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    清達(dá)顆粒對(duì)血管緊張素Ⅱ誘導(dǎo)大鼠血管平滑肌細(xì)胞增殖和遷移的影響

    2019-04-29 01:20:50李瓊瑜陳友琴ThomasJosephSFERRA褚劍鋒
    福建中醫(yī)藥 2019年2期
    關(guān)鍵詞:培養(yǎng)箱劃痕培養(yǎng)基

    余 娜 ,李瓊瑜 ,陳友琴 ,4,Thomas Joseph SFERRA,4,褚劍鋒 ,2,3,林 珊 ,3,彭 軍 ,2,3

    (1.福建中醫(yī)藥大學(xué)中西醫(yī)結(jié)合研究院,福建 福州 350122;2.福建省中西醫(yī)結(jié)合老年性疾病重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,福建 福州 350122;3.福建中醫(yī)藥大學(xué)陳可冀學(xué)術(shù)思想傳承工作室,福建 福州 350122;4.凱斯西儲(chǔ)大學(xué)醫(yī)學(xué)院,美國(guó) 克利夫蘭 44106)

    動(dòng)脈血管重構(gòu)是高血壓靶器官損害的病理過(guò)程,控制血壓,改善動(dòng)脈血管重構(gòu),是防治高血壓并發(fā)癥的基礎(chǔ)[1]。血管重構(gòu)是一個(gè)動(dòng)態(tài)過(guò)程,包括血管平滑肌細(xì)胞(VSMCs)的增殖、遷移、凋亡和細(xì)胞外基質(zhì)合成、降解、重排等一系列過(guò)程。VSMCs的異常增殖和遷移引起的血管平滑肌變厚、收縮力增加和血管順應(yīng)性下降,導(dǎo)致血壓明顯升高[2]。腎素-血管緊張素-醛固酮系統(tǒng)(RAAS)在高血壓的發(fā)生發(fā)展和終末器官損害中起重要作用[3]。血管緊張素Ⅱ(AngⅡ)作為RAAS中血壓和心血管穩(wěn)態(tài)的主要生理調(diào)節(jié)因子,能夠介導(dǎo)VSMCs活化、增殖和遷移等多種反應(yīng),進(jìn)一步引起血管平滑肌變厚,血管收縮力及阻力增加,血壓升高[4-6],因此,抑制 AngⅡ誘導(dǎo)的 VSMCs異常增殖和遷移對(duì)防治高血壓具有重要意義。

    清達(dá)顆粒(QDG)化裁自清眩降壓湯,是陳可冀院士60余年防治高血壓的臨床專(zhuān)方,主治新發(fā)高血壓或高血壓前期陽(yáng)亢證患者(肝火上炎、肝陽(yáng)上亢證等),臨床療效穩(wěn)定、可靠。課題組前期研究證實(shí):清眩降壓湯可顯著降低自發(fā)性高血壓大鼠的血壓,參與調(diào)控高血壓引起的血管重構(gòu)[7-8]。為了探討清眩降壓湯化裁方QDG是否參與調(diào)控高血壓引起的血管重構(gòu),本文研究了QDG對(duì)AngⅡ誘導(dǎo)VSMCs增殖和遷移的影響,以期為QDG臨床應(yīng)用提供進(jìn)一步的理論依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物 6只8周齡雄性SD大鼠,體重(150~200)g,由上海斯萊克實(shí)驗(yàn)動(dòng)物有限責(zé)任公司提供,實(shí)驗(yàn)動(dòng)物許可證號(hào):SCXK(滬)2017-0005。

    1.2 實(shí)驗(yàn)藥物 清達(dá)顆粒組成:天麻12 g,鉤藤10 g(后下),黃芩6 g,蓮子心 5 g,由江陰天江藥業(yè)有限公司生產(chǎn),批號(hào):1704306。

    1.3 主要試劑 DMEM高糖培養(yǎng)基、胎牛血清(FBS)、雙抗(青霉素、鏈霉素)、0.25%胰蛋白酶(trypsin)購(gòu)自美國(guó)Gibco公司;磷酸鹽緩沖液(PBS)購(gòu)自美國(guó)Hyclone 公司;AngⅡ干粉(美國(guó) Sigma 公司);Hoechst染色液(南京凱基生物科技有限公司);α-SM-actin抗體(美國(guó)Abcam公司);CCK-8試劑(日本同仁化學(xué)公司);結(jié)晶紫(北京索萊寶科技有限公司)。

    1.4 主要儀器 超凈工作臺(tái)(蘇州凈化設(shè)備公司);Forma系列CO2培養(yǎng)箱(美國(guó)Thermo公司);Countes全自動(dòng)細(xì)胞計(jì)數(shù)儀(美國(guó)Life Technologies公司);倒置顯微鏡系統(tǒng)(德國(guó)Leica儀器有限公司);ECLIPSE Ti-DH型熒光倒置顯微鏡(日本尼康公司)。

    1.5 實(shí)驗(yàn)方法

    1.5.1 大鼠胸主動(dòng)脈VSMCs原代培養(yǎng)及鑒定 采用組織貼塊法。在無(wú)菌操作下取出大鼠胸主動(dòng)脈,在DMEM高糖培養(yǎng)基中剝離外膜結(jié)締組織,剖開(kāi)血管,輕輕刮去內(nèi)皮細(xì)胞,剝離出來(lái)的中膜用眼科剪剪成約1 mm3左右的組織塊,均勻地平鋪于培養(yǎng)瓶中;瓶底朝上,瓶?jī)?nèi)加入含20%胎牛血清的DMEM高糖培養(yǎng)基,放置培養(yǎng)箱培養(yǎng),1 h后將培養(yǎng)瓶翻正,使組織塊完全浸泡在培養(yǎng)液中;靜止培養(yǎng)5 d后換液,于倒置顯微鏡下觀(guān)察細(xì)胞形態(tài)及生長(zhǎng)狀況。VSMCs采用表型標(biāo)志蛋白α-SM-actin進(jìn)行免疫熒光染色鑒定,取3~6代的VSMCs進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。

    1.5.2 實(shí)驗(yàn)分組 將VSMCs分為:① 對(duì)照組:未加入 AngⅡ及 QDG;② AngⅡ組;③ AngⅡ+QDG 0.125 mg/mL 組;④ AngⅡ+QDG 0.25 mg/mL 組;⑤ AngⅡ+QDG 0.5 mg/mL組。以上②~⑤組AngⅡ的濃度均為10-6mol/L。

    1.5.3 CCK-8法檢測(cè)細(xì)胞活力 在96孔板中接種細(xì)胞,每孔加入3×103個(gè)細(xì)胞,每組做6個(gè)復(fù)孔;培養(yǎng)24 h后,用無(wú)血清的DMEM饑餓24 h,按以上分組給藥干預(yù);在培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h后,配制含10%CCK-8的空白培養(yǎng)基以換液形式加入,4 h后終止培養(yǎng),充分振蕩混勻后在全自動(dòng)酶標(biāo)儀450 nm波長(zhǎng)處測(cè)定吸光度值(A值)。根據(jù)公式計(jì)算:

    細(xì)胞增殖率/%=[AngⅡ組 A值/(對(duì)照組 A值-1)]×100%

    細(xì)胞抑制率/%=[(1-AngⅡ+QDG組A值)/AngⅡ組A值]×100%

    1.5.4 劃痕實(shí)驗(yàn)檢測(cè)劃痕損傷修復(fù) 在6孔板中接種細(xì)胞,每孔加入3×105個(gè)細(xì)胞,每組做3個(gè)復(fù)孔;當(dāng)匯合度達(dá)到80%~90%時(shí),用無(wú)血清的DMEM饑餓24 h,進(jìn)行劃痕;隨后吸出原培養(yǎng)基,用PBS清洗3遍,最后一遍PBS保留不吸出,進(jìn)行拍照,記為0 h;吸棄PBS,按以上分組給藥干預(yù),放入培養(yǎng)箱繼續(xù)培養(yǎng),6、12、24 h隨機(jī)取6個(gè)視野,在倒置顯微鏡下進(jìn)行觀(guān)察拍照。

    1.5.5 Transwell遷移分析 在6孔板中接種細(xì)胞,每孔加入3×105個(gè)細(xì)胞,每組做3個(gè)復(fù)孔;培養(yǎng)24 h后,用無(wú)血清的DMEM饑餓24 h,按以上分組給藥干預(yù)24 h后,棄去含藥培養(yǎng)基,消化離心收集細(xì)胞,用空白培養(yǎng)基重懸并調(diào)整細(xì)胞密度為1.5×105個(gè)/mL;上室內(nèi)加入200μL重懸的細(xì)胞,下室加入700μL完全培養(yǎng)基,每組做3個(gè)復(fù)孔,放入培養(yǎng)箱中培育;24 h后棄去培養(yǎng)基,用蘸有PBS的棉簽輕輕擦拭小室膜上側(cè)的細(xì)胞,將小室膜下側(cè)的細(xì)胞用4%多聚甲醛固定和結(jié)晶紫染色,PBS洗滌后于倒置顯微鏡下隨機(jī)選取6個(gè)視野拍照。

    1.6 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 采用SPSS 22.0的統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)處理。計(jì)量資料符合正態(tài)分布以(x±s)表示,不符合正態(tài)分布以中位數(shù)表示。計(jì)量資料符合正態(tài)分布采用t檢驗(yàn),不符合正態(tài)分布采用秩和檢驗(yàn);計(jì)數(shù)資料采用χ2檢驗(yàn)。

    2 結(jié) 果

    2.1 大鼠VSMCs原代培養(yǎng) 組織塊貼壁第7天,組織塊邊緣開(kāi)始有少量細(xì)胞爬出,大部分呈長(zhǎng)梭形,小部分呈多角形或不規(guī)則形(圖1A);第10天,可見(jiàn)細(xì)胞沿著組織塊周邊大量爬出,呈放射性生長(zhǎng)(圖1B);第12天,細(xì)胞生長(zhǎng)密度達(dá)到90%左右,細(xì)胞為梭形、長(zhǎng)梭形,呈典型“峰-谷”狀生長(zhǎng)現(xiàn)象(圖1C)。結(jié)果表明原代培養(yǎng)成功。

    圖1 大鼠VSMCs原代培養(yǎng)圖片(×100)

    2.2 大鼠VSMCs免疫熒光染色并用Hoechst和表型標(biāo)志蛋白 α-SM-actin進(jìn)行免疫熒光染色顯示:藍(lán)色熒光代表細(xì)胞核 (圖2A),綠色熒光代表α-SM-actin蛋白陽(yáng)性細(xì)胞(圖2B),圖2C為細(xì)胞核和α-SM-actin蛋白陽(yáng)性細(xì)胞合并圖,陽(yáng)性細(xì)胞率達(dá)95%以上,表明所培養(yǎng)的原代細(xì)胞為VSMCs。

    2.3 QDG對(duì)AngⅡ誘導(dǎo)VSMCs增殖的影響 見(jiàn)表1。與對(duì)照組比較,AngⅡ誘導(dǎo)的VSMCs增殖能力顯著升高(P<0.01);不同濃度的QDG可以顯著抑制AngⅡ誘導(dǎo)的 VSMCs增殖(P<0.01);且隨 QDG 濃度的增加,對(duì)VSMCs增殖的抑制作用也逐漸增強(qiáng)。說(shuō)明QDG對(duì)AngⅡ誘導(dǎo)的VSMCs增殖有抑制作用,且呈劑量依賴(lài)性。

    2.4 QDG對(duì)AngⅡ誘導(dǎo)VSMCs劃痕損傷修復(fù)的影響 與對(duì)照組比較,AngⅡ能顯著增加VSMCs劃痕損傷的修復(fù),不同濃度的QDG可以顯著抑制AngⅡ誘導(dǎo)VSMCs劃痕損傷的修復(fù),見(jiàn)圖3。

    2.5 QDG對(duì)AngⅡ誘導(dǎo)VSMCs遷移的影響 見(jiàn)圖4。與對(duì)照組比較,AngⅡ能夠顯著增加VSMCs的遷移能力(P<0.01);不同濃度的QDG能夠顯著抑制AngⅡ誘導(dǎo)的 VSMCs遷移(P<0.01),且隨 QDG 濃度的增加,對(duì)VSMCs遷移的抑制作用也逐漸增強(qiáng)。說(shuō)明QDG對(duì)AngⅡ誘導(dǎo)的VSMCs遷移有抑制作用,且呈劑量依賴(lài)性。

    圖2 大鼠VSMCs免疫熒光染色圖(×100)

    表1 QDG對(duì)AngⅡ誘導(dǎo)VSMCs增殖的影響(±s)

    表1 QDG對(duì)AngⅡ誘導(dǎo)VSMCs增殖的影響(±s)

    注:與對(duì)照組比較,1) P<0.01;與 AngⅡ組比較,2) P<0.01;與 AngⅡ+QDG 0.125 mg/mL 組比較,3) P<0.01;與 AngⅡ+QDG 0.25 mg/mL 組比較,4) P<0.01。

    組別對(duì)照組AngⅡ組AngⅡ+QDG 0.125 mg/mL 組AngⅡ+QDG 0.25 mg/mL 組AngⅡ +QDG 0.5 mg/mL 組24 h 100.00±4.00 123.98±1.341)115.03±2.702)108.39±1.732)3)97.21±1.222)3)4)細(xì)胞活力/%48 h 100.00±3.73 126.68±5.621)113.25±2.262)104.61±2.942)3)99.21±2.322)3)4)

    圖3 QDG對(duì)AngⅡ誘導(dǎo)VSMCs劃痕損傷修復(fù)的影響(×100)

    3 討 論

    血壓主要是由血管張力維持的,而血管張力主要是由血管平滑肌決定的[9]。VSMCs位于血管中膜,在正常成人體內(nèi)是通過(guò)緩慢和輕度收縮來(lái)維持血管壁的張力[10]。VSMCs根據(jù)結(jié)構(gòu)和功能的不同可分為收縮型和合成型兩種表型,在胚胎時(shí)期或病理因素刺激下VSMCs由收縮型轉(zhuǎn)化為合成型,合成型的VSMCs可從中膜遷移至內(nèi)膜,并在內(nèi)膜中大量增殖,成為高血壓等血管性疾病的主要原因[11]。

    RAAS可通過(guò)調(diào)節(jié)水、電解質(zhì)平衡以及血管張力等方面在高血壓的發(fā)生發(fā)展和終末器官損害中扮演著重要的角色。AngⅡ作為腎素血管緊張素的一種重要的生物活性肽,與VSMCs上的AT1受體結(jié)合后,可通過(guò)激活多條胞內(nèi)信號(hào)通路促進(jìn)VSMCs增殖、遷移,導(dǎo)致血管壁硬化、管腔狹窄等[3,12]。 因此,抑制AngⅡ介導(dǎo)的血管平滑肌細(xì)胞增殖和遷移是緩解或降低血壓升高的重要途徑之一。

    圖4 QDG對(duì)AngⅡ誘導(dǎo)VSMCs遷移的影響

    本研究中,CCK-8檢測(cè)結(jié)果顯示:不同濃度的QDG可顯著抑制AngⅡ誘導(dǎo)的VSMCs增殖,且呈現(xiàn)明顯的劑量依賴(lài)性。VSMCs遷移是血管重構(gòu)的重要驅(qū)動(dòng)因素,劃痕實(shí)驗(yàn)是測(cè)定細(xì)胞遷移運(yùn)動(dòng)與修復(fù)能力的方法,通過(guò)體外觀(guān)察細(xì)胞是否生長(zhǎng)(修復(fù))至中央劃痕區(qū),以此判斷細(xì)胞的遷移能力。在本實(shí)驗(yàn)中,QDG對(duì)AngⅡ誘導(dǎo)的VSMCs劃痕損傷修復(fù)具有明顯的抑制作用,提示QDG可抑制AngⅡ誘導(dǎo)的VSMCs遷移能力。Transwell是通過(guò)計(jì)算相同時(shí)間內(nèi)穿過(guò)小孔膜的細(xì)胞數(shù)來(lái)反映細(xì)胞遷移能力,穿過(guò)小孔膜的細(xì)胞數(shù)越多,遷移能力越強(qiáng)。Transwell實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明:與對(duì)照組比較,AngⅡ誘導(dǎo)后有較多的VSMCs穿過(guò)小孔膜,QDG干預(yù)后,穿過(guò)小孔的VSMCs數(shù)量逐漸減少,進(jìn)一步說(shuō)明QDG能顯著降低AngⅡ誘導(dǎo)的VSMCs遷移能力。

    鑒于QDG對(duì)AngⅡ誘導(dǎo)的VSMCs增殖和遷移具有顯著作用,其相關(guān)調(diào)控機(jī)制、作用靶點(diǎn)和藥效物質(zhì)基礎(chǔ)值得進(jìn)一步研究,其結(jié)果有望為QDG的臨床運(yùn)用提供充足的實(shí)驗(yàn)依據(jù)。

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