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    IL-10在大鼠蛛網(wǎng)膜下腔出血后早期腦損傷中的作用研究*

    2019-06-10 08:51:58趙俠勇趙君杰宋錦寧
    陜西醫(yī)學(xué)雜志 2019年6期

    趙俠勇,趙君杰,宋錦寧△,金 濤

    1.西安交通大學(xué)第一附屬醫(yī)院神經(jīng)外科(西安 710061);2.陜西省安康市中心醫(yī)院麻醉科 (安康 725000);3.陜西省安康市中心醫(yī)院神經(jīng)外科 (安康 725000)

    蛛網(wǎng)膜下腔出血(Subarachnoid hemorrhage,SAH)是神經(jīng)外科常見(jiàn)的急危重癥,發(fā)病率大約為10/10萬(wàn),發(fā)病后1個(gè)月病死率達(dá)45%,30%的存活患者存在嚴(yán)重的神經(jīng)功能障礙[1]。目前研究認(rèn)為,SAH后早期腦損傷(Early brain injury,EBI)是影響SAH預(yù)后的關(guān)鍵因素[2]。EBI可能的病理機(jī)制包括細(xì)胞代謝改變、離子失衡、氧化應(yīng)激、免疫炎癥等[3],其中免疫炎癥在SAH后EBI中發(fā)揮重要作用[4],但其具體機(jī)制尚未完全闡明。小膠質(zhì)細(xì)胞是中樞神經(jīng)系統(tǒng)的免疫細(xì)胞,是免疫炎癥的主要參與細(xì)胞,在SAH后的病理生理演變過(guò)程中扮演重要角色。SAH可導(dǎo)致小膠質(zhì)細(xì)胞大量激活,并釋放多種細(xì)胞因子,參與SAH后神經(jīng)元損傷。IL-10是一種重要的抗炎細(xì)胞因子,參與調(diào)控小膠質(zhì)細(xì)胞的活化,但I(xiàn)L-10在SAH中的作用機(jī)制尚不完全清楚[5]。本研究擬通過(guò)血管穿刺法建立大鼠SAH模型,立體定向側(cè)腦室穿刺給予IL-10,利用Western blotting,免疫組化、HE染色及尼氏染色等分子生物學(xué)方法,研究SAH后神經(jīng)元和小膠質(zhì)細(xì)胞病理改變及炎癥相關(guān)因子TNF-α、IL-1β等的變化,以期闡明IL-10在SAH后參與EBI的相關(guān)作用機(jī)制。

    材料與方法

    1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物和主要試劑 選擇相同遺傳背景的健康成年雄性SD大鼠48只,體重300~350g,在標(biāo)準(zhǔn)環(huán)境飼養(yǎng)(溫度22℃,24h晝夜循環(huán)光照,食水自由),隨機(jī)分為假手術(shù)組(12只),SAH 1 d組(12只),SAH 3 d組(12只),SAH 1 d+IL10組(12只)、SAH 3 d+IL-10組(12只)。本實(shí)驗(yàn)動(dòng)物倫理經(jīng)西安交通大學(xué)醫(yī)學(xué)部生物倫理委員會(huì)批準(zhǔn)。IL-10的濃度為100 ng/L,建模后30 min內(nèi)通過(guò)立體定向方法行側(cè)腦室注射5 μl。實(shí)驗(yàn)材料包括:Iba-1抗體(日本W(wǎng)ako公司),IL-10抗體、TNF-α、IL-1β(英國(guó)abcam公司),IL-10蛋白因子(美國(guó)Novus公司),兔SP免疫組化試劑盒(北京中杉金橋生物技術(shù)公司),蛋白提取試劑盒(西安赫特),HE染色試劑盒(武漢谷歌生物)、尼氏染色試劑盒(武漢谷歌生物)。

    2 模型制作 SAH模型制作參考文獻(xiàn)中的大腦中動(dòng)脈穿刺模型[6],所有大鼠術(shù)前常規(guī)禁飲食6 h,用100 g/L的水合氯醛(3.5 ml/kg)腹腔注射進(jìn)行麻醉。麻醉成功后將大鼠仰臥位固定于手術(shù)臺(tái),頸部剃毛、消毒。頸部正中切開(kāi)皮膚,鈍性分離,暴露左側(cè)頸總動(dòng)脈主干及分叉,繼續(xù)向上分離暴露頸內(nèi)動(dòng)脈和頸外動(dòng)脈。動(dòng)脈夾臨時(shí)阻斷頸總動(dòng)脈和頸內(nèi)動(dòng)脈,絲線結(jié)扎頸外動(dòng)脈遠(yuǎn)端并離斷,將帶有刻度的直徑約0.265 mm的魚(yú)線從頸外動(dòng)脈殘端置入頸內(nèi)動(dòng)脈,去掉頸內(nèi)動(dòng)脈夾,從分叉處插入深度約20 mm,直至有突破感后再進(jìn)線1~2 mm,維持15 s后將線抽出,結(jié)扎頸外動(dòng)脈,去除所有動(dòng)脈夾,縫合切口。

    3 大鼠側(cè)腦室注射 造模后30 min內(nèi),大鼠俯臥位置于臺(tái)面,將頭部固定于腦立體定位儀上。頭頂皮膚剃毛,消毒,于正中做一長(zhǎng)約1 cm切口,暴露前囟,以前囟為0點(diǎn)尋找進(jìn)針點(diǎn),其坐標(biāo)[7]為:前囟后0.8 mm,中線旁1.5 mm。用磨鉆磨開(kāi)顱骨,暴露硬腦膜,注射針垂直插入約3.5 mm,緩慢注射藥物,持續(xù)約10 min,完成后注射針繼續(xù)停留5 min,然后拔出注射針,骨蠟封閉骨窗,縫合頭皮切口。SAH組給予相同劑量的生理鹽水。

    4 取材及組織病理學(xué)染色 SAH后1 d、3 d,麻醉大鼠,每組6只大鼠使用250 ml生理鹽水灌注取腦,分離皮層,置于液氮中保存。每組另6只大鼠使用生理鹽水250 ml灌注后并使用250 ml 40 g/L的多聚甲醛固定,取腦,并將腦組織放置在40 g/L的多聚甲醛中繼續(xù)固定48 h,然后置于自來(lái)水中24 h,80%乙醇浸泡。常規(guī)石蠟包埋、切片,片厚5 μm,60℃烤切片1 h,常規(guī)二甲苯脫蠟,梯度乙醇水化,標(biāo)準(zhǔn)步驟行HE染色、尼氏染色,常規(guī)脫水、透明、封片。

    5 免疫組織化學(xué)檢測(cè) 常規(guī)烤片、脫蠟、梯度乙醇水化;3%的H2O2消除內(nèi)源性過(guò)氧化物酶;0.01mol/L枸櫞酸緩沖液微波修復(fù),自然冷卻至室溫;5%BSA封閉;滴加一抗IL-10(1∶400)、Iba-1(1∶400);4 ℃過(guò)夜后,滴加二抗孵育,滴加SABC孵育,DAB顯色,自來(lái)水沖洗干凈;蘇木素復(fù)染;梯度乙醇脫水,二甲苯透明,樹(shù)膠封片,鏡檢。免疫組織化學(xué)染色評(píng)分通過(guò)陽(yáng)性細(xì)胞數(shù)評(píng)分與染色強(qiáng)度評(píng)分的乘積獲取[8]。陽(yáng)性細(xì)胞數(shù)評(píng)分:無(wú)細(xì)胞染色計(jì)0分,1%~10%細(xì)胞數(shù)著色計(jì)1分,11%~50%細(xì)胞著色計(jì)2分,51%~80%細(xì)胞著色計(jì)3分,81%~100%細(xì)胞著色計(jì)4分。染色強(qiáng)度評(píng)分:無(wú)著色計(jì)0分,弱陽(yáng)性計(jì)1分,中等強(qiáng)度陽(yáng)性計(jì)2分,強(qiáng)陽(yáng)性計(jì)3分。

    6 Western blotting檢測(cè) 按蛋白質(zhì)提取試劑盒的說(shuō)明書(shū)提取大鼠皮層總蛋白,按1∶4比例加入Loading buffer后煮沸,置于-20℃。上樣,按每孔5 μl加入蛋白,電泳,轉(zhuǎn)膜,并在5%脫脂牛奶中封閉1 h,過(guò)夜孵育一抗IL-10(1∶1000)、TNFα(1∶1000)及IL-1β,然后TBST洗膜,室溫孵育二抗1 h,TBST洗膜,ECL顯影,利用凝膠成像系統(tǒng)觀察結(jié)果并拍照,Image J軟件進(jìn)行分析。

    7 行為學(xué)評(píng)估 大鼠行為學(xué)評(píng)估按照NSS評(píng)分法[9],共18分:正常,0分;輕度損傷1~6分;中度損傷7~12分;重度損傷13~18分。包括運(yùn)動(dòng)、感覺(jué)、反射和平衡檢測(cè),運(yùn)動(dòng)檢測(cè):提起鼠尾巴,前肢屈曲1分,后肢屈曲1分,頭擺動(dòng)的角度在縱軸超過(guò)10° 1分,將大鼠置于地面,正常行走0分,不能直線行走1分,圍繞癱瘓側(cè)轉(zhuǎn)圈2分,倒向癱瘓側(cè)3分;感覺(jué)檢測(cè):淺感覺(jué)障礙1分,本體感覺(jué)障礙1分;平衡木檢測(cè):穩(wěn)定的姿勢(shì)保持平衡0分,抓握注平衡木1分,抱住平衡木且一只腳從平衡木掉下2分,抱住平衡木且兩只腳掉下來(lái)或在平衡木上旋轉(zhuǎn)(>60 s)3分,在平衡木上嘗試保持平衡但掉下來(lái)(>40 s)4分,在平衡木上嘗試保持平衡但掉下來(lái)(>20 s)5分,從平衡木上掉下來(lái)(<20 s);反射缺陷及不正常運(yùn)動(dòng):耳郭反射1分,角膜反射1分,驚訝反射1分,癲癇、肌陣攣、肌張力不全1分。

    結(jié) 果

    1 SAH后大體標(biāo)本及組織形態(tài)學(xué)改變 通過(guò)穿刺頸內(nèi)動(dòng)脈制作大鼠SAH模型,與假手術(shù)組相比,SAH模型組可見(jiàn)蛛網(wǎng)膜下腔有廣泛的出血,尤其是在Wills環(huán)附近出血明顯。HE染色顯示,假手術(shù)組皮層神經(jīng)元形態(tài)結(jié)構(gòu)正常,細(xì)胞核呈藍(lán)色的球形,胞漿淡染。SAH 1 d后皮層結(jié)構(gòu)疏松液化、結(jié)構(gòu)紊亂,部分神經(jīng)元腫脹,核固縮、深染、偏移(圖1)。

    圖1 假手術(shù)組與SAH組腦組織大體觀及皮層HE染色(100×=146 μm;200×=73 μm)

    2 SAH后IL-10的表達(dá)變化 Western blotting及免疫組織化學(xué)染色顯示IL-10表達(dá)于正常腦組織中,SAH 1 d及SAH 3 d IL-10表達(dá)未見(jiàn)統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P>0.05),IL-10主要表達(dá)于細(xì)胞漿和細(xì)胞核,染色陽(yáng)性的細(xì)胞形態(tài)多樣,呈大球形及分支形(圖2)。

    3 IL-10改善SAH后神經(jīng)功能缺損 神經(jīng)功能評(píng)估在處死大鼠前操作。SAH后出現(xiàn)明顯的神經(jīng)功能缺損,SAH 1 d組及SAH 3 d組神經(jīng)功能缺損得分分別為(15.00±0.58)分和(12.00±0.73)分,表明是SAH 1 d組損傷程度為重度損傷,SAH 3 d組為中度損傷。與SAH組相比,IL-10顯著緩解了神經(jīng)功能缺損,SAH 1 d+IL-10組和SAH 3 d+IL-10組神經(jīng)功能評(píng)分分別為(8.83±0.79)分和(6.50±0.56)分,分別較SAH 1 d組和SAH 3 d組有顯著的降低(P<0.0001和P<0.0001)(圖3)。

    4 IL-10改善SAH 1 d病理改變 與假手術(shù)組相比,SAH 1 d組皮層組織結(jié)構(gòu)紊亂疏松,神經(jīng)元尼氏體消失,給予IL-10后,與SAH 1 d組相比,皮層結(jié)構(gòu)較為完整,神經(jīng)元、尼氏體結(jié)構(gòu)基本完整(圖4a);與假手術(shù)組相比,SAH 1 d組結(jié)構(gòu)紊亂疏松液化,細(xì)胞形態(tài)變化,核固縮深染,給予IL-10后,與SAH 1 d組相比,結(jié)構(gòu)基本完整,細(xì)胞形態(tài)基本完整,核圓(圖4b)。

    圖2SAH后IL-10表達(dá)情況(a:WB檢測(cè)IL-10表達(dá)及灰度值分析;b:皮層IL-10免疫組織化學(xué)染色,比例尺100倍=50 μm,200倍=20 μm;c:IL-10免疫組化評(píng)分;ns:無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)差異)

    5 IL-10減輕SAH后炎癥反應(yīng) Western blotting顯示,與假手術(shù)組相比,SAH 1 d、SAH 3 d組TNF-α、IL-1β表達(dá)明顯升高(P<0.0001)。與SAH 1 d、SAH 3 d組相比,SAH 1 d+IL-10組、SAH 3 d+IL-10組TNF-α、IL-1β比相應(yīng)組表達(dá)明顯下降(圖5a、b、c)。與假手術(shù)組相比,SAH 1 d組小膠質(zhì)細(xì)胞數(shù)量明顯增加、胞體變大、著色加深,小膠質(zhì)細(xì)胞由假手術(shù)組的多分支、細(xì)分支、小胞體變?yōu)榉种Т执?、分支減少、胞體增大。與SAH 1 d組相比,SAH 1 d+IL-10組小膠質(zhì)細(xì)胞明顯減小,分支多且細(xì),著色減弱(圖6)。

    討 論

    本研究通過(guò)Western blotting及免疫組織化學(xué)檢測(cè)發(fā)現(xiàn)正常腦組織中存在IL-10的表達(dá),SAH后1d和3d的IL-10表達(dá)變化不顯著;但在SAH后1h內(nèi),立體定向側(cè)腦室注射IL-10能明顯改善SAH后的神經(jīng)功能缺損,且通過(guò)HE染色及尼氏染色證實(shí)IL-10顯著緩解了SAH后的腦組織及神經(jīng)元損傷;進(jìn)一步通過(guò)蛋白定量檢測(cè)發(fā)現(xiàn)IL-10能降低SAH后腦組織中TNF-α、IL-1β的表達(dá),并減少小膠質(zhì)細(xì)胞的激活。因此,本研究結(jié)果提示IL-10可能通過(guò)抑制小膠質(zhì)細(xì)胞的炎癥反應(yīng)從而緩解SAH后神經(jīng)元損傷。

    研究證實(shí),針對(duì)SAH后腦血管痙攣的干預(yù),即內(nèi)皮素-1受體拮抗劑并不能顯著改善SAH預(yù)后[10]。目前認(rèn)為EBI是導(dǎo)致SAH高致殘率和致死率的最主要原因,其中炎癥相關(guān)機(jī)制是導(dǎo)致SAH后EBI 的重要因素[11]。研究證實(shí)[4],實(shí)驗(yàn)性SAH后小膠質(zhì)細(xì)胞明顯增多,TNF-α表達(dá)明顯升高,且與腦血流量的降低有一定相關(guān)性。Sozen等[12]研究發(fā)現(xiàn),SAH后IL-1β表達(dá)明顯升高,認(rèn)為IL-1β在SAH后EBI中發(fā)揮重要作用。本研究證實(shí),SAH后小膠質(zhì)細(xì)胞大量激活,炎癥因子TNF-α、IL-1β表達(dá)增高,佐證了SAH后炎癥反應(yīng)的存在。IL-10是人體內(nèi)重要的抗炎細(xì)胞因子,在急性腦損傷中發(fā)揮重要作用。有研究證實(shí)IL-10在大腦中動(dòng)脈栓塞所致的缺血性卒中后表達(dá)上調(diào)[13];而在IL-10缺陷的小鼠中,炎癥反應(yīng)加劇,卒中后梗死面積增大[14]。創(chuàng)傷性顱腦損傷后,IL-10 mRNA含量迅速升高,IL-10蛋白表達(dá)也在損傷后2 h升高,而局部給予IL-10后可減少星形膠質(zhì)細(xì)胞的激活和TNF-α的釋放,還能減少損傷體積和腦水腫[15];還有研究證實(shí)腦出血后IL-10表達(dá)亦可上調(diào),而腦出血相關(guān)臨床研究表明,血漿中高水平的IL-10與血腫擴(kuò)張、再出血及不良預(yù)后有關(guān)[16]。

    圖3 SAH后神經(jīng)功能缺陷評(píng)分

    圖4 IL-10緩解SAH后皮層損傷(a:尼氏染色,b:HE染色,比例尺=73 μm)

    圖5 IL-10減少SAH后TNF-α、IL-1β的表達(dá)

    圖6 IL-10減少SAH后小膠質(zhì)細(xì)胞激活(比例尺=73 μm)

    這些研究表明IL-10在急性腦損傷中的作用存在差異,在缺血性卒中和顱腦損傷中起到一定的保護(hù)作用,而在腦出血中提示不良預(yù)后。但相關(guān)研究表明SAH后基底動(dòng)脈、腦脊液及大腦皮質(zhì)中IL-10 mRNA表達(dá)卻未見(jiàn)明顯變化[17],SAH相關(guān)臨床研究中亦發(fā)現(xiàn)血漿和腦脊液中IL-10蛋白水平無(wú)明顯變化[18],這些與本文研究結(jié)果一致。但I(xiàn)L-10在不同原因損傷后表達(dá)差異的機(jī)制尚不清楚,有待進(jìn)一步的研究。

    IL-10是小膠質(zhì)細(xì)胞替代激活的一種標(biāo)記,參與抗炎作用,IL-10可能通過(guò)參與促進(jìn)小膠質(zhì)細(xì)胞的替代激活和誘導(dǎo)SOCS3從而緩解炎癥反應(yīng)。但SAH損傷后,腦組織中內(nèi)源性的IL-10表達(dá)未見(jiàn)明顯增高,可能未達(dá)到引起小膠質(zhì)細(xì)胞替代激活的水平[19],因此SAH后炎癥反應(yīng)增強(qiáng),主要表現(xiàn)在小膠質(zhì)細(xì)胞的大量增生并釋放炎癥因子,如TNF-α、IL-1β等。SAH后早期經(jīng)側(cè)腦室注射IL-10后,可見(jiàn)小膠質(zhì)細(xì)胞活化減少,炎性因子釋放減少,且神經(jīng)元損傷程度的減輕,炎癥反應(yīng)表現(xiàn)明顯減弱,說(shuō)明IL-10可能通過(guò)降低小膠質(zhì)細(xì)胞活化、減少炎癥因子釋放等途徑,改善SAH后EBI導(dǎo)致的神經(jīng)元損傷及神經(jīng)功能障礙。

    綜上所述,內(nèi)源性IL-10在SAH后表達(dá)未見(jiàn)明顯變化,給予外源性IL-10后可緩解SAH引起的炎癥反應(yīng),并能減輕SAH后EBI導(dǎo)致的神經(jīng)元損傷,改善神經(jīng)功能障礙,這為SAH后神經(jīng)損傷的抑制炎癥反應(yīng)治療提供了理論依據(jù),仍需通過(guò)進(jìn)一步的實(shí)驗(yàn)來(lái)證實(shí)炎癥機(jī)制在SAH后小膠質(zhì)細(xì)胞活化與神經(jīng)元損傷之間的作用機(jī)制。

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