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    磷受控對釀酒廢水-微藻培育耦合體系的影響

    2019-07-11 07:09:20陶紅群王亞婷王藝蒸彭煒東冉宗信賀玉龍
    西南交通大學(xué)學(xué)報 2019年3期
    關(guān)鍵詞:衣藻萊茵微藻

    余 江 ,陶紅群 ,王亞婷 ,王藝蒸 ,彭煒東 ,冉宗信 ,賀玉龍

    (1.四川大學(xué)建筑與環(huán)境學(xué)院,四川 成都 610065;2.四川大學(xué)新能源與低碳技術(shù)研究院,四川 成都 610065;3.成都市環(huán)境保護科學(xué)研究院,四川 成都 610072)

    藻類生物含有豐富的營養(yǎng)成分,在食品、飼料、水產(chǎn)餌料、化工醫(yī)藥等領(lǐng)域具有重要的市場價值,藻類的開發(fā)利用已受到世界各國的普遍重視,藻類養(yǎng)殖與資源化利用也已成為一個戰(zhàn)略性新興產(chǎn)業(yè).然而目前在微藻培育方面所面臨的主要問題包括藻種篩選、水資源占有和運行成本偏高等.因此如何在資源可持續(xù)利用的目標(biāo)下,解決廢水處理和能源開發(fā)是當(dāng)前我們環(huán)保行業(yè)所需實現(xiàn)的重要課題.研究表明,以廢水為培養(yǎng)基培養(yǎng)高附加值微藻的關(guān)鍵和前提是優(yōu)良藻種的獲取[1].

    磷作為植物三大必須元素之一,參與植物生長發(fā)育的全過程及各種代謝活動,在細(xì)胞膜結(jié)構(gòu)、物質(zhì)代謝以及信號傳導(dǎo)、光合作用等方面都起著極為重要的作用[2-3].研究表明微藻吸收磷主要有兩種方式,第一種方式是在有氧條件下直接吸收磷酸鹽,將其轉(zhuǎn)化為三磷酸腺苷(adenosine triphosphate,ATP)和磷脂等;第二種方式主要是通過微藻生長形成的堿性環(huán)境,磷酸根與環(huán)境中的鈣、鎂等離子形成沉淀,去除培養(yǎng)液中的總磷.有學(xué)者曾指出,當(dāng)處于缺磷情況時,微藻由于細(xì)胞中磷濃度降低,會引起卡爾文(Calvin)循環(huán)效率下降、光合磷酸化水平下降、ATP合成減少等情況,從而降低細(xì)胞代謝活性、減弱其對外界脅迫的適應(yīng)能力,繼而影響微藻的生長[4-6].在一定濃度范圍內(nèi),微藻生長與磷濃度呈正相關(guān),但當(dāng)環(huán)境中磷濃度過高時,環(huán)境中氮磷比會發(fā)生劇烈變化,細(xì)胞的生長反而會受到抑制[7].近年來,有關(guān)微藻在不同類型廢水中的特性研究較少[8-10].本研究采用控制變量法對釀酒廢水的總磷濃度進行調(diào)控,觀察萊茵衣藻和二形柵藻在單一培養(yǎng)和共培養(yǎng)條件下的生長情況,以及對釀酒廢水中營養(yǎng)鹽的吸收去除效率和藻蛋白質(zhì)情況,篩選出在釀酒廢水下適合微藻生長的總磷濃度,對研究微藻與釀酒廢水的耦合培育體系具有重要意義.

    1 材料與方法

    1.1 材料

    實驗所用萊茵衣藻(Chlamydoomonas reinhardtii)和二形柵藻(scenedesmus dimorphus)均取自四川大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院藻類學(xué)藻種室.

    1.2 釀酒廢水培養(yǎng)基

    本實驗應(yīng)用的釀酒廢水取自四川省成都市雙流區(qū)黃甲鎮(zhèn)黃甲八仙酒廠出廠水,并用提前滅菌的聚乙烯桶取回.實驗前,為除去廢水中的懸浮物等物質(zhì),對釀酒廢水進行多級施加皂土(250.00 ml 液體加入10.00 g 皂土),攪拌10 min、離心處理(4 800 r/min,10 min),調(diào)節(jié)pH 至中性,再將該廢水于121℃高壓滅菌30 min,殺死病原微生物,清除對微藻處理釀酒廢水效果的干擾,從而降低實驗誤差.待高壓滅菌鍋壓力表讀數(shù)降至零后,取出自然冷卻,放入4℃冰箱冷卻保存,備用.取一定體積未處理與已預(yù)處理的釀酒廢水,測定其基本理化指標(biāo),釀酒廢水成分如表1所示.表中,COD 為化學(xué)需氧量(chemical oxygen demand),TN 為總含氮量(total nitrogen),TP 為總含磷量(total phosphorus),V/V 為體積比.

    表1 釀酒廢水成分組成Tab.1 Composition of winery wastewater

    通過預(yù)實驗,采用不同稀釋倍數(shù)(0 倍:100%,V/V;2 倍:50%,V/V;4 倍:25%,V/V;8 倍:12.5%,V/V)的釀酒廢水培養(yǎng)微藻,發(fā)現(xiàn)微藻在未稀釋廢水的培養(yǎng)基中無生長跡象,而在其它培養(yǎng)條件下均能較好生長.最終確定以稀釋2 倍的釀酒廢水作為本實驗廢水培養(yǎng)基.

    1.3 實驗設(shè)計

    1.3.1 實驗方案

    培養(yǎng)液以稀釋2 倍后的釀酒廢水培養(yǎng)基作為對照,在不改變總氮濃度(40.25 mg/L)及其它介質(zhì)條件下,調(diào)節(jié)總磷初始濃度,分別設(shè)置0.50、5.46、16.40、49.20、147.60、442.80 mg/L 濃度梯度組單獨培養(yǎng)萊茵衣藻、二形柵藻,并設(shè)置共培養(yǎng)實驗組,其中總磷初始濃度為16.40 mg/L,另設(shè)置對照組,每組設(shè)3 個平行組.在溫度(25±1)℃,光照強度2 000 lux,光周期12 L:12 D 下靜置培養(yǎng),每天調(diào)換錐形瓶位置并人工搖動至微藻均勻懸浮于培養(yǎng)液中,每隔一天取其培養(yǎng)液,測定微藻生物量(干重法)、培養(yǎng)液TN、TP、COD、pH 等指標(biāo).實驗周期為17 d.

    1.3.2 指標(biāo)測定

    (1)微藻生物量、比生長速率測定

    把藻細(xì)胞沉淀置于80 ℃箱烘干至恒重,取出后于干燥器中自然冷卻,而后稱其干重.由于比生長速率可定義為單位重量細(xì)胞的瞬時增量,生理含義明確,便于實際應(yīng)用,因此本文采用比生長速率作為衡量微藻細(xì)胞生長指標(biāo)之一.

    微藻的比生長速率為[11]

    式中:μm為 比生長速率,d-1;X1、X2分別為起始取樣時(t1)和結(jié)束取樣時(t2)的生物量.

    (2)蛋白質(zhì)產(chǎn)量測定

    本文采用改良后的微藻蛋白質(zhì)提取方法[12],并采用考馬斯亮藍(lán)G-250 染色法測定上清液中的蛋白質(zhì)含量,即微藻的蛋白質(zhì)含量(按鮮重計).

    (3)氮、磷、有機物吸收速率、去除率和去除量測定

    測定250.00 mL 實驗組培養(yǎng)液的TN、TP 和COD,根據(jù)測出的相應(yīng)含量,計算得到氮、磷和COD 的吸收速率[13]為

    式中:S0、St分別為起始時和培養(yǎng)td 后培養(yǎng)液中TN 的濃度,mg/L;V為培養(yǎng)液體積,L;B為萊茵衣藻的干重,mg/L.

    根據(jù)測出的TN、TP 和COD 含量,計算得到去除率為

    式中:C0和Ct分別為最初濃度和培養(yǎng)td 后的濃度,mg/L.

    1.4 數(shù)據(jù)處理與分析

    采用origin 9.0、excel 2016 及SPSS 等統(tǒng)計軟件對數(shù)據(jù)進行統(tǒng)計分析和制圖.

    2 結(jié)果與分析

    2.1 不同TP 濃度調(diào)控對微藻生長的影響

    不同TP 濃度條件下,各組微藻生長趨勢如圖1、2 所示.由圖1可以看出,不同總磷濃度梯度條件對微藻生長的影響比較明顯.單一培養(yǎng)的萊茵衣藻在培養(yǎng)初期生長迅速,而前3 d 內(nèi)單一培養(yǎng)二形柵藻和共培養(yǎng)微藻的生長均較為緩慢,從第3 天開始微藻迅速生長,藻體逐漸進入對數(shù)生長期,各實驗組到第13 天左右干重增速開始出現(xiàn)不同程度減緩.由圖2看出,實驗周期內(nèi),當(dāng)初始TP 濃度為0.50 mg/L時,萊茵衣藻、二形柵藻和共培養(yǎng)微藻的 μm分別為0.230、0.254、0.262 d-1,均為實驗組最低.微藻 μm均隨TP 濃度升高而先逐漸上升后降低,當(dāng)初始TP 濃度高于16.40 mg/L 時,總磷濃度的變化對微藻比生長速率影響不大,且在初始TP 濃度為16.40 mg/L時,二形柵藻、萊茵衣藻和共培養(yǎng)微藻的 μm均達(dá)到最大值,分別為0.363、0.350、0.358 d-1.

    圖1 生長曲線比較Fig.1 Comparison of growth curves

    圖2 不同磷濃度梯度下微藻比生長速率比較Fig.2 Comparison of specific growth rates of microalgae under different phosphorus concentration gradients

    初始TP 濃度較低組(0.50、5.46 mg/L)的微藻在經(jīng)過環(huán)境適應(yīng)階段后,從第3 天開始生長速度較其它組明顯減緩,尤其是初始TP 濃度為0.50 mg/L微藻組,實驗結(jié)束時,萊茵衣藻和二形柵藻的生物量分別僅為108.00 mg/L 和100.00 mg/L,而共培養(yǎng)微藻生物量最終達(dá)到150.00 mg/L 左右,成為本階段實驗中微藻生長最差的實驗組.

    初始TP 濃度為49.20、147.60 mg/L 的萊茵衣藻長勢較好,從第3 天開始生長速率均大幅增大,到第11 天增速有所降低,最終生物量分別達(dá)到722.00、688.00 mg/L,如圖1(a)所示;對于單一培養(yǎng)條件的二形柵藻而言,初始TP 濃度為49.20 mg/L實驗組在前9 d 內(nèi)生長低于初始TP 濃度147.60 mg/L實驗組,隨后前者生長高于后者,二者均于第13 天生物量達(dá)到最大,分別為550.00、475.00 mg/L,如圖1(b)所示;共培養(yǎng)組下在初始TP濃度49.20 mg/L 時,最終生物量達(dá)到637.50 mg/L,如圖1(c)所示.

    初始TP 濃度為16.40 mg/L 組的萊茵衣藻長勢最佳,培養(yǎng)第17 天時生物量達(dá)到839.50 mg/L,是本階段實驗中萊茵衣藻生長最佳的實驗組;對于單一培養(yǎng)二形柵藻來說,當(dāng)培養(yǎng)到第13 天時生物量達(dá)到該條件培養(yǎng)周期的最大值650.00 mg/L;共培養(yǎng)下的微藻生長曲線略高于單一培養(yǎng)下的二形柵藻生長曲線,實驗結(jié)束時微藻生物量達(dá)到768.75 mg/L.

    與低磷濃度組微藻相比,初始TP 濃度為442.80 mg/L 組的各微藻生長較好,實驗結(jié)束時,單一培養(yǎng)萊茵衣藻、二形柵藻和共培養(yǎng)微藻生物量分別能達(dá)到456.50、275.00、350.00 mg/L.該實驗組微藻的生長曲線高于低磷濃度組,但低于其它組,說明氮磷比過高或過低,微藻的生長會受到明顯的影響,且對低磷濃度的培養(yǎng)條件更敏感.

    從生長曲線可以看出,萊茵衣藻的干重明顯高于二形柵藻;共培養(yǎng)下的生長曲線處于兩種單一培養(yǎng)微藻下的生物曲線之間,說明該培養(yǎng)條件下兩種微藻的生長可能存在協(xié)同關(guān)系.低磷濃度實驗組的微藻在培養(yǎng)初期并未像低氮濃度實驗?zāi)菢舆^早進入平緩期,這可能是由于在初期培養(yǎng)基內(nèi)的總氮較總磷資源豐富,微藻在生長時首先利用總氮,導(dǎo)致總磷對其生長的限值作用不大明顯,隨著微藻生長大量繁殖,對營養(yǎng)物質(zhì)的需求較高,而培養(yǎng)基內(nèi)營養(yǎng)不充分,導(dǎo)致部分微藻生長進入衰亡期.

    2.2 不同TP 濃度調(diào)控對微藻蛋白質(zhì)含量的影響

    不同TP 濃度條件下,萊茵衣藻蛋白質(zhì)含量的變化情況如圖3所示.由圖3可看出,各實驗組萊茵衣藻蛋白質(zhì)含量隨培養(yǎng)時間推移而上升,而二形柵藻實驗組和共培養(yǎng)實驗組的微藻5 d 后各組蛋白質(zhì)含量的增速加快,到第9 天蛋白質(zhì)含量增長變緩.

    圖3 不同磷濃度梯度下的蛋白質(zhì)含量比較Fig.3 Comparison of protein content of microalgae under different phosphorus concentration gradients

    當(dāng)TP 濃度在0.50~5.46 mg/L 時,隨著TP 濃度的增加,藻體蛋白質(zhì)含量增加;而當(dāng)TP 濃度超過5.46 mg/L,藻體蛋白質(zhì)含量隨TP 濃度的增加而逐漸減小.TP 濃度為16.40 mg/L 時,實驗組藻蛋白質(zhì)含量最高,第17 天時單一培養(yǎng)下萊茵衣藻蛋白含量為53.37 mg/L,占其干重的6.36%;二形柵藻蛋白含量為131.04 mg/L,占其干重的20.56%.而共培養(yǎng)下微藻的藻蛋白處于單培養(yǎng)下兩種藻蛋白含量之間且較低水平,這可能是由于共培養(yǎng)下二形柵藻生長受到抑制,而萊茵衣藻與二形柵藻相比蛋白含量明顯較低,因此,共培養(yǎng)下所獲得的藻蛋白含量比單培養(yǎng)下二形柵藻所獲得的藻蛋白較低.

    磷是微藻細(xì)胞內(nèi)核酸、蛋白質(zhì)和磷脂的主要成分,參與藻體生長過程中的各種代謝,對微藻生長起著重要的作用[14].實驗結(jié)果發(fā)現(xiàn),TP 濃度為0.50 mg/L的磷限制組蛋白質(zhì)含量處于所有實驗組的最低水平.其原因在于,當(dāng)藻體處于低磷培養(yǎng)液環(huán)境中,藻體會因不能獲得足夠的磷營養(yǎng)而導(dǎo)致生物量少,蛋白質(zhì)合成則會受到抑制.

    2.3 不同TP 濃度調(diào)控微藻對氮磷及有機物去除效果的影響

    實驗結(jié)束時,各組微藻對TP、TN 和COD 的去除率和去除量如圖4所示.

    2.3.1 不同TP 濃度微藻對TP 吸收速率的影響

    實驗周期內(nèi),各組微藻對TP 吸收速率如圖5,TP 去除率及去除量如圖4(a).

    萊茵衣藻和共培養(yǎng)微藻對TP 的吸收速率隨TP 濃度的升高呈逐漸上升趨勢.當(dāng)初始TP 濃度為5.46 mg/L 時,二形柵藻對TP 的吸收速率高于萊茵衣藻和共培養(yǎng)下的微藻,最終分別為0.039 3、0.016 8 、0.021 4 d-1.當(dāng)初始TP 濃度超過147.60 mg/L 時,微藻對TP 的吸收速率出現(xiàn)大幅度增加,并達(dá)到最大值;初始TP 濃度為442.80 mg/L 時,三種條件下的微藻TP 吸收速率分別為0.276 9、0.096 1、0.208 8 d-1.初始TP 濃度為0.50 mg/L,總體達(dá)到了地表水環(huán)境質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)(GB3838—2002)的Ⅲ類水總磷要求.初始TP 濃度低于5.460 mg/L 的實驗組中,萊茵衣藻和共培養(yǎng)的微藻對TP 的去除效率幾乎保持一致(90%以上),均高于同等培養(yǎng)條件下二形柵藻對TP 的去除效率,但無明顯差異(p> 0.05);隨著初始TP 濃度升高,萊茵衣藻對TP 的去除優(yōu)勢在三種微藻種顯得更加明顯(p< 0.05).但初始TP 濃度高于147.60 mg/L實驗組的萊茵衣藻的TP 去除量較大,達(dá)到所有實驗組中的最大值,初始TP 濃度為147.60、442.80 mg/L,對應(yīng)的TP 去除量分別為36.14、97.23 mg/L,去除率分別為24.48%和21.96%.

    圖4 第17 天不同磷濃度梯度下微藻對TP、TN 和COD 的去除率和去除量Fig.4 Removal rate and removal amount of TP、TN and COD from microalgae under different phosphorus concentrations on 17th day

    由式(3)可知,當(dāng)微藻對TP 的吸收量一定時,微藻干重越低,單位質(zhì)量的微藻對TP 吸收速率就會越高.相比其它組,由于TP 濃度為442.80 mg/L的6 個實驗組微藻生長受到不同程度的抑制,出現(xiàn)TP 去除量高而藻體生物量低的情況,致使該實驗組微藻的TP 吸收速率會比其它組明顯增大.

    圖5 不同磷濃度梯度下微藻對TP 吸收速率比較Fig.5 Comparison of TP uptake rate of microalgae under different phosphorus concentration gradients

    綜合比較各實驗組中微藻對TP 吸收速率、去除率和去除量,可知初始TP 濃度為16.40 mg/L 左右的培養(yǎng)基環(huán)境中微藻對TP 去除效果最優(yōu),萊茵衣藻、二形柵藻和共培養(yǎng)微藻對TP 的去除率分別達(dá)到91.75%、73.93%和83.66%.

    2.3.2 不同TP 濃度微藻對TN 去除速率的影響

    實驗周期內(nèi),各實驗組培養(yǎng)液中TN 濃度變化情況如圖6,實驗結(jié)束時TN 去除量和去除率如圖4(b).對萊茵衣藻而言,當(dāng)初始TP 濃度高于5.46 mg/L 時,實驗周期內(nèi)對TN 去除效果較好,均達(dá)到80%以上,尤其當(dāng)初始TP 濃度為16.40 mg/L時,此時培養(yǎng)基初始時的氮磷比為2.45,最終對TN去除量達(dá)37.63 mg/L,去除率達(dá)93.48%;當(dāng)初始TP 濃度為0.50 mg/L 時,藻體對TN 去除率最終只有47.62%.此外,萊茵衣藻對TN 去除效率略低于二形柵藻,當(dāng)初始TP 濃度為16.40 mg/L 時,二形柵藻和共培養(yǎng)微藻對TN 去除率分別高達(dá)95.76%和95.24%,達(dá)到了地表水環(huán)境質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)(GB3838—2002)的Ⅳ類水總氮要求.整個實驗階段,共培養(yǎng)下微藻對TN 的去除效果與二形柵藻保持較一致的水平,這也說明在共培養(yǎng)條件下二形柵藻對廢水的資源化利用起主導(dǎo)作用,并可能對萊茵衣藻吸收TN起到一定程度的抑制.

    由圖6可知,初始TP 濃度為0.5 mg/L 時,萊茵衣藻實驗組在培養(yǎng)初期出現(xiàn)TN 濃度升高的現(xiàn)象,這可能是由于微藻細(xì)胞在最初為適應(yīng)高氮磷比的培養(yǎng)環(huán)境向外釋放出硝酸鹽所致.此外,TN 濃度在培養(yǎng)中期均呈現(xiàn)小幅度上升再下降的趨勢,這可能是由于在微藻進入生長平緩期后,部分微藻死亡會重新釋放一定量的氮,作為營養(yǎng)源再次被微藻重復(fù)利用于生長.

    圖6 不同磷濃度梯度下TN 濃度變化比較Fig.6 Comparison of TN concentration in culture medium under different phosphorus concentration gradients

    2.3.3 不同TP 濃度下微藻對有機物去除速率的影響

    初始TP 濃度為0.50、5.46 mg/L 的培養(yǎng)基中,初始COD 濃度分別為57.00、622.50 mg/L,其余實驗組培養(yǎng)基中,初始COD 濃度為1 867.50 mg/L.實驗周期內(nèi),各實驗組培養(yǎng)液中有機物濃度變化情況如圖7,實驗結(jié)束時COD 去除量和去除率如圖4(c).實驗結(jié)果顯示,隨著藻體的生長,培養(yǎng)基中COD 明顯降低,萊茵衣藻實驗組在培養(yǎng)結(jié)束時達(dá)到最低,6 組實驗培養(yǎng)基中COD 濃度最終分別為14.50、259.50、599.50、562.00、554.50、599.50 mg/L,COD 去除率最大分別達(dá)到74.56%、58.31%、67.90%、69.90%、70.31%、67.90%.二形柵藻對COD 去除效果整體上略高于萊茵衣藻,但差異并不顯著(p> 0.05).而二形柵藻實驗組COD 濃度在實驗初期隨著微藻的生長呈明顯降低趨勢,在實驗結(jié)束時達(dá)到最小值,分別為27.00、99.50、309.50、274.50、312.00、429.50 mg/L,COD 最大去除率分別達(dá)52.63%、84.02%、83.43%、85.30%、83.29%、77.00%;共培養(yǎng)微藻對培養(yǎng)基內(nèi)COD 去除規(guī)律與二形柵藻類似:實驗結(jié)束時COD 濃度達(dá)到最小值,分別為12.00、104.50、297.00、309.50、299.50、357.00 mg/L,COD 最大去除率分別達(dá)78.95%、83.21%、84.10%、83.43%、83.96%、80.88%.

    圖7 不同磷濃度梯度下COD 濃度變化比較Fig.7 Comparison of COD concentration in culture medium under different phosphorus concentrations

    二形柵藻在初始總磷濃度為0.50 mg/L 時,COD去除效果最差,這可能是由于過高的氮磷比不利于二形柵藻生長,導(dǎo)致藻體自身分泌一些有機物,此時共培養(yǎng)微藻與萊茵衣藻對COD 的去除效果呈現(xiàn)一致性,這也可能說明了高氮磷比培養(yǎng)條件下,萊茵衣藻比二形柵藻更具有耐受性,更具有廢水凈化的能力.

    3 結(jié) 論

    (1)萊茵衣藻對磷的需求總體上大于二形柵藻對磷的需求,當(dāng)初始總磷濃度為16.40 mg/L,初始氮磷比為2.45 時,萊茵衣藻最終生物量達(dá)到839.50 mg/L,藻蛋白含量達(dá)到53.37 mg/L,對TN、TP、COD 的最終去除率分別達(dá)到93.48%、91.75%、67.90%.

    (2)當(dāng)初始總磷濃度為16.40 mg/L 時,初始氮磷比為2.45,二形柵藻生物量最高達(dá)到650.00 mg/L,藻蛋白含量達(dá)到131.04 mg/L,對TN、TP、COD 的最終去除率分別達(dá)到95.76%、73.93%、83.43%.

    (3)兩種藻在共培養(yǎng)條件下,生長曲線處于單一培養(yǎng)微藻下的生物曲線之間,共培養(yǎng)微藻的藻蛋白含量處于兩種單培養(yǎng)下藻蛋白含量之間,且處較低水平,對TP、TN 的去除率分別為83.66%、95.24%,共培養(yǎng)條件下微藻對釀酒廢水COD 的去除規(guī)律與二形柵藻單一培養(yǎng)條件類似.

    (4)采用釀酒廢水-微藻培育耦合體系,無論是單一還是共培養(yǎng)體系,釀酒廢水總體均能達(dá)到地表水環(huán)境質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)(GB3838—2002)的Ⅳ類水總磷要求.

    致謝:成都市科技局科技項目(2015-HM01-00013-SF).

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