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    青菜泡菜工業(yè)發(fā)酵過程中微生物群落結(jié)構(gòu)變化分析

    2019-06-25 09:36:34于文平張亞豪吳正云宮尾茂雄張文學(xué)
    中國調(diào)味品 2019年6期
    關(guān)鍵詞:桿菌屬泡菜青菜

    于文平,張亞豪,吳正云,宮尾茂雄,張文學(xué),2*

    (1.四川大學(xué) 輕紡與食品學(xué)院,成都 610065;2.四川大學(xué)錦江學(xué)院 白酒學(xué)院, 四川 眉山 620860;3.東京家政大學(xué) 家政學(xué)部,日本 東京 173-8602)

    泡菜是一種以新鮮蔬菜為原料,在一定濃度食鹽水中泡漬,厭氧或兼性厭氧條件下自然發(fā)酵而成的蔬菜制品[1]。中國泡菜歷史悠久,文化深厚,最早可追溯到3000年前的周朝[2]。四川泡菜口感脆嫩,營養(yǎng)豐富,富含多種維生素、有機(jī)酸和活性乳酸菌,在中國西南地區(qū)被廣泛食用[3]。目前,對(duì)于泡菜的研究大多停留在對(duì)泡菜原料、發(fā)酵工藝的優(yōu)化及風(fēng)味物質(zhì)的分析,對(duì)泡菜中微生物群落結(jié)構(gòu)的研究較少,如侯方麗等[4]以甘藍(lán)為原料,通過自然發(fā)酵方式,探究出甘藍(lán)泡菜發(fā)酵的最佳工藝,曹東等[5]采用SPME-GC-MS 對(duì)自制泡菜在發(fā)酵過程中不同時(shí)期的揮發(fā)性風(fēng)味進(jìn)行分析。

    近年來,分子生物學(xué)免培養(yǎng)技術(shù)被廣泛地應(yīng)用到傳統(tǒng)釀造食品的微生物群落研究中,其中,變性梯度凝膠電泳(PCR-DGGE)是一種根據(jù)DNA片段溶解性質(zhì)而使之分離的技術(shù),最先由Muyzer等[6]提出,主要用于檢測(cè)樣品中免培養(yǎng)微生物的組成;實(shí)時(shí)熒光定量PCR(qPCR)作為一種對(duì)微生物進(jìn)行定量的手段而被廣泛用于各種食品的微生物定量分析。為探究四川工業(yè)泡菜發(fā)酵過程中微生物群落結(jié)構(gòu),本研究利用PCR-DGGE和qPCR技術(shù)對(duì)四川工業(yè)青菜泡菜中主要微生物進(jìn)行定性和定量分析,旨在為四川泡菜的工業(yè)化發(fā)展提供一定的理論基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    材料:取發(fā)酵1,3,5,13,26,41,68,81,103,110 d的青菜泡菜液(四川李記醬菜調(diào)味品有限公司),置于-20 ℃下貯藏,以備后續(xù)實(shí)驗(yàn)。

    試劑:E.Z.N.A.?水樣DNA提取試劑盒(美國Omega公司)、DNA Marker(片段約200~2000 bp);瓊脂糖;2×Tag PCR MasterMix(法國Biowest公司);40%丙烯酰胺; 雙丙烯酰胺; 5×TAE緩沖液;尿素;過硫酸銨;去離子甲酰胺、SYBR Green I;無水乙醇;異丙醇;亞鐵氰化鉀;乙酸鋅;四硼酸鈉;對(duì)氨基苯磺酸;亞硝酸鈉;鹽酸萘乙二胺;0.1 mol/L NaOH標(biāo)準(zhǔn)溶液。

    1.2 儀器

    pH計(jì)(PHS-3C)、鹽度計(jì)(PAL-SALT);手持式阿貝折光儀(WZ-201);梯度PCR儀(MyCyclerTMThermal Cycler);高速冷凍離心機(jī)(Sorvall Legend Micro 17R);DGGE(D-CodeTMUniversal Mutation Detection System);熒光定量PCR儀(LightCycle?Nano);電泳儀(DYY-5);凝膠成像儀(Gel DocTMXR+);核酸微量分光光度計(jì)(NanoDrop 2000);單人單面凈化工作臺(tái)(SW-CJ-1FD);迷你離心機(jī)(LX-400);數(shù)顯恒溫水浴鍋(HH);微型旋渦混合儀(WH-2)。

    1.3 實(shí)驗(yàn)方法

    1.3.1 泡菜理化指標(biāo)測(cè)定

    pH、鹽度(salinity)、可溶性固形物(TSS),分別使用pH計(jì)、鹽度計(jì)和手持式阿貝折光儀參照儀器使用方法測(cè)定。

    泡菜液中總酸(以乳酸計(jì),TTA)含量采用GB/T 12456-2008《食品中總酸的測(cè)定》[7]方法測(cè)定。

    泡菜液中亞硝酸鹽含量(nitrite concentration)采用GB 5009.33—2016《食品安全國家標(biāo)準(zhǔn) 食品中亞硝酸鹽與硝酸鹽的測(cè)定》[8]方法測(cè)定。

    1.3.2 泡菜DNA提取及PCR擴(kuò)增

    利用E.Z.N.A.?水樣DNA提取試劑盒提取泡菜液樣品中微生物的基因組DNA。使用P3f (5′-CC TAC GGG AGG CAG CAG-3′)和P2r (5′-ATT ACC GCG GCT GCT GG-3′)進(jìn)行16S rRNA擴(kuò)增,使用NS3f (5′-GC AAG TCT GGT GCC AGC AGC C- 3′)和YM951r (5′-TTG GCA AAT GCT TTC GC- 3′)進(jìn)行18S rRNA擴(kuò)增[9]。擴(kuò)增體系為50 μL,包括2×PCR Mix(5 mL),前后引物各20 pmol,DNA模板10 ng,用雙蒸水補(bǔ)足。擴(kuò)增程序參照Liang等[10]的方法擴(kuò)增產(chǎn)物使用2%的瓊脂糖凝膠進(jìn)行電泳得到目的條帶。

    1.3.3 PCR-DGGE分析

    將1.3.2得到的擴(kuò)增產(chǎn)物在8%聚丙烯酰胺凝膠中進(jìn)行電泳,電泳液是1×TAE緩沖液。細(xì)菌和真菌凝膠電泳的變性劑梯度濃度范圍分別是30%~55%和20%~40%。細(xì)菌PCR擴(kuò)增產(chǎn)物在200 V恒壓下電泳4 h,真菌PCR擴(kuò)增產(chǎn)物在160 V恒壓下電泳4.5 h。電泳結(jié)束后,用Gel DocTMXR (Bio-Rad Laboratories)進(jìn)行成像,觀察結(jié)果。

    將圖譜上的主要條帶進(jìn)行切割回收,將回收產(chǎn)物送至生工生物工程(上海)股份有限公司進(jìn)行克隆測(cè)序。將測(cè)序序列在NCBI中用BLAST進(jìn)行序列對(duì)比,獲得與GenBank數(shù)據(jù)庫中相似的序列,然后在RDP中進(jìn)行分類。

    1.3.4 qPCR分析

    實(shí)時(shí)熒光定量PCR用于檢測(cè)青菜泡菜發(fā)酵過程中乳桿菌屬的數(shù)量變化。擴(kuò)增引物為L(zhǎng)ac-f(5′-GCA GCA GTA GGG AAT CTT CCA-3′)和Lac-r(5′-GCA TTY CAC CGC TAC ACA TG-3′)[11]。擴(kuò)增反應(yīng)體積是20 μL(1 mL SYBR?Green PCR Master Mix, 2 pmol引物,DNA模板,用雙蒸水補(bǔ)足)。擴(kuò)增程序:95 ℃預(yù)變性10 min,95 ℃變性15 s,60 ℃退火30 s,72 ℃延伸15 s,共40個(gè)循環(huán),每個(gè)循環(huán)末端收集熒光信號(hào)。反應(yīng)結(jié)束后,以標(biāo)準(zhǔn)品濃度的對(duì)數(shù)作為橫坐標(biāo),閾值循環(huán)數(shù)Cq作為縱坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 泡菜發(fā)酵過程中的理化特性

    泡菜發(fā)酵過程中pH、TTA、TSS、鹽度和亞硝酸鹽含量的變化見圖1。

    觀察泡菜pH的變化趨勢(shì),發(fā)現(xiàn)隨著發(fā)酵的進(jìn)行,泡菜液的pH從起始的5.90逐漸下降,最終穩(wěn)定在3.88;泡菜的起始TTA含量為0.67 g/L,隨著發(fā)酵進(jìn)行逐漸上升,發(fā)酵81 d后達(dá)到最高6.86 g/L,之后再次下降,至終止取樣時(shí)降至5.53 g/L。一般認(rèn)為,泡菜的pH小于4.0,且TTA大于3.0 g/L,是泡菜成熟的標(biāo)志??梢姲l(fā)酵81 d時(shí),青菜泡菜已可認(rèn)為發(fā)酵成熟。

    從發(fā)酵開始至發(fā)酵結(jié)束,泡菜TSS和鹽度有所波動(dòng),但變化不大;前者基本維持在8.80%~11.80%之間,后者基本維持在5.30%~6.60%之間,兩者在發(fā)酵81 d后基本保持穩(wěn)定。

    圖1 工業(yè)青菜泡菜發(fā)酵過程中理化特性變化Fig.1 The changes of physico-chemical properties of industrial pickled vegetables during fermentation

    亞硝酸鹽具有致癌性,對(duì)人體有害,國標(biāo)GB 2762-2017《食品安全國家標(biāo)準(zhǔn) 食品中污染物限量》規(guī)定泡菜中的亞硝酸鹽含量限量為20 mg/kg。由圖1可知,泡菜中亞硝酸鹽含量在發(fā)酵第1天為最高峰,亞硝酸鹽主要來源于青菜原料;隨著發(fā)酵進(jìn)行,亞硝酸鹽含量持續(xù)降低,發(fā)酵第3天已低于限量值的一半以下,13 d后保持穩(wěn)定,維持在6.0 mg/kg左右。

    2.2 泡菜發(fā)酵過程中細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)

    青菜泡菜發(fā)酵過程中多樣性指數(shù)(H,S和E)大小及其變化見表1。

    表1 工業(yè)青菜泡菜發(fā)酵過程中細(xì)菌和真菌多樣性 及乳桿菌屬qPCR定量結(jié)果Table 1 Diversity of bacteria and fungi during industrial pickled vegetables fermentation and qPCR quantitative results of Lactobacillus

    H,S和E值分別代表微生物的群落多樣性、豐富度和均勻度。由表1可知,H值從第1天的2.32增至第5天的2.91,但隨后又降至第110天的2.65;S值從第1天的16增加至第13天的24,最終穩(wěn)定在24~26之間;E值在發(fā)酵過程中始終穩(wěn)定在0.82~0.93之間??偟膩碚f,泡菜發(fā)酵不同階段微生物多樣性、豐富度和均勻度均有變化,推測(cè)與泡菜液中pH的變化有關(guān),不耐酸微生物在低pH環(huán)境下生長(zhǎng)受到抑制。

    細(xì)菌的DGGE圖譜見圖2中A,共出現(xiàn)30個(gè)條帶,具體測(cè)序結(jié)果見表2。

    圖2 工業(yè)青菜泡菜的細(xì)菌(A)和真菌(B)PCR-DGGE條帶Fig.2 The bacteria (A) and fungi (B) PCR-DGGE banls of industrial pickled vegetables

    注:泳道1~110表示泡菜發(fā)酵的1~110 d,黑色箭頭表示切下測(cè)序的條帶,具體測(cè)序結(jié)果見表2。

    表2 DGGE條帶測(cè)序結(jié)果Table 2 The seguencing results of DGGE

    續(xù) 表

    由圖2中A和表2可知,泡菜樣品含有2個(gè)門,厚壁菌門(Firmicutes,19個(gè)條帶)和變形菌門(Proteobacteria,11個(gè)條帶),共包含12個(gè)屬,包括乳桿菌屬(Lactobacillus,條帶6,7,8,9,16,18,25,30)、鹽單胞菌屬(Halomonas,條帶17,28,29)、假單胞菌屬(Pseudomonas,條帶4,10,14),弧菌科細(xì)菌(Vibrionaceaebacterium,條帶2)、環(huán)菌絲屬(Brochothrixthermosphacta,條帶11)、歐文氏菌屬(Erwinia,條帶15)、鹽弧菌屬(Salinivibrio,條帶22)和其他未分類菌屬。

    由圖3中A可知,乳桿菌屬是青菜泡菜中主要的優(yōu)勢(shì)微生物,這與Liang等[12]之前的研究結(jié)果一致;而Xiong等的研究進(jìn)一步發(fā)現(xiàn)中國自然發(fā)酵泡菜中主要存在的乳桿菌屬是植物乳桿菌(Lactobacillusplantarum)、干酪乳桿菌(Lactobacilluscasei)和玉米乳桿菌(Lactobacilluszeae)。乳酸菌在泡菜發(fā)酵過程中能產(chǎn)生大量的有機(jī)酸,如乳酸、草酸、檸檬酸、醋酸等,導(dǎo)致發(fā)酵液的pH值降低,進(jìn)一步抑制其他雜菌的生長(zhǎng)。

    圖3 工業(yè)青菜泡菜發(fā)酵過程中細(xì)菌(A) 和真菌(B)屬水平上群落組成Fig.3 Community composition of bacteria (A) and fungi (B) on genera level during industrial pickled vegetables fermentation

    由表2可知,工業(yè)青菜泡菜中的乳桿菌屬是消化乳桿菌(Lactobacillusalimentarius)和植物乳桿菌(Lactobacillusplantarum)。消化乳桿菌能夠抑制腐敗微生物的生長(zhǎng),延長(zhǎng)發(fā)酵食品的保質(zhì)期,提高產(chǎn)品的質(zhì)量安全,是天然的生物防腐劑[13]。植物乳桿菌產(chǎn)生的乳酸,是泡菜酸味的主要來源,在發(fā)酵過程中可與醇、醛和酮類發(fā)生反應(yīng),產(chǎn)生大量的風(fēng)味物質(zhì)[14,15]。由圖3中A可知,工業(yè)青菜泡菜中相對(duì)含量最高的是乳桿菌屬、鹽單胞菌屬和假單胞菌屬。鹽單胞菌屬能夠耐鹽,分解葡萄糖,產(chǎn)生多種風(fēng)味物質(zhì),它的存在與工業(yè)生產(chǎn)泡菜“鹽漬”這一步驟有關(guān)[16]。假單胞菌屬存在于新鮮蔬菜中,生存能力強(qiáng),適應(yīng)環(huán)境范圍廣[17]。

    2.3 泡菜發(fā)酵過程中真菌群落結(jié)構(gòu)

    真菌DGGE圖譜見圖2中B,共出現(xiàn)了12個(gè)條帶,具體測(cè)序鑒定結(jié)果見表2。由表2可知,真菌群落的H值在1.41~1.98之間,S值在5~9之間,E值在0.72~0.92之間,由此可見真菌群落的多樣性和豐富度均低于細(xì)菌群落。結(jié)合圖2中B和表2可知,泡菜樣品含有5個(gè)屬的真菌,分別是德巴利氏酵母屬(Debaryomyces,條帶1,2,5,6,7,8)、假絲酵母屬(Candida,條帶3,11,12)、Cystofilobasidium(條帶10)、酵母屬(Saccharomyces,條帶4)、柯達(dá)酵母屬(Kodamaea,條帶9),其中德巴利氏酵母屬是工業(yè)青菜泡菜中的優(yōu)勢(shì)真菌屬。漢遜德巴利氏酵母屬(Debaryomyceshansenii)是青菜泡菜風(fēng)味物質(zhì)形成的重要菌屬,可以分解葡萄糖產(chǎn)生D-阿拉伯糖和乙酸乙酯,使泡菜風(fēng)味更加協(xié)調(diào)[18]。假絲酵母和酵母屬能夠利用果糖產(chǎn)生酒精[19,20]。

    2.4 泡菜發(fā)酵過程中微生物群落的RDA分析

    圖4 工業(yè)青菜泡菜微生物群落的RDA分析Fig.4 RDA analysis of microbial community structures of industrial pickled vegetables

    注:箭頭和長(zhǎng)度表示5種變量與微生物群落結(jié)構(gòu)的相關(guān)性大??;○表示發(fā)酵時(shí)間,△表示微生物名稱。

    由圖4可知,亞硝酸鹽含量(nitrite concentration)和鹽度(salinity)與發(fā)酵第1天的相關(guān)性較大,pH與發(fā)酵3~26 d的相關(guān)性較大,TTA和TSS則與發(fā)酵41~110 d的相關(guān)性較大。pH值的變化與發(fā)酵過程中產(chǎn)生的有機(jī)酸有關(guān),低pH能夠抑制病原菌的生長(zhǎng),從而保證泡菜的安全。pH主要在發(fā)酵前期的作用較為明顯,而TTA在發(fā)酵后期的作用較為明顯,這與圖4反映的信息一致。研究表明,乳桿菌屬能夠抑制發(fā)酵過程中亞硝酸鹽還原酶的活性,降低泡菜中亞硝酸鹽的含量[21]。因此,隨著乳桿菌數(shù)量的增加,泡菜中亞硝酸鹽含量降低,這也解釋了亞硝峰出現(xiàn)在泡菜發(fā)酵前期的現(xiàn)象。

    由圖4可知,微生物群落結(jié)構(gòu)與泡菜發(fā)酵進(jìn)程存在一定相關(guān)性,假絲酵母屬(Candida)、Cystofilobasidium、弧菌屬(Vibrio)、鹽厭氧菌屬(Halanaerobium)主要與發(fā)酵前期相關(guān),假單胞菌屬(Pseudomonas)、Wohlfahrtiimonas、鹽單胞菌屬(Halomonas)、環(huán)絲菌屬(Brochothrix)、海螺菌屬(Marinospirillum)、梭菌屬(Clostridiaceae)、歐文氏菌屬(Erwinia)、德巴利氏酵母屬(Debaryomyces)與發(fā)酵中期相關(guān),乳桿菌屬(Lactobacillus)、柯達(dá)酵母屬(Kodamaea)、酵母屬(Saccharomycescerevisiae)、鹽弧菌屬(Salinivibrio)、疣微菌科(Ruminococcaceae)與發(fā)酵后期相關(guān)。

    2.5 乳桿菌屬的熒光實(shí)時(shí)定量PCR結(jié)果

    根據(jù)細(xì)菌DGGE條帶結(jié)果發(fā)現(xiàn)乳桿菌屬是工業(yè)青菜泡菜中的優(yōu)勢(shì)菌屬。工業(yè)青菜泡菜發(fā)酵過程中乳桿菌屬數(shù)量的變化見表1,所有樣品中,乳桿菌屬的拷貝數(shù)為107~1011copies/mL,這表明發(fā)酵前后,乳桿菌屬數(shù)量迅速增加,然后下降,最后穩(wěn)定在1011copies/mL,該結(jié)果與張亞豪等[22]的研究結(jié)果一致。

    3 結(jié)論

    本文結(jié)合PCR-DGGE和qPCR技術(shù)主要研究了工業(yè)青菜泡菜發(fā)酵過程中的微生物群落結(jié)構(gòu)演替規(guī)律及乳桿菌屬含量變化。細(xì)菌群落中,發(fā)現(xiàn)2個(gè)門(厚壁菌門和變形菌門)、12個(gè)屬,主要包括乳桿菌屬、鹽單胞菌屬、假單胞菌屬、弧菌屬、鹽弧菌屬、歐文氏菌屬等,其中乳桿菌屬是優(yōu)勢(shì)菌屬,發(fā)酵過程中其含量維持在107~1011copies/mL。種水平上,優(yōu)勢(shì)菌是消化乳桿菌和植物乳桿菌。真菌群落中共檢測(cè)到5個(gè)屬,包括德巴利氏酵母菌屬、假絲酵母屬、酵母屬、柯達(dá)酵母屬、Cystofilobasidium,其中德巴利氏酵母屬是優(yōu)勢(shì)真菌屬。另外,本研究還發(fā)現(xiàn),微生物群落結(jié)構(gòu)與發(fā)酵進(jìn)程具有相關(guān)性,因此不同發(fā)酵階段優(yōu)勢(shì)菌屬不同。

    利用PCR-DGGE和qPCR技術(shù)能夠分析出工業(yè)青菜泡菜發(fā)酵過程中的微生物群落結(jié)構(gòu),本次研究結(jié)果能夠?yàn)樘岣吖I(yè)化泡菜的質(zhì)量和規(guī)模提供技術(shù)支持。

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