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    大腸桿菌FtsZ蛋白原核表達(dá)及多克隆抗體的制備與鑒定

    2019-07-10 08:34:08陳云雨牛夏憶李淼李霓劉曉平
    生物工程學(xué)報(bào) 2019年6期
    關(guān)鍵詞:原核克隆特異性

    陳云雨,牛夏憶,李淼,李霓,劉曉平

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    大腸桿菌FtsZ蛋白原核表達(dá)及多克隆抗體的制備與鑒定

    陳云雨1,牛夏憶1,李淼1,李霓2,劉曉平1

    1 皖南醫(yī)學(xué)院 藥物篩選與評(píng)價(jià)研究所,安徽 蕪湖 241002 2 中國(guó)醫(yī)學(xué)科學(xué)院-北京協(xié)和醫(yī)學(xué)院 藥物研究所 天然藥物活性物質(zhì)與功能國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,北京 100050

    為制備特異性抗大腸桿菌絲狀熱敏蛋白Z (filamentous thermosensitive protein Z,Ec-FtsZ)多克隆抗體,將基因進(jìn)行化學(xué)合成后連接pET-22b(+) 表達(dá)載體,構(gòu)建重組質(zhì)粒Ec-FtsZ-pET-22b(+)。將重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)化到大腸桿菌.BL21(DE3) 中進(jìn)行Ec-FtsZ原核表達(dá)與表達(dá)條件優(yōu)化,以HisTrap層析柱進(jìn)行Ec-FtsZ的分離純化,再以孔雀綠法進(jìn)行Ec-FtsZ GTPase (Guanosine triphosphatase) 活性測(cè)定。使用純化的Ec-FtsZ為抗原免疫大鼠制備多克隆抗體,經(jīng)酶聯(lián)免疫吸附測(cè)定實(shí)驗(yàn) (Enzyme-linked immunosorbent assay,ELISA)、Western blotting實(shí)驗(yàn)和免疫熒光實(shí)驗(yàn)鑒定,抗Ec-FtsZ多克隆抗體效價(jià)可達(dá)1∶256 000且具有良好的抗原特異性。抗Ec-FtsZ多克隆抗體的成功制備為Ec-FtsZ生物學(xué)功能研究和生化檢測(cè)奠定了實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)。

    大腸桿菌FtsZ蛋白,原核表達(dá),孔雀綠法,免疫熒光,多克隆抗體

    大腸桿菌細(xì)胞骨架蛋白FtsZ (filamentous thermosensitive protein Z,Ec-FtsZ) 是細(xì)菌細(xì)胞分裂所必需的調(diào)控蛋白,其生物學(xué)功能與微管蛋白極其相似,被認(rèn)為是微管蛋白的同源蛋白[1-2]。Ec-FtsZ具有GTPase (Guanosine triphosphatase) 活性,在GTP存在條件下,Ec-FtsZ可在細(xì)菌內(nèi)膜中心聚集形成多聚體,進(jìn)而形成可收縮的Z環(huán) (Z ring)。Z環(huán)形成后,其他分裂調(diào)控蛋白陸續(xù)結(jié)合到Z環(huán)骨架上形成分裂體。分裂體通過(guò)提供細(xì)菌細(xì)胞縊縮力和酶活力使Z環(huán)縮小以形成隔膜,完成細(xì)菌細(xì)胞的二分裂過(guò)程[3-7]。由于FtsZ在大多數(shù)致病菌細(xì)胞分裂過(guò)程中發(fā)揮高度保守的調(diào)控作用,細(xì)菌的FtsZ與真核生物微管蛋白結(jié)構(gòu)差異較大且不易突變,其已成為抗感染藥物開發(fā)的理想靶標(biāo)之一[4,7-8]。因此,深入研究Ec-FtsZ在大腸桿菌Z環(huán)形成和定位中的調(diào)控功能對(duì)新型抗耐藥菌藥物研發(fā)具有重要意義。

    Ec-FtsZ雖是組成細(xì)菌分裂體的核心蛋白,但目前對(duì)Ec-FtsZ如何調(diào)控其他分裂調(diào)控蛋白募集到Z環(huán)形成細(xì)菌分裂體的調(diào)控機(jī)制研究還不甚深入,尤其是Z環(huán)在細(xì)菌內(nèi)膜精準(zhǔn)定位的分子機(jī)制尚未明確。為了進(jìn)一步探討Ec-FtsZ上述生物學(xué)功能,本研究利用DNA重組技術(shù)原核表達(dá)和分離純化了高活性的Ec-FtsZ,并制備了高效價(jià)和特異性的大鼠抗Ec-FtsZ多克隆抗體 (Polyclonal antibody,PcAb),為Ec-FtsZ生物學(xué)功能研究和生化檢測(cè)奠定實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    pET-22b(+) 質(zhì)粒由北京師范大學(xué)化學(xué)學(xué)院化學(xué)生物學(xué)系鄭積敏教授惠贈(zèng);大腸桿菌感受態(tài)細(xì)胞.Rosetta(DE3)、.BL21(DE3)、.BL21(DE3) pLysS、Ⅰ、Ⅰ、Trans 2K?DNA Marker和ProteinRuler?Ⅱ購(gòu)自北京全式金生物技術(shù)有限公司;酵母粉、瓊脂粉、胰蛋白胨購(gòu)自O(shè)xoid公司;二辛可寧酸 (Bicinchoninic acid,BCA) 蛋白濃度測(cè)定試劑盒購(gòu)自Thermo公司;異丙基硫代半乳糖苷 (Isopropyl β-D-thiogalactoside,IPTG)、GTP (Guanosine triphosphate)、氨芐西林、Freund完全佐劑和Freund不完全佐劑購(gòu)自Sigma公司;小鼠抗組氨酸 (Histidine,His) 標(biāo)簽單克隆抗體、辣根過(guò)氧化物酶 (Horseradish peroxidase,HRP) 標(biāo)記的山羊抗小鼠IgG、HRP-山羊抗大鼠IgG、異硫氰酸熒光素 (Fluorescein isothiocyanate,F(xiàn)ITC) 標(biāo)記的山羊抗大鼠IgG購(gòu)自Boster公司;TanonTM化學(xué)發(fā)光液購(gòu)自上海天能科技有限公司;牛血清白蛋白 (Bovine serum albumin,BSA)、四甲基聯(lián)苯胺 (3,3?,5,5?-Tetramethylbenzidine,TMB) 溶液購(gòu)自北京索萊寶科技有限公司;半底96孔透明板、96孔酶標(biāo)板購(gòu)自Corning公司;HisTrap層析柱購(gòu)自GE公司;BIOMOL?GREEN購(gòu)自Enzo Biochem公司;Wistar大鼠購(gòu)自維通利華公司;其他生化試劑為國(guó)產(chǎn)分析純?cè)噭?/p>

    1.2 方法

    1.2.1 Ec-FtsZ原核表達(dá)質(zhì)粒的構(gòu)建與鑒定

    在NCBI數(shù)據(jù)庫(kù)中檢索大腸桿菌全長(zhǎng)基因序列 (GenBank登錄號(hào):CP023258.1),在該基因序列兩端分別設(shè)計(jì)Ⅰ和Ⅰ酶切位點(diǎn)后進(jìn)行全基因合成。將合成的基因片段插入pET-22b(+)表達(dá)載體,構(gòu)建重組質(zhì)粒Ec-FtsZ-pET-22b(+),以雙酶切法進(jìn)行鑒定?;蚱魏铣珊蜏y(cè)序由General Biosystems公司完成。

    1.2.2 Ec-FtsZ原核表達(dá)

    將重組質(zhì)粒Ec-FtsZ-pET-22b(+)轉(zhuǎn)化到.BL21(DE3)感受態(tài)細(xì)胞,涂布于LB固體培養(yǎng)基 (含100 μg/mL氨芐西林),37 ℃培養(yǎng)過(guò)夜。隨機(jī)挑取6個(gè)單菌落接種至含有100 μg/mL氨芐西林的LB液體培養(yǎng)基中,以1 mmol/L IPTG為誘導(dǎo)劑,30 ℃誘導(dǎo)10 h,誘導(dǎo)Ec-FtsZ表達(dá)。以10% SDS-PAGE檢測(cè)Ec-FtsZ原核表達(dá)情況。

    1.2.3 Ec-FtsZ最適誘導(dǎo)時(shí)間的確定

    將上述工程菌接種至含有100 μg/mL氨芐西林的LB液體培養(yǎng)基,37 ℃培養(yǎng)至菌體600=0.8時(shí),加入1.0 mmol/L IPTG,誘導(dǎo)溫度分別設(shè)置為30 ℃、25 ℃和20 ℃誘導(dǎo)Ec-FtsZ表達(dá),在2、4、6、8、10和12 h時(shí)間點(diǎn)等量收集菌體,以10% SDS-PAGE檢測(cè)Ec-FtsZ表達(dá)情況,利用Clinx Image Analysis軟件分析Ec-FtsZ表達(dá)量。

    1.2.4 Ec-FtsZ最適誘導(dǎo)溫度的確定

    等量收集20 ℃、25 ℃和30 ℃條件下誘導(dǎo)培養(yǎng)6 h的菌體,收集的菌體用TBS (50 mmmol/L Tris、150 mmol/L NaCl,pH8.0) 溶液重懸,以超聲波破碎菌體,離心收集裂解后的上清液和沉淀,以10% SDS-PAGE檢測(cè)Ec-FtsZ的可溶性表達(dá)情況。

    1.2.5 Ec-FtsZ最適IPTG誘導(dǎo)濃度的確定

    工程菌于37 ℃培養(yǎng)至600=0.8時(shí),加入不同濃度的IPTG分別于25 ℃誘導(dǎo)6 h,IPTG濃度設(shè)置為0.2、0.4、0.6、0.8和1.0 mmol/L。等量收集菌體,以10% SDS-PAGE檢測(cè)不同IPTG誘導(dǎo)濃度對(duì)Ec-FtsZ表達(dá)的影響。

    1.2.6 Ec-FtsZ分離純化與鑒定

    誘導(dǎo)后的工程菌經(jīng)超聲波破碎后取上清液,以25%飽和硫酸銨溶液沉淀制備粗提液。按照文獻(xiàn)所述方法進(jìn)行Ec-FtsZ的分離純化[4]。純化的Ec-FtsZ以TBS溶液透析,再以BCA法測(cè)定蛋白濃度。

    純化的Ec-FtsZ經(jīng)10% SDS-PAGE后轉(zhuǎn)膜,一抗為小鼠抗His標(biāo)簽單抗 (1∶2 000),二抗為HRP-羊抗小鼠IgG (1∶4 000),以TanonTM化學(xué)發(fā)光液成像。

    1.2.7 Ec-FtsZ GTPase活性測(cè)定

    參考相關(guān)文獻(xiàn)[4,9-10],首先將0.1 mol/L GTP溶液以反應(yīng)液 (50 mmol/L Tris、5 mmol/L MgCl2,pH 8.0) 進(jìn)行2倍倍比稀釋,共制備7個(gè)濃度梯度樣品 (2–0.031 mmol/L)。上述GTP稀釋液以25 μL/孔依次加入到含10 μmol/L Ec-FtsZ (25 μL/孔) 的半底96孔透明板中,每個(gè)濃度設(shè)置3組復(fù)孔,室溫孵育20 min。依次加入孔雀綠試劑 (50 μL/孔),室溫反應(yīng)5 min,以多功能酶標(biāo)儀檢測(cè)620值 (CytationTM5,BioTek)。將10 μmol/L BSA反應(yīng)組設(shè)為陰性對(duì)照組。根據(jù)磷酸標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算酶促反應(yīng)中自由磷酸 (Pi) 的釋放量和Ec-FtsZ GTPase活性 (nmol/(min·mg Ec-FtsZ))。

    1.2.8 抗Ec-FtsZ多克隆抗體的制備

    改進(jìn)文獻(xiàn)所述方法免疫大鼠制備抗Ec-FtsZ多克隆抗體[11-12]。首次免疫時(shí),將Ec-FtsZ (200 μg/(次·只)) 與等體積Freund完全佐劑混合,充分乳化后進(jìn)行Wistar大鼠皮下多點(diǎn)注射。首次免疫3周后進(jìn)行第2次免疫,用Freund不完全佐劑充分乳化后的Ec-FtsZ進(jìn)行皮下注射。第2次免疫后的第7 天,從大鼠尾尖部少量采血后分離血清,以ELISA法進(jìn)行效價(jià)測(cè)定。當(dāng)抗血清效價(jià)達(dá)到1∶70 000,則從全血中分離抗血清備用。

    1.2.9 抗Ec-FtsZ多克隆抗體效價(jià)測(cè)定

    按照文獻(xiàn)所述方法進(jìn)行抗Ec-FtsZ多克隆抗體效價(jià)測(cè)定[12]。首先將Ec-FtsZ (10 μg/mL) 以100 μL/孔包被至96孔酶標(biāo)板,酶標(biāo)板經(jīng)10% BSA封閉后,依次加入以2倍倍比稀釋法稀釋的共11個(gè)濃度梯度的大鼠抗血清 (1∶1 000–1∶1 024 000;100 μL/孔),每組3個(gè)復(fù)孔,以相同稀釋倍數(shù)的大鼠免疫前血清作為陰性對(duì)照組,室溫孵育1 h。酶標(biāo)板經(jīng)HRP-羊抗大鼠IgG (1∶4 000) 孵育和TMB顯色后,以多功能酶標(biāo)儀測(cè)定450值。S/N=稀釋抗血清/陰性對(duì)照組,判定S/N≥3.0的樣品為陽(yáng)性樣品。

    1.2.10 抗Ec-FtsZ多克隆抗體抗原特異性鑒定

    純化的Ec-FtsZ (1、2、4 μg) 經(jīng)10% SDS-PAGE后轉(zhuǎn)膜,一抗為大鼠抗Ec-FtsZ多克隆抗體 (1∶10 000),二抗為HRP-羊抗大鼠IgG (1∶4 000),以TanonTM化學(xué)發(fā)光液成像。

    以煮沸法裂解大腸桿菌.BL21(DE3)、.BL21(DE3) pLysS和.Rosetta (DE3)細(xì)胞,同法檢測(cè)細(xì)胞裂解液中的內(nèi)源Ec-FtsZ。

    1.2.11 免疫熒光實(shí)驗(yàn)分析Ec-FtsZ亞細(xì)胞定位

    將大腸桿菌.BL21(DE3)細(xì)胞以2.5%多聚甲醛和0.04%戊二醛固定后,以含0.3% Tween-20的PBS (Phosphate buffered saline) 溶液 (PBST) 洗滌3次。經(jīng)10% BSA封閉2 h后,依次加入大鼠抗Ec-FtsZ多克隆抗體 (1∶10 000) 和FITC-山羊抗大鼠IgG (1∶100),室溫孵育45 min,PBST洗滌3次,以熒光顯微鏡 (Life EVOS) 觀察Ec-FtsZ的亞細(xì)胞定位。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 Ec-FtsZ原核表達(dá)質(zhì)粒的鑒定

    用Ⅰ和Ⅰ酶切構(gòu)建的重組質(zhì)粒Ec-FtsZ-pET-22b(+),得到了約1 152 bp的基因片段,其大小與基因片段理論值一致 (圖1),表明成功構(gòu)建了重組質(zhì)粒Ec-FtsZ-pET-22b(+)。

    圖1 重組質(zhì)粒Ec-FtsZ-pET-22b(+)的雙酶切鑒定

    2.2 Ec-FtsZ的原核表達(dá)

    6株工程菌經(jīng)IPTG誘導(dǎo)培養(yǎng)后,收集的菌體經(jīng)10% SDS-PAGE分析表明,在Ec-FtsZ理論分子量位置 (42 kDa) 可見明顯的蛋白表達(dá)條帶 (圖2),這說(shuō)明成功進(jìn)行了Ec-FtsZ原核表達(dá)。

    2.3 Ec-FtsZ最適誘導(dǎo)時(shí)間的確定

    工程菌以不同的誘導(dǎo)時(shí)間培養(yǎng)后,等量收集菌體,以10% SDS-PAGE鑒定Ec-FtsZ表達(dá)情況。在誘導(dǎo)溫度為30 ℃ (圖3A)、25 ℃ (圖3B) 和20 ℃ (圖3C) 時(shí),Ec-FtsZ均明顯表達(dá)。以上述誘導(dǎo)溫度分別誘導(dǎo)工程菌6 h,Ec-FtsZ表達(dá)量均達(dá)30%,趨于蛋白表達(dá)量最高峰。因此確定Ec-FtsZ在30 ℃、25 ℃和20 ℃誘導(dǎo)時(shí),其最適誘導(dǎo)時(shí)間為6 h。

    2.4 Ec-FtsZ最適誘導(dǎo)溫度的確定

    等量收集30 ℃、25 ℃、20 ℃誘導(dǎo)6 h的菌體,菌體裂解上清液和沉淀經(jīng)10% SDS-PAGE分析表明,與30 ℃誘導(dǎo)6 h時(shí)相比,25 ℃和20 ℃誘導(dǎo)6 h時(shí),Ec-FtsZ包涵體量明顯減少,目的蛋白大部分在上清中呈可溶表達(dá) (圖4)。因此確定Ec-FtsZ最適誘導(dǎo)溫度為25 ℃。

    圖2 Ec-FtsZ的原核表達(dá)

    圖3 Ec-FtsZ最適誘導(dǎo)時(shí)間的確定

    2.5 Ec-FtsZ最適IPTG誘導(dǎo)濃度的確定

    SDS-PAGE結(jié)果表明,IPTG對(duì)Ec-FtsZ表達(dá)的誘導(dǎo)效率較高,0.2 mmol/L IPTG即可誘導(dǎo)Ec-FtsZ大量表達(dá) (圖5)。

    綜上所述,以0.2 mmol/L IPTG于25 ℃誘導(dǎo)6 h作為Ec-FtsZ最適表達(dá)條件。

    圖4 Ec-FtsZ最適誘導(dǎo)溫度的確定

    圖5 Ec-FtsZ最適IPTG誘導(dǎo)濃度的確定

    2.6 Ec-FtsZ的分離純化與鑒定

    工程菌菌體裂解上清液首先用25%飽和硫酸銨溶液沉淀后制備粗提液,粗提液經(jīng)過(guò)濾后再以HisTrap層析柱進(jìn)行分離純化。SDS-PAGE結(jié)果顯示,在相對(duì)分子量42 kDa左右呈單一蛋白條帶,說(shuō)明獲得了具有較高純度的Ec-FtsZ (圖6A)。Western blotting實(shí)驗(yàn)證實(shí)了Ec-FtsZ的正確表達(dá) (圖6B)。BCA法測(cè)定純化的Ec-FtsZ濃度為1.3 mg/mL。

    2.7 Ec-FtsZ GTPase活性測(cè)定

    Ec-FtsZ具有GTPase活性,能夠水解GTP為GDP和自由磷酸 (Pi)??兹妇G試劑能與Pi結(jié)合形成綠色復(fù)合物,且復(fù)合物量與620值呈正相關(guān),故此可以用反應(yīng)體系Pi釋放量反映Ec-FtsZ GTPase活性[4,9]。孔雀綠法酶活性測(cè)定實(shí)驗(yàn)表明,與BSA對(duì)照組相比,隨著GTP濃度的不斷升高,Ec-FtsZ GTPase活性越來(lái)越強(qiáng),最大酶活力可達(dá)6 nmol/ (min·mg Ec-FtsZ) (圖7)。

    圖6 Ec-FtsZ的分離純化與鑒定

    2.8 抗Ec-FtsZ多克隆抗體的制備與效價(jià)測(cè)定

    以純化的Ec-FtsZ為抗原免疫大鼠,在第2次加強(qiáng)免疫后第7天抗體滴度基本達(dá)到峰值。當(dāng)抗血清稀釋至256 000倍時(shí),S/N值為3.15,抗Ec-FtsZ多克隆抗體效價(jià)可達(dá)1∶256 000 (圖8),這表明純化的Ec-FtsZ具有良好的免疫原性,制備的抗Ec-FtsZ多克隆抗體具有較高的滴度。

    2.9 抗Ec-FtsZ多克隆抗體的抗原特異性鑒定

    將抗Ec-FtsZ多克隆抗體 (1∶10 000) 作為一抗,分別與純化的Ec-FtsZ和大腸桿菌內(nèi)源Ec-FtsZ反應(yīng),以Western blotting實(shí)驗(yàn)檢測(cè)其抗原特異性。結(jié)果顯示,純化的Ec-FtsZ在相對(duì)分子量42 kDa左右顯現(xiàn)特異條帶,條帶亮度與Ec-FtsZ劑量呈正相關(guān) (圖9A)。另外,在大腸桿菌BL21(DE3)、BL21(DE3) pLysS 和Rosetta (DE3)細(xì)胞裂解液中也同樣檢測(cè)到了相同分子量的特異條帶 (圖9B)。綜上所述,抗Ec-FtsZ多克隆抗體不僅可以識(shí)別純化的Ec-FtsZ,還可以特異性結(jié)合大腸桿菌內(nèi)源Ec-FtsZ,其具有良好的抗原特異性。

    圖8 ELISA檢測(cè)抗Ec-FtsZ多克隆抗體效價(jià)

    2.10 大腸桿菌Ec-FtsZ的亞細(xì)胞定位

    通過(guò)熒光顯微鏡觀察,使用大鼠抗Ec-FtsZ多克隆抗體為一抗,以免疫熒光實(shí)驗(yàn)分析大腸桿菌Ec-FtsZ亞細(xì)胞定位。結(jié)果表明,綠色熒光 (Ec-FtsZ) 主要分布于大腸桿菌細(xì)胞內(nèi)膜的中心,這說(shuō)明Ec-FtsZ主要定位于細(xì)菌細(xì)胞內(nèi)膜中心即Z環(huán)位置,參與大腸桿菌細(xì)胞分裂的調(diào)控 (圖10)。

    3 討論

    大腸桿菌FtsZ是細(xì)菌分裂過(guò)程中重要的調(diào)控蛋白,其通過(guò)GTP依賴的自組裝形成多聚體,促進(jìn)細(xì)菌分裂體和Z環(huán)結(jié)構(gòu)形成以調(diào)控細(xì)菌細(xì)胞分裂、FtsZ相對(duì)保守的細(xì)菌分裂調(diào)控模式已成為新型抗感染藥物開發(fā)的理想靶標(biāo)之一[4,7-10,13-16]。深入研究Ec-FtsZ在大腸桿菌分裂過(guò)程中的調(diào)控功能,尤其是調(diào)控細(xì)菌分裂體形成和Z環(huán)內(nèi)膜定位的分子機(jī)制,對(duì)未來(lái)新型抗耐藥菌細(xì)胞分裂抑制劑研發(fā)具有重要意義。特異性抗體對(duì)研究蛋白質(zhì)生物學(xué)功能和生化檢測(cè)具有重要作用,但目前還未有抗Ec-FtsZ抗體商品化銷售,因此制備特異性抗Ec-FtsZ抗體對(duì)Ec-FtsZ生物學(xué)功能深入研究和生化檢測(cè)具有重要意義。

    圖9 Westernblotting鑒定抗Ec-FtsZ多克隆抗體的抗原特異性

    圖10 免疫熒光實(shí)驗(yàn)分析Ec-FtsZ的亞細(xì)胞定位(×60)

    多克隆抗體雖特異性不如單克隆抗體,但其生產(chǎn)過(guò)程簡(jiǎn)便、成本低廉且產(chǎn)量較大,因此是抗體制備的重要選擇之一。諸多研究者將大腸桿菌原核表達(dá)的重組蛋白作為抗原免疫實(shí)驗(yàn)動(dòng)物 (如大鼠、小鼠、新西蘭大白兔等),成功制備了多種特異性多克隆抗體用于實(shí)驗(yàn)研究[11-12,17-20]。本研究將基因片段克隆至pET-22b(+) 表達(dá)載體中,構(gòu)建了重組質(zhì)粒Ec-FtsZ-pET-22b(+)。利用pET-22b(+) 的His標(biāo)簽羧基端融合表達(dá)策略,成功進(jìn)行了Ec-FtsZ原核表達(dá)與分離純化。由于誘導(dǎo)時(shí)間、誘導(dǎo)溫度與IPTG濃度是影響重組蛋白原核表達(dá)的重要因素[21-24],為了提高Ec-FtsZ表達(dá)量并節(jié)約實(shí)驗(yàn)成本,筆者對(duì)其原核表達(dá)條件進(jìn)行了系統(tǒng)優(yōu)化。Ec-FtsZ原核表達(dá)優(yōu)化實(shí)驗(yàn)顯示,不同的誘導(dǎo)溫度對(duì)其原核表達(dá)的影響較大。30 ℃誘導(dǎo)時(shí),Ec-FtsZ易于形成包涵體;25 ℃和20 ℃低溫誘導(dǎo)時(shí),大部分Ec-FtsZ以可溶形式表達(dá),這可能與低溫狀態(tài)下蛋白表達(dá)速度緩慢并促進(jìn)其正確折疊有關(guān)[24-25]。25 ℃誘導(dǎo)6 h時(shí),Ec-FtsZ表達(dá)量可達(dá)30%并趨于穩(wěn)定,故此以25 ℃誘導(dǎo) 6 h作為Ec-FtsZ最適表達(dá)條件。IPTG作為原核表達(dá)的誘導(dǎo)劑,其對(duì)Ec-FtsZ表達(dá)的誘導(dǎo)效率很高,0.2 mmol/L IPTG即可誘導(dǎo)Ec-FtsZ大量表達(dá)。

    高活性的Ec-FtsZ制備對(duì)于多克隆抗體制備和體外生物學(xué)功能研究具有重要意義??兹妇G法是FtsZ GTPase活性檢測(cè)的經(jīng)典方法[4,9-10],主要通過(guò)檢測(cè)反應(yīng)體系中自由磷酸濃度以反映酶的活性。該方法具有一步反應(yīng)、操作簡(jiǎn)便、檢測(cè)靈敏和成本低廉等諸多優(yōu)點(diǎn),不僅可以用于酶活性檢測(cè),還可以用于Ec-FtsZ GTPase抑制劑的高通量篩選。文中利用上述方法對(duì)Ec-FtsZ GTPase活性進(jìn)行了測(cè)定,證實(shí)了純化的Ec-FtsZ具有良好的GTPase活性。

    將純化的Ec-FtsZ作為抗原免疫大鼠制備多克隆抗體,以ELISA實(shí)驗(yàn)、Western blotting實(shí)驗(yàn)和免疫熒光實(shí)驗(yàn)進(jìn)行了抗Ec-FtsZ多克隆抗體效價(jià)和抗原特異性鑒定。ELISA實(shí)驗(yàn)表明抗Ec-FtsZ多克隆抗體效價(jià)可達(dá)1∶256 000,其具有較高的滴度。Western blotting實(shí)驗(yàn)證實(shí)了抗Ec-FtsZ多克隆抗體具有良好的抗原特異性,不僅可以識(shí)別純化的Ec-FtsZ,還可以特異性結(jié)合大腸桿菌內(nèi)源Ec-FtsZ。免疫熒光實(shí)驗(yàn)表明Ec-FtsZ主要分布于大腸桿菌細(xì)胞內(nèi)膜中心并形成了Z環(huán),其亞細(xì)胞定位與文獻(xiàn)報(bào)道基本一致[5,13,26],這也再次證實(shí)了抗Ec-FtsZ多克隆抗體具有良好的抗原特異性。

    目前,筆者將制備的抗Ec-FtsZ多克隆抗體成功應(yīng)用于以Ec-FtsZ/ZipA (FtsZ-interacting protein A,ZipA) 相互作用為靶標(biāo)的ELISA高通量篩選模型中的Ec-FtsZ生化檢測(cè)。通過(guò)應(yīng)用建立的ELISA篩選模型對(duì)本室天然產(chǎn)物化合物庫(kù)進(jìn)行了高通量篩選,已初步獲得了若干新型苗頭化合物。

    綜上所述,文中成功進(jìn)行了Ec-FtsZ原核表達(dá)和抗Ec-FtsZ多克隆抗體的制備與鑒定,為進(jìn)一步研究Ec-FtsZ生物學(xué)功能和生化檢測(cè)奠定了實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)。

    致謝:衷心感謝北京師范大學(xué)化學(xué)學(xué)院化學(xué)生物學(xué)系鄭積敏教授、中國(guó)醫(yī)學(xué)科學(xué)院藥物研究所天然藥物活性物質(zhì)與功能國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室林媛副研究員和軍事科學(xué)院軍事醫(yī)學(xué)研究院十一所基因工程全軍重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室岳玉環(huán)研究員在Ec-FtsZ原核表達(dá)、活性測(cè)定和多抗制備技術(shù)方面給予的悉心指導(dǎo)和無(wú)私幫助!

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    Bacterial expression, preparation and identification of polyclonal antibody againstFtsZ

    Yunyu Chen1, Xiayi Niu1, Miao Li1, Ni Li2, and Xiaoping Liu1

    1 Research Institute for Pharmaceutical Screening & Evaluation, Wannan Medical College, Wuhu 241002, Anhui, China 2 State Key Laboratory of Bioactive Substances and Function of Natural Medicine, Institute of Materia Medica, Chinese Academy of Medical Sciences & Peking Union Medical College, Beijing 100050, China

    To prepare polyclonal antibody (PcAb) againstfilamentous thermosensitive protein Z (Ec-FtsZ), the artificially synthesized gene fragment coding Ec-FtsZ was subcloned into pET-22b(+) plasmid, and Ec-FtsZ protein was expressed in.BL21(DE3) cell under an optimal bacterial expression condition. Then Ec-FtsZ protein was purified by HisTrap affinity chromatography, and the GTPase (Guanosine triphosphatase) activity of purified Ec-FtsZ protein was further analyzed by malachite green assay. Subsequently, the purified Ec-FtsZ protein was used to immunize rat subcutaneously for preparation of anti-Ec-FtsZ PcAb. The results of enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA), Western blotting analysis and immunofluorescence assay showed that the titer of PcAb was 1:256 000, and PcAb exhibited a perfect antigenic specificity against purified and endogenous Ec-FtsZ protein. All these data indicated that the anti-Ec-FtsZ PcAb is successfully prepared, which can be used for further cellular function study and biochemical analysis of Ec-FtsZ protein.

    FtsZ protein, bacterial expression, malachite green assay, immunofluorescence assay, polyclonal antibody

    January 6, 2019;

    March 11, 2019

    National Natural Science Foundation of China (Nos. 81503065, 81703546), Anhui Provincial Natural Science Foundation (No. 1808085QH265), Jilin Scientific and Technological Development Program (No. 20160520045JH), The Doctoral Starting-up Fund of Wannan Medical College (No. RCQD201617), College Student Innovation Fund of Wannan Medical College (No. WK2018S54).

    Xiaoping Liu. Tel: +86-553-3932601; Fax: +86-553-3932622; E-mail: liuxiaoping@wnmc.edu.cn

    Ni Li. Tel: +86-10-83162728; Fax: +86-10-63180604; E-mail: linineon@126.com

    國(guó)家自然科學(xué)基金 (Nos. 81503065,81703546),安徽省自然科學(xué)基金 (No. 1808085QH265),吉林省科技發(fā)展計(jì)劃 (No. 20160520045JH),皖南醫(yī)學(xué)院博士科研啟動(dòng)基金 (No. RCQD201617),皖南醫(yī)學(xué)院大學(xué)生科研資助金 (No. WK2018S54) 資助。

    2019-03-19

    http://kns.cnki.net/kcms/detail/11.1998.q.20190318.1733.004.html

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    (本文責(zé)編 陳宏宇)

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