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    辣木籽抗氧化肽的制備及其對(duì)氧化損傷紅細(xì)胞的保護(hù)作用

    2019-05-05 06:56:44林戀竹朱啟源趙謀明
    食品科學(xué) 2019年7期
    關(guān)鍵詞:多肽水解組分

    林戀竹,朱啟源,趙謀明*

    (華南理工大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院,廣東 廣州 510640)

    辣木(Moringa oleifera)是多年生熱帶落葉喬木,廣泛種植于熱帶和亞熱帶地區(qū),在我國(guó)云南、廣東、廣西、福建、臺(tái)灣等地區(qū)均有大面積種植,資源量極其豐富[1]。辣木籽含有豐富的脂質(zhì)(質(zhì)量分?jǐn)?shù)30.8%~41.2%)和蛋白質(zhì)(質(zhì)量分?jǐn)?shù)29.4%~38.3%)[2]。目前,針對(duì)辣木籽油高效提取方法的研究較多,取得了較好的進(jìn)展[3-6]。辣木籽蛋白中Val、Leu、Ile、His等多種氨基酸的含量接近或遠(yuǎn)高于聯(lián)合國(guó)糧食及農(nóng)業(yè)組織/世界衛(wèi)生組織標(biāo)準(zhǔn)模式譜,可作為優(yōu)質(zhì)蛋白質(zhì)資源加以開(kāi)發(fā)[7-9]。然而,目前針對(duì)辣木籽蛋白的精深加工技術(shù)及其在食品工業(yè)中的應(yīng)用研究較少。

    活性氧(reactive oxygen species,ROS)所造成的氧化損傷會(huì)導(dǎo)致衰老、動(dòng)脈粥樣硬化、糖尿病、癌癥等的發(fā)生發(fā)展[10-11]?!敖】抵袊?guó)2030”已列入國(guó)家發(fā)展戰(zhàn)略,保健食品產(chǎn)業(yè)是健康戰(zhàn)略的重要組成部分,高品質(zhì)的保健食品具有巨大的市場(chǎng)需求。因此,以辣木籽為原料通過(guò)食品加工技術(shù)開(kāi)發(fā)具有抗氧化活性的生物活性肽用作保健食品配料,可為辣木籽肽作為高效抗氧化劑應(yīng)用于保健食品提供理論與方法指導(dǎo)。

    本研究采用酶法制備辣木籽水解物,以抗氧化活性為跟蹤指標(biāo),通過(guò)乙醇分級(jí)沉淀和大孔樹(shù)脂柱層析法定向制備辣木籽抗氧化肽,構(gòu)建模擬胃、腸道消化模型,評(píng)價(jià)辣木籽抗氧化肽胃、腸道消化物的氧自由基吸收能力(oxygen radical absorbance capacity,ORAC),解析消化物中多肽組成與結(jié)構(gòu),研究經(jīng)胃、腸道消化后的辣木籽抗氧化肽對(duì)氧化損傷紅細(xì)胞溶血的抑制作用,基于生物可接受度評(píng)價(jià)辣木籽肽的抗氧化活性。

    1 材料與方法

    1.1 材料、實(shí)驗(yàn)動(dòng)物與試劑

    辣木籽 廣東華谷辣木生物科技有限公司。

    大鼠 廣州中醫(yī)藥大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心(許可證號(hào):SCXK(粵)2013-0020)。

    N S 3 7 0 7 1蛋白酶 丹麥諾維信公司;熒光素鈉、2,2’-偶氮二異丁脒鹽酸鹽(2,2’-azobis(2-methylpropionamidine) dihydrochloride,AAPH)、水溶性VE(Trolox)、1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl,DPPH)、谷胱甘肽(glutathione,GSH) 美國(guó)Sigma公司;pH 7.4 basic磷酸鹽緩沖液(phosphate buffered solution,PBS)(1×) 美國(guó)Thermo Scientific公司;XAD-16大孔樹(shù)脂 北京慧德易科技有限責(zé)任公司;丙二醛(malondialdehyde,MDA)試劑盒、超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)試劑盒、氰化高鐵血紅蛋白試劑盒 南京建成生物工程研究所;純肽(Gln-Met、Leu-Phe) 吉爾生化(上海)有限公司;其他試劑均為國(guó)產(chǎn)分析純。

    1.2 儀器與設(shè)備

    Sorvall ST16R高速冷凍離心機(jī)、Varioskan Flash全波長(zhǎng)掃描多功能讀數(shù)儀 美國(guó)Thermo Scientific公司;Alpha 1-4 LD冷凍干燥機(jī) 德國(guó)Christ公司;A300全自動(dòng)氨基酸分析儀 德國(guó)GE Healthcare公司;Impact II四極桿-飛行時(shí)間串聯(lián)質(zhì)譜(quadrupole time of fl ight-tandem mass spectrometry,QTOF-MS/MS)儀 德國(guó)Bruker公司;ACQUITY UPLC I-Class超高效液相色譜(ultra performance liquid chromatography,UPLC)儀 美國(guó)Waters公司;KND-2C凱氏定氮儀 上海纖檢儀器有限公司;UV-754紫外-可見(jiàn)分光光度計(jì) 上海精密科學(xué)儀器有限公司。

    1.3 方法

    1.3.1 辣木籽抗氧化肽的制備

    1.3.1.1 酶法制備辣木籽水解物

    辣木籽干燥后脫殼,粉碎過(guò)80 目篩,稱(chēng)取辣木籽粉1 600 g,100 ℃蒸汽處理20 min,按料液比1∶6加入蒸餾水,攪拌均勻。用1.0 mol/L NaOH溶液調(diào)節(jié)混懸液至pH 8.0,60 ℃攪拌1 h。調(diào)節(jié)至pH 8.0,加入辣木籽粉質(zhì)量分?jǐn)?shù)2.5%的NS37071蛋白酶,55 ℃酶解24 h后沸水浴中滅活15 min,冷卻至室溫,10 000×g離心30 min,用移液槍吸除油層后取上清液,55 ℃減壓濃縮,取100 mL冷凍干燥,得辣木籽水解物。收集剩余的濃縮液,備用。

    1.3.1.2 乙醇分級(jí)沉淀

    在1.3.1.1節(jié)濃縮液中加入一定體積的無(wú)水乙醇,使體系中乙醇的最終體積分?jǐn)?shù)為20%,攪拌均勻后4 ℃靜置12 h,4 500×g離心30 min,得到沉淀物1和上清液1,將沉淀物1溶于水中,55 ℃減壓濃縮去除乙醇,冷凍干燥,得20%(體積分?jǐn)?shù),下同)醇沉組分。將上清液1減壓濃縮,加入無(wú)水乙醇,使體系中乙醇的最終體積分?jǐn)?shù)為40%,攪拌均勻,4 ℃靜置12 h,4 500×g離心30 min,制得沉淀物2和上清液2,將沉淀物2溶于水中,55 ℃減壓濃縮去除乙醇,冷凍干燥,得40%醇沉組分。以此類(lèi)推,分別制得60%醇沉組分、80%醇沉組分,收集剩余的上清液,55 ℃減壓濃縮,冷凍干燥,得上清液組分。

    1.3.1.3 大孔樹(shù)脂柱層析

    取大孔樹(shù)脂XAD-16加入無(wú)水乙醇浸泡12 h,溶脹后抽濾去除乙醇,加入蒸餾水反復(fù)洗滌樹(shù)脂至無(wú)醇味。加入1.0 mol/L NaOH溶液浸泡4 h,抽濾除去NaOH溶液,并用蒸餾水反復(fù)洗滌大孔樹(shù)脂直至洗滌液的pH值為7.0。加入1.0 mol/L HCl溶液浸泡4 h,抽濾除去HCl溶液,并用蒸餾水反復(fù)洗滌大孔樹(shù)脂直至洗滌液的pH值為7.0。采用濕法裝柱(2.5 cm×120 cm),上樣后將層析柱放入4 ℃層析柜中靜置12 h;在室溫下依次用蒸餾水以及體積分?jǐn)?shù)20%、40%、60%乙醇進(jìn)行動(dòng)態(tài)解吸,并控制洗脫劑流速為5 mL/min,分別收集洗脫液,55 ℃減壓濃縮除去乙醇,冷凍干燥,得到各洗脫組分。

    1.3.2 體外抗氧化活性評(píng)價(jià)

    1.3.2.1 ORAC測(cè)定

    在96 孔板各微孔中分別加入20 μL樣品或75 mmol/L PBS(pH 7.4)(空白對(duì)照),加入120 μL 70 nmol/L熒光素鈉,將96 孔板置于酶標(biāo)儀中,37 ℃孵育15 min,迅速加入60 μL 40 mmol/L AAPH混勻啟動(dòng)反應(yīng)并開(kāi)始測(cè)定(初始熒光強(qiáng)度記為f0)。激發(fā)波長(zhǎng)485 nm、發(fā)射波長(zhǎng)520 nm,每1 min讀數(shù)1 次,共讀121 次(熒光強(qiáng)度記為fn,n=1,2,3,……,121)[12]。將每次讀數(shù)值連成曲線,按式(1)計(jì)算曲線下的面積(AUC)。

    配制濃度為0.02、0.04、0.06、0.08、0.10 mmol/L Trolox溶液,按以上步驟進(jìn)行測(cè)定,按式(2)計(jì)算Net AUC。以Trolox濃度為橫坐標(biāo)、Net AUC為縱坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,計(jì)算樣品的ORAC,以每克樣品與Trolox擁有相同的ORAC時(shí)相當(dāng)于Trolox的物質(zhì)的量計(jì)(μmol/g)。

    式中:AUCsample、AUCblank分別表示樣品、空白對(duì)照曲線下的面積。

    1.3.2.2 DPPH自由基清除能力測(cè)定

    吸取適宜濃度樣品溶液2 mL,加入2 mL 0.2 mmol/L DPPH-乙醇溶液,混勻,室溫避光反應(yīng)30 min,測(cè)定517 nm波長(zhǎng)處的吸光度A樣品;用2 mL無(wú)水乙醇代替樣品溶液,測(cè)定吸光度A對(duì)照;用2 mL無(wú)水乙醇代替DPPH無(wú)水乙醇溶液,測(cè)定吸光度按式(3)計(jì)算DPPH自由基清除率。

    配制濃度為0.02、0.04、0.06、0.08、0.10 mmol/L Trolox溶液,按以上步驟進(jìn)行測(cè)定,計(jì)算DPPH自由基清除率,以Trolox濃度為橫坐標(biāo)、DPPH自由基清除率為縱坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,計(jì)算樣品的DPPH自由基清除能力,以每克樣品與Trolox擁有相同的DPPH自由基清除能力時(shí)相當(dāng)于Trolox的物質(zhì)的量計(jì)(μmol/g)。

    1.3.3 蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)的測(cè)定

    蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)采用GB 5009.5—2016《食品安全國(guó)家標(biāo)準(zhǔn) 食品中蛋白質(zhì)的測(cè)定》凱氏定氮法進(jìn)行測(cè)定。

    1.3.4 水解氨基酸的測(cè)定

    在安瓿瓶中加入10 mg樣品和5 mL 6 mol/L HCl溶液,密封,110 ℃水解24 h,冷卻、過(guò)濾、干燥。加入2 mL乙酸鈉鹽緩沖液(pH 2.0)溶解,過(guò)0.22 μm濾膜,采用自動(dòng)氨基酸分析儀測(cè)定水解氨基酸組成與質(zhì)量分?jǐn)?shù)[14]。

    1.3.5 基于生物可接受度評(píng)價(jià)辣木籽肽的抗氧化活性

    1.3.5.1 模擬胃、腸道消化辣木籽抗氧化肽

    配制10 mg/mL樣品溶液,用1.0 mol/L鹽酸溶液調(diào)節(jié)至pH 2.0,加入樣品質(zhì)量分?jǐn)?shù)2%的胃蛋白酶,攪拌均勻,37 ℃孵育2 h;用1.0 mol/L NaHCO3溶液調(diào)節(jié)至pH 5.3,接著用1.0 mol/L NaOH溶液調(diào)節(jié)至pH 7.5,加入樣品質(zhì)量分?jǐn)?shù)2%的胰酶,攪拌均勻,37 ℃孵育2 h。每隔0.5 h取樣,沸水浴中滅活,冷卻,6 000×g離心15 min,取上清液,測(cè)定ORAC,以每克樣品蛋白與Trolox擁有相同的ORAC時(shí)相當(dāng)于Trolox的物質(zhì)的量計(jì)(μmol/g)。取消化4 h的消化物離心,取上清液冷凍干燥,制得辣木籽抗氧化肽消化物[15]。

    1.3.5.2 UPLC-QTOF-MS/MS解析消化物中多肽組成與結(jié)構(gòu)

    UPLC條件:ACQUITY UPLC T3柱(100 mm×2.1 mm,1.8 μm),柱溫35 ℃,流速200 μL/min。洗脫劑由體積分?jǐn)?shù)0.1%甲酸溶液(A)和乙腈(B)組成,梯度洗脫程序:0 min,70% A;0~6 min,70%~40% A;6~7 min,40%~20% A;7~8 min,20%~70% A;8~10 min,70% A。進(jìn)樣量1 μL。MS條件:掃描范圍m/z 50~2 000;正離子模式;毛細(xì)管電壓3 500 V;霧化器壓力5×104Pa;干燥氣(氮?dú)猓┝魉? L/min;干燥器溫度200 ℃;掃描模式:auto MS/MS模式。利用Data Analysis 4.3軟件解析多肽結(jié)構(gòu)。

    1.3.5.3 辣木籽抗氧化肽胃、腸道消化物對(duì)氧化損傷紅細(xì)胞的保護(hù)作用

    大鼠紅細(xì)胞懸液配制:取健康大鼠腹主動(dòng)脈血液,4 ℃、1 200×g離心10 min,去除上層血漿和中部的白膜層(血小板、淋巴細(xì)胞、單核細(xì)胞和中性粒細(xì)胞),用預(yù)冷的pH 7.4 basic PBS(1×)洗滌底層紅細(xì)胞,并配制成質(zhì)量分?jǐn)?shù)20%大鼠紅細(xì)胞懸液[16]。

    溶血率測(cè)定:取200 μL質(zhì)量分?jǐn)?shù)20%紅細(xì)胞懸液,分別加入10 μL終質(zhì)量濃度為250 μg/mL(低劑量,L)、625 μg/mL(中劑量,M)、1 250 μg/mL(高劑量,H)的樣品溶液或生理鹽水,37 ℃預(yù)保護(hù)30 min;加入200 μL 400 mmol/L AAPH溶液或生理鹽水,37 ℃孵育1.5 h,輕輕吹打,從中吸取兩份150 μL反應(yīng)液:一份加入450 μL生理鹽水,混勻后4 ℃ 1 200×g離心10 min,取上清液,在540 nm波長(zhǎng)處測(cè)定吸光度A;另一份加入450 μL雙蒸水,混勻后4 ℃ 1 200×g離心10 min,取上清液,在540 nm波長(zhǎng)處測(cè)定吸光度A0,以不加AAPH、不加樣品為正常組,以加AAPH、不加樣品為模型組。按式(4)計(jì)算溶血率。

    高鐵血紅蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)、MDA含量、SOD活力測(cè)定:取紅細(xì)胞懸液,用pH 7.4 basic PBS(1×)洗滌并4 ℃ 1 200×g離心10 min 2 次,棄去上清液,加入預(yù)冷的雙蒸水使紅細(xì)胞完全溶血,4 ℃ 8 000×g離心10 min,收集上清液,按照試劑盒說(shuō)明書(shū)分別測(cè)定高鐵血紅蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)、MDA含量、SOD活力。其中,MDA含量、SOD活力均以血紅蛋白計(jì)。

    1.4 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)與分析

    2 結(jié)果與分析

    2.1 辣木籽抗氧化肽的制備

    2.1.1 辣木籽水解物的酶法制備與乙醇分級(jí)沉淀純化

    表1 辣木籽水解物、乙醇分級(jí)沉淀組分和大孔樹(shù)脂柱層析組分的蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)和抗氧化活性Table 1 Protein contents and antioxidant activities of Moringa oleifera seed hydrolysate and fractions obtained by ethanol fractional precipitation and macroporous resin column chromatography

    辣木籽水解物蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)為60.37%(表1),且呈現(xiàn)一定的抗氧化活性。因此,有必要以抗氧化活性為跟蹤指標(biāo)對(duì)其進(jìn)行分離純化,定向制備出純度高、活性強(qiáng)的抗氧化肽。

    乙醇通過(guò)特異性結(jié)合多肽,改變多肽結(jié)構(gòu)和相互作用性質(zhì),沉淀多肽,不同體積分?jǐn)?shù)乙醇溶液與多肽的相互作用不同,從而將具有不同結(jié)構(gòu)特性的多肽進(jìn)行分離[17]。本研究首先采用乙醇分級(jí)沉淀法對(duì)辣木籽水解物進(jìn)行初級(jí)分離,得到5 個(gè)不同的乙醇分級(jí)沉淀組分(表1)。結(jié)果表明:各乙醇分級(jí)沉淀組分的抗氧化活性均高于辣木籽水解物,說(shuō)明辣木籽水解物中各組分存在拮抗作用,影響了其抗氧化活性的發(fā)揮。乙醇分級(jí)沉淀法可將各組分有效分離,提升辣木籽水解物的抗氧化活性。其中,60%醇沉組分蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)最高,且抗氧化活性較高,因此選取該組分進(jìn)行下一步分離純化。

    2.1.2 大孔樹(shù)脂柱層析法分離純化

    大孔樹(shù)脂具有安全性高、選擇性好、吸附速度快等優(yōu)點(diǎn),受到廣泛關(guān)注和認(rèn)同[18-19]。本團(tuán)隊(duì)前期采用大孔樹(shù)脂柱層析法對(duì)醬油中呈鮮味肽進(jìn)行高效分離[20],說(shuō)明其是一種高效分離純化多肽的方法。本研究采用XAD-16樹(shù)脂柱層析法分離60%醇沉組分,獲得4 個(gè)洗脫組分(表1)。結(jié)果表明:所得4 個(gè)洗脫組分抗氧化活性存在顯著差異,以60%乙醇洗脫組分蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)最高(92.84%),抗氧化活性最強(qiáng)(DPPH自由基清除能力和ORAC分別為39.95、1 454.57 μmol/g,分別是辣木籽水解物的17.0 倍和8.5 倍)。說(shuō)明XAD-16樹(shù)脂柱層析法可對(duì)60%醇沉組分中抗氧化肽進(jìn)行有效分離,得到60%乙醇洗脫組分(下稱(chēng)辣木籽抗氧化肽)。

    2.1.3 氨基酸組成分析

    表2 辣木籽水解物和辣木籽抗氧化肽的氨基酸組成分析Table 2 Amino acid composition of Moringa oleifera seed hydrolysate and antioxidant peptide

    多肽的抗氧化活性與其氨基酸組成密切相關(guān),含有抗氧化氨基酸(Tyr、Cys、His、Met)、疏水性氨基酸(Leu、Ile、Pro、Phe等)的多肽能夠有效清除自由基[21-23]。本實(shí)驗(yàn)對(duì)比研究了辣木籽水解物和辣木籽抗氧化肽的氨基酸組成與質(zhì)量分?jǐn)?shù)(表2)。結(jié)果表明:辣木籽水解物中,酸性氨基酸和疏水性氨基酸的質(zhì)量分?jǐn)?shù)較高(共占總氨基酸的59.80%)。辣木籽抗氧化肽富含抗氧化氨基酸、疏水氨基酸(共占總氨基酸的54.37%),具有更強(qiáng)的抗氧化活性,說(shuō)明這兩類(lèi)氨基酸對(duì)辣木籽肽的抗氧化活性有重要貢獻(xiàn)。

    2.2 基于生物可接受度評(píng)價(jià)辣木籽肽的抗氧化活性

    生物可接受度是營(yíng)養(yǎng)物可被機(jī)體吸收利用的程度,指的是營(yíng)養(yǎng)物直接進(jìn)入人體的消化系統(tǒng)并可被人體胃、腸道溶解的部分,是評(píng)價(jià)營(yíng)養(yǎng)有效性的一個(gè)關(guān)鍵指標(biāo)[24-26]。

    蛋白質(zhì)和多肽進(jìn)入人體后,被胃、腸道中的多種酶(胃蛋白酶、胰蛋白酶、胰凝乳蛋白酶和上皮細(xì)胞表面的肽酶)水解,所釋放的短肽被吸收并通過(guò)血液循環(huán)到達(dá)靶器官[27-29]。因此,基于生物可接受度評(píng)價(jià)辣木籽肽的抗氧化活性,可為辣木籽肽作為高效抗氧化劑應(yīng)用于保健食品提供理論與方法指導(dǎo)。

    2.2.1 模擬胃、腸道消化對(duì)辣木籽抗氧化肽ORAC的影響

    圖1 模擬胃、腸道消化對(duì)辣木籽抗氧化肽ORAC的影響Fig. 1 Effect of simulated gastrointestinal digestion on ORAC of antioxidant peptide

    如圖1所示,辣木籽抗氧化肽經(jīng)過(guò)胃、腸道消化后ORAC呈現(xiàn)上升趨勢(shì)。說(shuō)明胃、腸道酶系可進(jìn)一步水解辣木籽抗氧化肽,生成抗氧化活性更強(qiáng)的片段。

    2.2.2 UPLC-QTOF-MS/MS解析消化物中多肽組成與結(jié)構(gòu)

    從辣木籽抗氧化肽消化物中共鑒定出11 條二肽和5 條三肽(表3)。其中含有抗氧化氨基酸的肽有5 條(Gln-His(QH)、Cys-Pro(CP)、Gln-Met(QM)、Gln-Arg(QR)、Gln-Met-Phe(QMF)),含有疏水性氨基酸的肽有9 條(Pro-Arg(PR)、Ala-Arg(AR)、Gly-Leu(Ile)(GL(I))、Val-Glu(VE)、Leu(Ile)-Gln(L(I)Q)、Leu(Ile)-Phe(L(I)F)、Val-Leu(Ile)(VL(I))、Ala-Leu(Ile)-Pro(AL(I)P)、Pro-Leu(Ile)-Gln(PL(I)Q)),既含有抗氧化氨基酸又含有疏水性氨基酸的肽有2 條(Ser-Ala-Cys(SAC)、Trp-Val-His(WVH))。由此可見(jiàn),消化物中含有較多容易吸收[30]且具有潛在抗氧化活性的短肽。

    表3 UPLC-QTOF-MS/MS分離鑒定辣木籽抗氧化肽胃、腸道消化物中多肽組成與結(jié)構(gòu)Table 3 Peptide pro filing of gastrointestinal digest of antioxidant peptide by UPLC-QTOF-MS/MS

    2.2.3 辣木籽抗氧化肽胃、腸道消化物對(duì)氧化損傷紅細(xì)胞的保護(hù)作用

    本研究對(duì)比了辣木籽抗氧化肽胃、腸道消化物、1 條含抗氧化氨基酸的二肽(Gln-Met)、1 條含疏水性氨基酸的二肽(Leu-Phe)和GSH對(duì)氧化損傷紅細(xì)胞的保護(hù)作用(圖2)。結(jié)果表明:經(jīng)AAPH損傷后,紅細(xì)胞發(fā)生溶血,溶血率為48.85%,與正常組(5.28%)相比具有顯著性差異(P<0.05)(圖2a)。辣木籽抗氧化肽胃、腸道消化物、Gln-Met、Leu-Phe和GSH可顯著抑制AAPH損傷紅細(xì)胞發(fā)生溶血,且隨多肽質(zhì)量濃度增加溶血率顯著降低,4 種多肽對(duì)氧化損傷紅細(xì)胞的保護(hù)作用從強(qiáng)到弱依次是Gln-Met=GSH>辣木籽抗氧化肽>Leu-Phe。

    圖2 辣木籽抗氧化肽胃、腸道消化物對(duì)氧化損傷紅細(xì)胞的保護(hù)作用Fig. 2 Protective effect of gastrointestinal digest of antioxidant peptide on oxidatively damaged erythrocytes

    AAPH誘導(dǎo)產(chǎn)生的ROS可引起細(xì)胞中脂質(zhì)過(guò)氧化,上調(diào)MDA含量(圖2b)。紅細(xì)胞經(jīng)AAPH損傷后,MDA含量為5.71 nmol/mg,是正常組(2.47 nmol/mg)的2.31 倍。4 種多肽可顯著下調(diào)氧化損傷紅細(xì)胞中MDA含量,且隨多肽質(zhì)量濃度增加胞內(nèi)MDA含量顯著下降,說(shuō)明4 種多肽可有效清除ROS,下調(diào)MDA含量。其中,Gln-Met在低、中、高3 個(gè)劑量下均可顯著降低胞內(nèi)MDA含量至正常組水平。

    在此基礎(chǔ)上,本研究對(duì)比了4 種多肽對(duì)氧化損傷紅細(xì)胞中SOD活力的影響(圖2c)。結(jié)果表明:模型組SOD活力顯著高于正常組,說(shuō)明ROS的過(guò)量產(chǎn)生激活了細(xì)胞中酶抗氧化防御系統(tǒng),使得SOD活力升高[31-32]。4 種多肽可在一定程度上下調(diào)SOD活力,說(shuō)明這4 種多肽均能有效降低細(xì)胞內(nèi)ROS水平。少量ROS不足以激活酶抗氧化防御系統(tǒng),因此,減少細(xì)胞中酶抗氧化防御系統(tǒng)對(duì)AAPH所致氧化應(yīng)激的應(yīng)答可使SOD活力下降。

    3 結(jié) 論

    采用酶法制備辣木籽水解物,通過(guò)乙醇分級(jí)沉淀和大孔樹(shù)脂柱層析法定向制備辣木籽抗氧化肽,得到了高純度(蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)為92.84%)、富含抗氧化氨基酸(DPPH自由基清除能力、ORAC分別為39.95、1 454.57 μmol/g,分別為辣木籽水解物的17.0 倍和8.5 倍)、疏水性氨基酸的辣木籽抗氧化肽。

    基于生物可接受度評(píng)價(jià)辣木籽肽的抗氧化活性實(shí)驗(yàn)中,辣木籽抗氧化肽經(jīng)模擬胃、腸道消化后,抗氧化活性增強(qiáng),釋放出更多短肽段,包括11 條二肽和5 條三肽。辣木籽抗氧化肽消化物、Gln-Met、Leu-Phe通過(guò)清除胞內(nèi)ROS,下調(diào)MDA含量與SOD活力,拮抗AAPH所致氧化應(yīng)激,有效抑制氧化損傷紅細(xì)胞發(fā)生溶血。辣木籽抗氧化肽具有很強(qiáng)的自由基清除能力,且生物利用度高,可以作為天然抗氧化劑用于保健食品。

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