BHK-21細(xì)胞為陰性對(duì)照,37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)72 h,每隔12 h觀察1次; 通過(guò)三目倒置生物顯微鏡觀察細(xì)胞病變情況,記錄細(xì)胞病變的孔數(shù)和未有細(xì)胞病變的孔數(shù),并用Reed-Muench法計(jì)算病毒的TCID50。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 熒光RT-PCR檢測(cè)結(jié)果

    經(jīng)熒光RT-PCR檢測(cè),CY5信號(hào)采集時(shí),陽(yáng)性對(duì)照的Ct值為22.58、病料1的Ct值為17.97、病料2的Ct值為19.37,病料1、病料2均為塞內(nèi)卡病毒陽(yáng)性,對(duì)口蹄疫病毒、豬水皰病病毒均為陰性(圖1)。

    2.2 病毒的分離與增殖

    在倒置顯微鏡下觀察,結(jié)果(圖2、圖3)發(fā)現(xiàn),接種病料的ST細(xì)胞,分別盲傳至第6代,培養(yǎng) 48 h 后開(kāi)始出現(xiàn)細(xì)胞病變,表現(xiàn)為細(xì)胞變圓,脫落,大量細(xì)胞漂浮在培養(yǎng)基里,對(duì)照的ST細(xì)胞生長(zhǎng)良好,沒(méi)有出現(xiàn)任何病變(圖2)。

    圖1 熒光RT-PCR檢測(cè)結(jié)果Fig.1 Fluorescence RT-PCR results

    圖2 病料接種ST細(xì)胞的細(xì)胞病變情況Fig.2 The CPE of ST cells in clinical test

    而病料接種到BHK-21細(xì)胞上,盲傳至第6代,培養(yǎng)48 h后開(kāi)始出現(xiàn)細(xì)胞病變,表現(xiàn)為細(xì)胞變圓,脫落,大量細(xì)胞漂浮于液面上,對(duì)照的BHK-21細(xì)胞生長(zhǎng)良好,沒(méi)有出現(xiàn)任何病變(圖3)。

    圖3 病料接種BHK-21細(xì)胞的細(xì)胞病變情況Fig.3 The CPE of BHK-21 cells in clinical test

    2.3 病毒的電子顯微鏡觀察結(jié)果

    將通過(guò)蔗糖濃度梯度離心純化的病毒液,經(jīng)磷鎢酸負(fù)染后,在電子顯微鏡下可清晰觀察到病毒粒子,直徑大小約為25 nm(圖4)。

    2.4 病毒的RT-PCR鑒定

    將兩個(gè)病料純化的病毒經(jīng)過(guò)RT-PCR反應(yīng),PCR產(chǎn)物經(jīng)1.2%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè),兩個(gè)病料病毒均在429 bp處出現(xiàn)明亮的條帶,大小與預(yù)期結(jié)果相符(圖5)。

    2.5 NCBI Blastn序列比對(duì)結(jié)果

    將擴(kuò)增得到的片段測(cè)序,結(jié)果提交到NCBI Blastn進(jìn)行搜索比對(duì),兩個(gè)毒株均鑒定為SVA片段,結(jié)果表明,本研究分離到兩株塞內(nèi)卡病毒,將病料1病毒命名為SVA CH-GDBL1-2016,病料2病毒命名為SVA CHGDBL2-2016。

    圖4 SVA電鏡圖Fig.4 Electron micrograph of SVA

    圖5 純化病毒的RT-PCR檢測(cè)結(jié)果Fig.5 RT-PCR results of purified virus

    2.6 病毒的同源性及遺傳變化分析

    利用軟件Megalign、DNAStar進(jìn)行序列分析,序列比對(duì)結(jié)果(圖6)表明,本研究的分離株 SVA CH-GDBL1-2016、SVA CH-GDBL2-2016的序列與2002年美國(guó)分離株SVV-001相比,同源性分別為92.6%、92.3%;分離株SVA CHGDBL1-2016與美國(guó)分離株SVA-OH1、SVAOH2、SVA-715、MN15-308-M3、NC-011349、US-15-41901SD、USA-SD41901-2015、USA-INPurdue-1581-2016、USA-IN-Purdue-3698-2016的同源性在92.6%~96.3%之間;分離株SVA CH-GDBL2-2016與上述美國(guó)分離株的同源性在92.3%~97%之間;分離株SVA CHGDBL1-2016、SVA CH-GDBL2-2016與 加 拿 大分離株11-55910-3的同源性分別為97.7%、97%,與哥倫比亞分離株Colombia-2016的同源性分別為96.5%、95.8%;與巴西分離株SVABRA-GO3-2015、SVA-BRA-MG1-2015的 同 源性分別為96.5%、97.2%;與泰國(guó)分離株G103-SV-1-2016-Thailand、G103-SV-2-2016-Thailand的同源性分別為95.8%、95.1%;與越南分離株SVA-VIT-3187-2018的同源性分別為98.4%、97.7%;分離株SVA CH-GDBL1-2016與中國(guó)分 離 株 CH-GDLZ02-2017、CH-GDQC-2017、C H-G D Y D-2 0 1 7、C H-G X I 0 9-2 0 1 6、CH-HNSL-2017、CH-LX-01-2016、CHZW-01-2016、GD05-2017、HB-CH-2016、SVA-CHN-17-2017、SVA-HLJ-CHA-2016、CHDB-11-2015、CH-DL-01-2016、CH-FJ-2017、CH-GDLZ01-2017的同源性在94.9%~98.6%之間;分離株SVA CH-GDBL2-2016與上述中國(guó)分離株的同源性在95.6%~99.3%之間,其中與分離株CH-GXI09-2016、SVA-CHN-17-2017的同源性高達(dá)99.3%。

    由圖7可知,本研究分離的2株病毒在同一個(gè)小分支上,與中國(guó)分離株CH-GXI09-2016的親緣關(guān)系較近,而與美國(guó)分離株SVV-001、NC-011349不在同一分支上,親緣關(guān)系較遠(yuǎn),存在較大差異。

    2.7 病毒的TCID50檢測(cè)結(jié)果

    根據(jù)Reed-Muench法及病毒液在BHK-21細(xì)胞的病變情況,計(jì)算病毒液的TCID50,分別得到SVA CH-GDBL1-2016的 TCID50為 106.8,SVA CH-GDBL2-2016的TCID50為106.7。

    3 討論

    3.1 新分離毒株的同源性及遺傳變化

    從同源性分析來(lái)看,本研究分離到的2個(gè)毒株與我國(guó)分離株CH-GXI09-2016、SVACHN-17-2017的同源性最高、達(dá)99.3%;與美國(guó)分離株SVV-001的同源性分別為92.6%、92.3%,差異較大;從系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù)來(lái)看,本研究分離到的2個(gè)毒株與我國(guó)分離株CH-GXI09-2016、SVACHN-17-2017同屬一個(gè)分支,與加拿大分離株存在一定差異,與美國(guó)分離的原型毒株 SVV-001不在一個(gè)分支上,且距離最遠(yuǎn),這些差異可能與地域分布有關(guān)。SEGALéS等[23]將SVA VP1的系統(tǒng)進(jìn)化暫時(shí)劃分為 3 個(gè)譜系:Ⅰ系為原型毒株 SVV-001,Ⅱ系主要為 1988—1997 年的美國(guó)分離株,Ⅲ系包括了 2001 年至今從巴西、加拿大、中國(guó)、泰國(guó)和美國(guó)分離的毒株。說(shuō)明近30年來(lái)SVA VP1發(fā)生了變異,這些變異是否給發(fā)病機(jī)制、致病機(jī)理、致病性等帶來(lái)變化,需要進(jìn)一步研究。

    圖6 SVA VP1核苷酸序列同源性分析Fig.6 Homology analysis of the SVA VP1 according to nucleotide sequence

    圖7 SVA系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù)Fig.7 Phylogenetic tree of SVA

    3.2 豬鼻鏡與蹄冠水皰病的鑒別診斷

    病毒的分離培養(yǎng)是研究病毒特性、病毒機(jī)理的基礎(chǔ)。塞內(nèi)卡病毒病與口蹄疫、豬水皰病、豬水皰疹及水皰性口炎等豬原發(fā)性水皰疾病的臨床癥狀極為相似,必須借助實(shí)驗(yàn)室方法來(lái)鑒別。研究表明,在細(xì)胞分離方面,SVA能在NCI-H1299細(xì)胞、ST細(xì)胞、PK-15細(xì)胞、BHK-21細(xì)胞、IBRS-2細(xì)胞等細(xì)胞中增殖,并能產(chǎn)生相對(duì)明顯的CPE。本研究選擇了實(shí)驗(yàn)室比較常見(jiàn)的BHK-21細(xì)胞、ST細(xì)胞,對(duì)疑似SVA的水泡皮病料進(jìn)行分離培養(yǎng),自第6代起,病毒液在兩種細(xì)胞中均能出現(xiàn)典型的CPE。

    為了能進(jìn)一步的判斷,利用RT-PCR、熒光PCR能特異性地鑒定上述幾種豬原發(fā)性水皰疾病。研究人員在RT-PCR、熒光RT-PCR等方面做出了大量研究。KNOWLES等[24]設(shè)計(jì)了特異性引物,上、下游引物分別位于VP3和2A區(qū)域上,利用RT-PCR診斷技術(shù),擴(kuò)增完整的SVA VP1基因,在豬群中能檢測(cè)到SVA的存在。樊曉旭等[25]在SVA病毒保守的3D基因區(qū)域,設(shè)計(jì)Taq Man探針以及特異性引物,篩選兩者的最優(yōu)組合,建立 Taq Man熒光定量 PCR 檢測(cè)方法,用于病毒的早期檢測(cè)。劉健新等[6]根據(jù)SVA的VP1基因保守序列設(shè)計(jì)引物,建立了實(shí)時(shí)熒光定量PCR的檢測(cè)方法,該法特異性好、靈敏度高、操作簡(jiǎn)單。耗時(shí)短。

    3.3 塞內(nèi)卡病毒病是不容忽視的新發(fā)病

    塞內(nèi)卡病毒病的危害性雖然沒(méi)有豬口蹄疫高,但也不容忽視,防控該疾病非常必要。2015年,在我國(guó)廣東省發(fā)現(xiàn)了首例由SVA感染引起的水皰性疾病[26]。在我國(guó),塞內(nèi)卡病毒是新傳入的外來(lái)病,目前還沒(méi)有將塞內(nèi)卡病毒病歸類(lèi),也不在最新一版的世界動(dòng)物衛(wèi)生組織(OIE)《陸生動(dòng)物診斷試驗(yàn)與疫苗手冊(cè)》中。對(duì)所有水泡特征的疾病都應(yīng)在采取嚴(yán)格生物安全措施的情況下盡快確診,必須與口蹄疫、豬水皰病、水皰性口炎和水皰疹相區(qū)別,防止與我國(guó)I類(lèi)傳染病口蹄疫和豬水皰性疾病混淆。

    農(nóng)業(yè)部辦公廳2018年發(fā)布的《2018 年獸醫(yī)工作要點(diǎn)》明確提出,要做好塞內(nèi)卡病毒病等新傳入疫病的防治工作。此公告引起了業(yè)界對(duì)塞內(nèi)卡病毒病的高度關(guān)注,需要對(duì)SVA致病機(jī)理、流行情況、診斷和防控技術(shù)等進(jìn)行深入研究。

    4 結(jié)論

    本研究從廣東兩個(gè)豬場(chǎng)疑似塞內(nèi)卡病毒感染引起死亡的豬群中分離到2株病毒,經(jīng)過(guò)普通RT-PCR鑒定、熒光RT-PCR鑒定、細(xì)胞分離培養(yǎng)以及電子顯微鏡形態(tài)學(xué)觀察等方法檢測(cè),證實(shí)分離的這兩株病毒均為塞內(nèi)卡病毒新毒株,分別命名為SVA CH-GDBL1-2016和SVA CHGDBL2-2016。塞內(nèi)卡病毒新毒株可為后續(xù)塞內(nèi)卡病毒的診斷和疫苗研制提供試驗(yàn)材料。

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