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    高效液相色譜-三重四極桿質(zhì)譜法同時測定煙葉中10種多酚類化合物

    2019-07-13 02:34:02劉萍萍盧紫舒羅朝鵬李澤鋒鄭慶霞曹培健周會娜陳千思
    煙草科技 2019年6期
    關(guān)鍵詞:糖苷氯化綠原

    劉萍萍,盧紫舒,羅朝鵬,李澤鋒,翟 妞,鄭慶霞,盧 鵬,曹培健,周會娜,陳千思*

    1.中國煙草總公司鄭州煙草研究院,鄭州高新技術(shù)產(chǎn)業(yè)開發(fā)區(qū)楓楊街2號 450001

    2.鄭州大學(xué)化學(xué)與分子工程學(xué)院,鄭州高新技術(shù)產(chǎn)業(yè)開發(fā)區(qū)科學(xué)大道100號 450001

    多酚類化合物是植物中一類重要的次生代謝產(chǎn)物,在煙草中主要以葡萄糖苷和酯的形式存在。多酚類化合物可從植物中提取得到,具有良好的抗氧化性能,廣泛應(yīng)用于食品、醫(yī)學(xué)領(lǐng)域[1-5]。蕓香苷和原花青素可作為天然抗氧化劑;綠原酸具有廣泛的抗菌作用;花青素可用于食品、染料、醫(yī)藥、化妝品等方面[6];山奈酚廣泛存在于水果、蔬菜及飲料中,具有防癌抗癌的功效;氯化飛燕草色素、氯化飛燕草素3-O-β-吡喃葡糖苷、莨菪亭、鼠李金具有一定的抗氧化功能[7-8]。研究表明,多酚類化合物對煙草生長發(fā)育有重要影響,同時也與烤煙的感官質(zhì)量緊密相關(guān)[9-10]。

    烤煙中的多酚類化合物有多種,其中蕓香苷、綠原酸的質(zhì)量分?jǐn)?shù)最高,綠原酸占多酚類化合物總量的75%~90%[11]。其他質(zhì)量分?jǐn)?shù)低的多酚類化合物在煙草品質(zhì)鑒定與改善方面也有輔助作用。因此,準(zhǔn)確測定煙草中多酚類化合物對于煙草鑒定、煙草制品質(zhì)量控制及卷煙設(shè)計具有重要意義[10]。煙草中成分復(fù)雜,多酚類化合物質(zhì)量分?jǐn)?shù)差異較大,有些化合物質(zhì)量分?jǐn)?shù)偏低且不易檢測[12]。因此選用合適的樣品處理和檢測方法尤為重要。

    國內(nèi)外關(guān)于煙葉中多酚類化合物的定性定量分析已有較多報道,主要有毛細(xì)管電泳法、分光光度法、GC法、LC法、HPLC-MS法等[13-18]。其中HPLC-MS法由于樣品處理簡單、靈敏度高、定性定量結(jié)果可靠、快速簡便、自動化程度高、回收率高、適用于復(fù)雜基質(zhì)樣品的分析等[19-24],近年來已經(jīng)發(fā)展為多酚類檢測的主流方法,并已用于煙草中綠原酸、蕓香苷的定性定量分析[12],但對于煙草中低質(zhì)量分?jǐn)?shù)的多酚類化合物的測定還鮮見相關(guān)報道。本研究中基于HPLC-MS/MS技術(shù),采用內(nèi)標(biāo)法,建立了一種可以同時檢測煙葉中10種多酚類化合物的方法,旨在為同時檢測煙葉中多種多酚類化合物提供方法參考。

    1 材料與方法

    1.1 材料、試劑和儀器

    K326煙草生長于25℃、16 h/8 h光暗交替條件下,收集TMV感染組和對照組的第三、第四葉位葉片,立即置于液氮中冷凍至干,-80℃保存。每組分別取3株煙草的煙葉樣品,每株為一個重復(fù)。

    甲酸(質(zhì)譜純),山奈酚(Kaempferol)、花青素(Cyanidin)、氯 化 飛 燕 草 色 素(Delphinidin chloride)、鼠 李 金(Rhamnazin)、綠 原 酸(Chlorogenic acid)、氯化飛燕草素3-O-β-吡喃葡糖苷(Delphinidin 3-O-β-glucopyranoside chloride)、原花青素B2(Procyanidine B2)、氯化花青素鼠李葡糖苷(Keracyanin chloride)、蕓香苷(Rutin)、莨菪亭(Scopoletin)、傘形花內(nèi)酯(Umbelliferone)(標(biāo)準(zhǔn)品)(美國Sigma Aldrich公司);乙醇(色譜純,德國Merck公司)。

    1260/6490液相色譜-三重四極桿質(zhì)譜聯(lián)用分析儀(美國Agilent公司);BEH Phenyl色譜柱(2.1 mm×150 mm,1.7 μm)(美 國 Waters公 司);BSA224S-CW精密天平(感量0.000 1 g,德國Sartorius公司);PP020XXM1超純水儀(英國Elga公司);SPD111V真空濃縮儀(美國Thermo公司);KQ-700DE數(shù)控超聲波清洗器(昆山市超聲儀器有限公司);5424離心機(德國Eppendorf公司)。

    1.2 方法

    1.2.1 樣品提取

    取50 mg冷凍干燥后的煙葉樣品,用研磨機研磨成粉末后,將其轉(zhuǎn)入1.5 mL(2 mL離心管)預(yù)冷的乙醇-水(4∶1,體積比)提取液中,常溫下超聲1 h;然后14 000 r/min條件下離心12 min,取1 mL上清液,將其真空濃縮成固體。用200 μL 80%乙醇(含75 ng/mL傘形花內(nèi)酯溶液)復(fù)溶,20 000 r/min離心3 min,取上清液,進行HPLC-MS/MS檢測。分析條件:

    色譜柱:BEH Phenyl柱(2.1 mm×150 mm,1.7 μm);流動相:0.1%甲酸水溶液(A)和0.1%甲酸甲醇溶液(B);洗脫梯度:0~2 min B相由5%升到15%,2~10 min B相保持15%,10.01 min~15 min B相升到100%;流速:0.3 mL/min;柱溫:35 ℃;進樣量:1 μL。電噴霧電離源電離;正離子電離模式下毛細(xì)管電壓為4 kV;霧化氣壓力為275.6 kPa;干燥氣流量為12 L/min;干燥氣溫度為290℃;鞘氣流量為11 L/min;鞘氣溫度為200℃;采用實時多反應(yīng)監(jiān)測(DMRM)模式掃描。10種多酚類化合物的質(zhì)譜采集參數(shù)見表1。10種化合物母離子均為M+H+峰(本研究中未考察體系中K+、Na+的影響)。

    表1 10種多酚類化合物標(biāo)準(zhǔn)品在DMRM模式下的采集參數(shù)Tab.1 Collection parameters of ten polyphenol standard samples under DMRM mode

    1.2.2 回收率測定

    稱取12份相同質(zhì)量的煙葉樣品,平均分為4組。分別向4組樣品加入終濃度為0、5、15、30 μg/mL相同體積的10種多酚類化合物混合標(biāo)準(zhǔn)液,按照上述條件進行分析,每種化合物的分析結(jié)果值分別為C0、C5、C15、C30,分別按照公式(1)~公式(3)計算方法的加標(biāo)回收率:

    終濃度5 μg/mL:

    終濃度15 μg/mL:

    終濃度30 μg/mL:

    1.2.3 基因表達(dá)分析

    RNA的提取與反轉(zhuǎn)錄參照文獻[24]進行。

    2 結(jié)果與討論

    2.1 儀器分析條件的優(yōu)化

    2.1.1 流動相的優(yōu)化

    在流動相中添加少量的添加劑(如甲酸)可以增強質(zhì)譜離子源的離子化效率[25]。分別考察了不添加以及分別以0.05%(體積比)甲酸、0.1%甲酸、0.2%甲酸和0.3%甲酸作為添加劑時的效果。以峰面積(響應(yīng)值)作為選擇標(biāo)準(zhǔn),每一濃度測定3次,取平均值。結(jié)果如圖1所示,這10種多酚類化合物在0.1%甲酸時信號強度最好。所以選擇流動相中添加0.1%甲酸。

    2.1.2 質(zhì)譜參數(shù)的選擇

    對10種多酚類物質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)溶液進行質(zhì)譜分析,山奈酚、花青素、氯化飛燕草色素、鼠李金、綠原酸、氯化飛燕草素3-O-β-吡喃葡糖苷、原花青素B2、氯化花青素鼠李葡糖苷、蕓香苷、莨菪亭在正離子模式下主要產(chǎn)生M+H+準(zhǔn)分子離子峰,其母子離子(m/z)分別為 287.1/152.9、288.07/213.9、303/228.9,331.1/315.9,355.11/163.1,465.1/302.8,579.2/127,595.2/286.8,611.2/302.9,193.05/132.9。 這些離子響應(yīng)值高且結(jié)果穩(wěn)定、重現(xiàn)性好,雜質(zhì)干擾也較少,選為定量定性離子對,用于對樣品中10種多酚類化合物的定量。10種標(biāo)準(zhǔn)品及內(nèi)標(biāo)的質(zhì)譜響應(yīng)如圖2所示。橫坐標(biāo)為時間(min),縱坐標(biāo)為響應(yīng)值。這10種植物多酚類化合物幾乎互不干擾,能夠得到較好的分離。

    圖1 流動相中不同濃度甲酸對10種植物多酚類化合物質(zhì)譜響應(yīng)峰面積的影響Fig.1 Effects of formic acid at different concentrations on spectral response peak areas of ten polyphenols in flowing phase

    圖2 10種植物多酚類化合物混合標(biāo)準(zhǔn)品的多反應(yīng)監(jiān)測離子流圖Fig.2 A flow-diagram of multiple reaction monitoring ions of ten polyphenols in mixed standard

    2.2 方法的日內(nèi)日間精密度、標(biāo)準(zhǔn)曲線與檢出限

    2.2.1 日內(nèi)、日間精密度

    標(biāo)準(zhǔn)品混合溶液中山奈酚、花青素、氯化飛燕草色素、鼠李金、綠原酸、氯化飛燕草素3-O-β-吡喃葡糖苷、原花青素B2、氯化花青素鼠李葡糖苷、蕓香苷、莨菪亭、傘形花內(nèi)酯的濃度分別為1.3、1.2、0.8、2.1、2.0、2.0、0.4、2.0、1.5、2.6 μg/mL。連續(xù)進樣5 d,每天測定5次,考察其精密度。結(jié)果如表2所示,所有樣品的日內(nèi)和日間RSD均小于9%,說明儀器狀態(tài)良好并且穩(wěn)定。相對于傳統(tǒng)的酚類物質(zhì)分析方法,本方法具有分析速度快、精密度高、穩(wěn)定性良好等優(yōu)點。

    2.2.2 標(biāo)準(zhǔn)曲線與檢出限

    用混合標(biāo)準(zhǔn)儲備液分別配制用于離子掃描模式的系列濃度的混合標(biāo)準(zhǔn)溶液,每個濃度測定3次,將山奈酚、鼠李金、氯化飛燕草素3-O-β-吡喃葡糖苷、原花青素B2、氯化花青素鼠李葡糖苷、莨菪亭分別配成 25.00、12.50、6.25、3.13、1.57、0.78、0.39、0.19 μg/mL的標(biāo)準(zhǔn)溶液;花青素、氯化飛燕草色素配成 12.00、6.00、4.00、2.00、1.50、1.00、0.50 μg/mL的標(biāo)準(zhǔn)溶液;蕓香苷和綠原酸配成500.00、250.00、175.00、87.50、43.75、21.88、10.94、5.47 μg/mL的系列標(biāo)準(zhǔn)溶液,每份標(biāo)準(zhǔn)溶液中內(nèi)標(biāo)傘形花內(nèi)酯均為0.75 μg/mL。以標(biāo)準(zhǔn)品的峰面積與內(nèi)標(biāo)峰面積之比(Y)為縱坐標(biāo),標(biāo)準(zhǔn)品的濃度(X,μg/mL)為橫坐標(biāo)進行線性擬合,結(jié)果見表3??芍?,線性擬合的R2在0.999 1~0.999 7之間。表明這10種多酚物質(zhì)在所試濃度范圍內(nèi)的響應(yīng)峰面積與其濃度具有較好的線性關(guān)系,可以用于后續(xù)樣品中多酚物質(zhì)的定量分析。同時,以信噪比3∶1計算得到的檢出限在1~200 μg/L之間,發(fā)現(xiàn)不同化合物的檢出限相差較大。

    表2 測定結(jié)果的日內(nèi)RSD(n=5)和日間RSD(n=5)Tab.2 Intra-day RSDs(n=5)and inter-day RSDs(n=5)of the analytical results (%)

    表3 10種植物多酚類物質(zhì)的線性方程、相關(guān)系數(shù)及檢出限Tab.3 Linear equations,correlation coefficients(r)and limits of detection(LODs)of ten polyphenols

    2.3 方法的回收率

    方法的加標(biāo)回收率結(jié)果見表4。10種多酚類化合物的加標(biāo)回收率在79.66%~112.74%之間,表明本方法的可靠性較高。

    表4 10種植物多酚類化合物的加標(biāo)回收率和RSD(n=3)Tab.4 Spiked recoveries of ten polyphenols and RSD(n=3)

    2.4 煙葉樣品的檢測

    2.4.1 提取液的選擇

    由于煙葉樣品基質(zhì)較為復(fù)雜,在提取時,不同提取液的提取效率存在差異。因此需要選擇合適的提取液,以獲得較高的響應(yīng)值信號。取50 mg干煙葉樣品,然后分別用1.5 mL的50%乙醇、80%乙醇、100%乙醇、50%甲醇、80%甲醇、100%甲醇提取液,按照1.2節(jié)的方法提取煙葉樣品中的多酚類化合物,最后均復(fù)溶到200 μL提取液中。圖3顯示了不同提取液對多酚類化合物檢測響應(yīng)的影響,橫坐標(biāo)為提取液濃度,縱坐標(biāo)為響應(yīng)值的對數(shù)值??梢?,除了鼠李金外,其他多酚類化合物在提取液為80%乙醇或者80%甲醇時,響應(yīng)值相對較高,且山奈酚、花青素、蕓香苷、莨菪亭等多酚類化合物在80%乙醇下的提取效率明顯好于80%甲醇。從提取效率、安全性等方面綜合考慮,選擇使用80%乙醇作為煙葉樣品多酚類化合物的提取劑。

    2.4.2TMV接種煙葉的PCR測定

    圖3 不同提取液對10種多酚類化合物響應(yīng)值的影響Fig.3 Effects of different extraction solvents on response values of ten polyphenols

    1%瓊脂糖凝膠電泳檢測PCR反應(yīng)的結(jié)果見圖4??梢姡?株接種TMV病毒的煙葉上均檢測到TMV特異條帶,表明接種成功,煙葉已感病,可以用來分析TMV病毒感染對煙葉多酚類化合物質(zhì)量分?jǐn)?shù)的影響。

    2.4.3 TMV病毒感染對煙葉多酚類化合物質(zhì)量分?jǐn)?shù)的影響

    按照建立的方法對接種過TMV的K326煙葉以及其對照組的K326煙葉葉片的10種多酚類化合物質(zhì)量分?jǐn)?shù)進行測定。每個樣品取3個平行樣作為生物學(xué)重復(fù),采用1.2節(jié)的方法進行3次平行測定,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計算得到每種多酚類化合物的質(zhì)量分?jǐn)?shù),取平均值,并計算樣品間標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD,%);進行T檢驗分析(表5)。

    圖4TMV特異引物對煙葉樣品PCR檢測的電泳結(jié)果Fig.4 Result of electrophoresis by TMV specific primers for PCR detection of tobacco samples

    表5 TMV病毒感染對煙葉中10種植物多酚類物質(zhì)質(zhì)量分?jǐn)?shù)的影響①Tab.5 Effects of TMV infection on contents of ten polyphenols in tobacco leaves (μg·g-1)

    由表5可以看出:感染TMV的植株極顯著(p<0.01)增加了煙葉中山奈酚、花青素、氯化飛燕草色素、氯化飛燕草素3-O-β-吡喃葡糖苷、蕓香苷的質(zhì)量分?jǐn)?shù),顯著(p<0.05)增加了煙葉中綠原酸的質(zhì)量分?jǐn)?shù),顯著(p<0.05)降低了煙葉中鼠李金的質(zhì)量分?jǐn)?shù),TMV病毒感染對原花青素B2、氯化花青素鼠李葡糖苷和莨菪亭的影響不大,差異并不顯著;TMV病毒感染極大地上調(diào)了蕓香苷的質(zhì)量分?jǐn)?shù),在TMV感病煙葉中,蕓香苷質(zhì)量分?jǐn)?shù)比對照增加了近兩倍。有文獻報道[21]表明CMV病毒感染的植株中總酚化合物質(zhì)量分?jǐn)?shù)上升,但未說明具體是哪些酚類化合物上調(diào)或上調(diào)較大。本研究中TMV感染煙草葉片中的多數(shù)多酚類化合物質(zhì)量分?jǐn)?shù)也升高了,其總酚質(zhì)量分?jǐn)?shù)也明顯增加,主要以蕓香苷為主。

    3 結(jié)論

    ①建立了利用高效液相色譜—三重四極桿質(zhì)譜同時分析并定量檢測煙葉中10種多酚類化合物的方法,包括山奈酚、花青素、氯化飛燕草色素、鼠李金、綠原酸、氯化飛燕草素3-O-β-吡喃葡糖苷、原花青素B2、氯化花青素鼠李葡糖苷、蕓香苷、莨菪亭,該方法的精密度良好、可靠性較高。②利用該方法分析了TMV感染對煙葉多酚類化合物質(zhì)量分?jǐn)?shù)的影響,山奈酚、花青素、氯化飛燕草色素、氯化飛燕草素3-O-β-吡喃葡糖苷、蕓香苷在感染TMV的植株中質(zhì)量分?jǐn)?shù)顯著上升,原花青素B2、氯化花青素鼠李葡糖苷和莨菪亭在感染TMV的植株中質(zhì)量分?jǐn)?shù)并無顯著變化,其他2種多酚類化合物質(zhì)量分?jǐn)?shù)出現(xiàn)輕微的上調(diào)和下調(diào)。③本方法可用于同時分析煙葉中的多酚類化合物。

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