張曦予,賀 慧,李 禎,邢 蔓,洪 波,官春云
(湖南農(nóng)業(yè)大學(xué),國家油料改良中心湖南分中心,湖南 長沙 410128)
油菜在我國種植歷史悠久,廣泛地分布在全國各地,作為重要的油料作物之一,除了食用植物油之外,其菜用、飼用、旅游觀光及藥用等潛在價(jià)值得到了持續(xù)的關(guān)注和開發(fā)利用[1]。但目前我國普遍種植的是甘藍(lán)型油菜,其生育期過長,影響“三熟制”實(shí)施,對(duì)農(nóng)民造成了嚴(yán)重的經(jīng)濟(jì)損失。研究油菜開花基因FT的分子調(diào)控機(jī)制[2],可有效縮短油菜的生育期,為稻稻油“三熟制”的實(shí)施提供理論基礎(chǔ)[3]。FT基因是開花關(guān)鍵基因,最早是在擬南芥晚花突變體中發(fā)現(xiàn)的[4]。FT基因編碼的蛋白是一種Raf激酶蛋白,屬于PEBP蛋白(磷脂酰乙醇胺結(jié)合蛋白),PEBP蛋白分布廣泛,在動(dòng)、植物、細(xì)菌、真菌中廣泛分布[5]。Abe等[6]研究發(fā)現(xiàn),F(xiàn)T基因只在葉片中特異性表達(dá)。Samach等[7]研究發(fā)現(xiàn),光周期途徑的關(guān)鍵基因CO在植物葉片中特異性調(diào)控FT基因的表達(dá),特異性表達(dá)的FT蛋白被運(yùn)輸?shù)角o尖分生組織,作用于下游基因調(diào)控植物開花。隨著現(xiàn)代生物分子學(xué)的發(fā)展,越來越多的FT基因家族的成員被發(fā)現(xiàn),比如水稻中的RFT1基因[8]和Hd3a基因[9]、麻風(fēng)樹中的JcFT基因[10]、短日照植物矮牽牛中的PnFT1基因[11]等。在擬南芥、水稻等模式植物中,大量開花相關(guān)基因被分離鑒定[12]。植物的基因表達(dá)調(diào)控主要是在轉(zhuǎn)錄水平上進(jìn)行的,受到多種順式作用元件和逆式作用元件的相互協(xié)調(diào)作用。研究順式作用元件可以探討脅迫誘導(dǎo)基因的表達(dá)機(jī)制[13]。
隨著對(duì)啟動(dòng)子研究的不斷深入,關(guān)于克隆啟動(dòng)子的技術(shù)越來越多,目前最常用的技術(shù)包括普通PCR、反向PCR、錨定PCR、MADE法、TALL-PCR等。由于條件的限制,普通PCR技術(shù)通常建立在完成全基因組測序的物種上,因?yàn)槠湓趩?dòng)子序列是已知的。想要獲得啟動(dòng)子的全序列,一般只需要設(shè)計(jì)出合適的引物,便可獲得啟動(dòng)子的全長。但是目前絕大多數(shù)物種的全基因組測序未完成,因此,利用普通PCR獲得啟動(dòng)子序列是非常困難的。其余PCR技術(shù)皆是用來擴(kuò)增已知序列側(cè)翼的未知片段,在分子生物學(xué)領(lǐng)域應(yīng)用較為廣泛[14]。
本研究根據(jù)甘藍(lán)型油菜全基因組序列,利用PCR技術(shù)得到甘藍(lán)型油菜A7-FT基因啟動(dòng)子序列。利用啟動(dòng)子在線預(yù)測軟件預(yù)測其功能與結(jié)構(gòu),根據(jù)其預(yù)測的順式元件的分布,從5′端開始缺失的方式獲得5個(gè)不同片段長度的啟動(dòng)子序列。構(gòu)建含不同片段長度的啟動(dòng)子的GUS基因表達(dá)載體,利用農(nóng)桿菌介導(dǎo)擬南芥,得到T2幼苗,經(jīng)過GUS染色與脫色,探討A7-FT基因啟動(dòng)子的功能,為研究甘藍(lán)型油菜開花調(diào)控機(jī)制提供理論基礎(chǔ)。
甘藍(lán)型油菜湘油15由湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)油料研究所提供。Trans T1大腸桿菌感受態(tài)從北京全式金生物技術(shù)有限公司購買,pMD18-T載體從TaKaRa公司購買,野生型擬南芥種子與農(nóng)桿菌菌株GV3101為國家油料改良中心湖南分中心提供。人工土=蛭石∶珍珠巖∶營養(yǎng)土=1∶1∶1混合。
使用全式金DNA提取試劑盒提取油菜基因組DNA。A7-FT基因啟動(dòng)子序列PCR擴(kuò)增通過擬南芥信息資源(TAIR)數(shù)據(jù)庫(http://www.arabidopsis.org/)查找擬南芥AtFT基因(AT1G65480),用擬南芥AtFT基因編號(hào)在Brassica Database數(shù)據(jù)庫(http://brassicadb.org/brad/index.php)中Blast,得到甘藍(lán)型油菜中BnFT基因序列上游1 600 bp序列信息。根據(jù)上游約1 600 bp序列信息及BnFT-A7基因信息用Primer 5.0設(shè)計(jì)引物F/R,擴(kuò)增BnFT-A7啟動(dòng)子的引物序列F1(ACAGAGTTGTAAAAGTA AAATTATGTG),R1(CTCTGATCTAAAACAAACAG GTTG),PCR反應(yīng)體系50 μL:5× PCR Buffer 10 μL,5×PCR Buffer 10 μL,dNTP Mix (2.5 mmol/L) 4 μL,正向引用 (10 μmol/L) 1 μL,反向引物 (10 μmol/L) 1 μL,cDNA 1 μL,PrimeSTAR?GXL DNA 聚合酶 1 μL,ddH2O 32 μL。利用全式金的普通瓊脂糖凝膠DNA回收試劑盒回收DNA片段。連接pMD19-T載體轉(zhuǎn)化大腸桿菌。
利用PLACE和PlantCARE植物基因序列分析的網(wǎng)站對(duì)A7-FT基因啟動(dòng)子上的順式作用元件進(jìn)行生物信息學(xué)分析預(yù)測。根據(jù)對(duì)順式作用元件分析的結(jié)果,對(duì)啟動(dòng)子進(jìn)行逐段缺失,缺失片段及名稱依次為-1 549~+57(M1)、-1 162~+57(M2)、-824~+57(M3)、-429~+57(M4)、-238~+57(M5)。對(duì)這些缺失片段進(jìn)行高保真擴(kuò)增,分別設(shè)計(jì)帶有Hind Ⅲ酶切位點(diǎn)的正向引物和帶有NcoⅠ酶切位點(diǎn)的反向引物。擴(kuò)增這5個(gè)片段所需引物見表1。
表1 載體構(gòu)建所需的引物Tab.1 Primer required for vector construction
啟動(dòng)子缺失片段的克隆是通過質(zhì)粒DNA提取不同片段長度啟動(dòng)子表達(dá)載體的構(gòu)建,使用農(nóng)桿菌浸染擬南芥花序,利用MS培養(yǎng)基篩選轉(zhuǎn)化子,進(jìn)行陽性苗的鑒定,待陽性苗植株較大,取部分葉片,提取DNA,參考劉芳[15]已設(shè)計(jì)的引物(表1),F(xiàn)2:GTCGCGCAAGACTGTAACCA,R2:ACATACCATCC GTAATAAC,進(jìn)行PCR檢測,片段長度為842 bp,將檢測為陽性的植株繼續(xù)培養(yǎng),并收集種子,篩選至得到T2種子。將T2種子鋪于MS培養(yǎng)基中(含潮霉素B 50 mg/L),10 d后取出陽性苗用于下一步試驗(yàn)。GUS活性的組織化學(xué)檢測,參照J(rèn)efferson 等[16]的GUS組織化學(xué)檢測方法。
圖1 A7-FT基因啟動(dòng)子序列上順式作用元件預(yù)測Fig.1 cis-acting element prediction on A7-FT gene promoter sequence
通過PlantCARE和PLACE在線軟件對(duì)啟動(dòng)子序列進(jìn)行序列分析(圖1),結(jié)果表明,A7-FT基因啟動(dòng)子序列上存在多種不同功能的順式作用元件。除了啟動(dòng)子-141,-30 bp處分別存在核心啟動(dòng)子必備的元件CAATbox和TATAbox,在啟動(dòng)子的其他核心元件有激素應(yīng)答元件如ABRE/G-box/circadain(脫落酸應(yīng)答元件)、TCA-element(水楊酸應(yīng)答元件);光應(yīng)答元件AE-box、ATCT-motif、Box4、Box I、GT1-motif/chs-CMA1a、TCT-motif/TC-rich repeats;抗逆性應(yīng)答元件如Box-W1/W box(真菌應(yīng)答元件)、ARE(缺氧應(yīng)答元件)。另外,還發(fā)現(xiàn)了其他順式作用元件,如分生組織表達(dá)相關(guān)的順式元件CAT-box、參與胚乳表達(dá)的順式元件GCN4_motif和Skn-1_motif、熱激蛋白順式作用元件HSE。
以湘油15苗期葉片基因組DNA為模板,F(xiàn)1/R1為引物,進(jìn)行PCR擴(kuò)增,得到一條約1 600 bp的片段(圖2-A)。
M.Trans 2kb? DNA Marker;M1.1 606 bp;M2.1 219 bp;M3.914 bp;M4.486 bp;M5.295 bp。
為了深入了解甘藍(lán)型油菜A7-FT基因啟動(dòng)子的功能,基于預(yù)測順式作用元件的分布設(shè)計(jì)帶有酶切位點(diǎn)的特異性引物,以PCR擴(kuò)增湘油15苗期葉片基因組DNA后得到的1 600 bp片段為模板,分別切膠回收加“A尾”并連接pMD-19T載體轉(zhuǎn)化大腸桿菌,通過菌落PCR鑒定,獲得陽性克隆并測序,保留所含啟動(dòng)子序列與已知目的序列一致的菌液,放置-80 ℃保存。把不同長度的啟動(dòng)子分別命名為M1、M2、M3、M4、M5,長度分別為1 606,1 219,914,486,295 bp(圖2-B)。
全長啟動(dòng)子連接pCAMBIA1303載體,啟動(dòng)子依然能使GUS基因正常表達(dá),為了深入了解甘藍(lán)型油菜A7-FT基因啟動(dòng)子的功能,探索A7-FT基因啟動(dòng)子不同區(qū)段的功能,因此,從5′端逐段缺失,構(gòu)建M1、M2、M3、M4、M5表達(dá)載體。5′端缺失載體構(gòu)建模型(圖3),含CAMV35S啟動(dòng)子及去除CAMV35S啟動(dòng)子的pCAMBIA1303載體分別為陽性、陰性對(duì)照。
將含有不同片段長度啟動(dòng)子和pCAMBIA1303載體的大腸桿菌于37 ℃活化過夜,按照EasyPure Plasmid MiniPrep Kit試劑盒說明書提取質(zhì)粒DNA,分別利用FlyCutNcoⅠ/FlyCutHind Ⅲ對(duì)質(zhì)粒進(jìn)行雙酶切,使用T4連接酶分別將相對(duì)應(yīng)的目的片段連接至載體,構(gòu)建含不同片段長度啟動(dòng)子的表達(dá)載體。將構(gòu)建好的表達(dá)載體轉(zhuǎn)化大腸桿菌,通過LB培養(yǎng)基(含Kan 50 μg/mL)篩選陽性菌落,提取質(zhì)粒,通過菌落PCR和雙酶切檢測(圖4),結(jié)果說明含目的片段表達(dá)載體構(gòu)建成功。
圖3 5′端缺失載體構(gòu)建模型Fig.3 The pattern digaram of 5′deleted vecter
圖4 不同片段長度啟動(dòng)子雙酶切電泳Fig.4 Electrophoresis of different fragments of promoters by two restriction enzymes
將含有不同片段長度啟動(dòng)子的表達(dá)載體分別轉(zhuǎn)入農(nóng)桿菌GV3101中,通過含有利福平(Rif 50 μg/mL)、卡那霉素(Kan 50 μg/mL)雙抗YEB培養(yǎng)基進(jìn)行篩選,挑選陽性菌落進(jìn)行菌落PCR檢測,結(jié)果如圖5,凝膠電泳結(jié)果與預(yù)期一致,結(jié)果表明,5′端缺失載體成功轉(zhuǎn)化農(nóng)桿菌。
圖5 轉(zhuǎn)化的農(nóng)桿菌菌落PCR檢測結(jié)果Fig.5 The colony PCR detection of transformed Agrobacterium
利用花序浸染法將含不同片段長度啟動(dòng)子的表達(dá)載體轉(zhuǎn)化至野生型擬南芥后,于植物生長箱中培養(yǎng)至收獲T0種子。通過MS培養(yǎng)基(含潮霉素B 50 mg/L)從T0種子中篩選出轉(zhuǎn)化子。篩選過程中陽性幼苗主根和側(cè)根的生長、發(fā)育正常;陰性幼苗發(fā)育遲緩,主根無法正常生長,且沒有側(cè)根形成。挑選主根和側(cè)根的生長、發(fā)育正常的陽性苗,用無菌水洗凈黏附的凝膠,移入已滅菌的人工土中覆蓋白色薄膜3~4 d,置于植物生長培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。待T1擬南芥生長較大時(shí),取部分葉片,參照DNA提取試劑盒說明書提取基因組DNA,通過PCR再一次鑒定轉(zhuǎn)化子,鑒定結(jié)果如圖6所示。
待T1擬南芥開花后15 d依次收獲成熟的T1種子。通過MS培養(yǎng)基(含潮霉素B 50 mg/L)篩選T1種子,從而得到T2種子。繼續(xù)通過MS培養(yǎng)基(含潮霉素B 50 mg/L)進(jìn)行篩選,待陽性苗在MS培養(yǎng)基中生長10~15 d,進(jìn)行下一步試驗(yàn)。
圖6 轉(zhuǎn)基因擬南芥PCR鑒定電泳(部分鑒定結(jié)果)Fig.6 PCR identification of transgenic Arabidopsis(Partial identification results)
含有不同片段長度啟動(dòng)子的表達(dá)載體經(jīng)過農(nóng)桿菌轉(zhuǎn)化后得到T2幼苗,約10 d的T2幼苗經(jīng)過GUS染色與脫色處理后(圖7),GUS基因在不同片段長度啟動(dòng)子的啟動(dòng)下均能表達(dá),但是隨著啟動(dòng)子5′端的逐漸缺失,GUS染色程度也有所變化,這說明啟動(dòng)子5′端的逐漸缺失影響了GUS基因的表達(dá)。從染色結(jié)果上看,M1、M2、M3、M4均比M5淺,說明在-1 549~-238可能存在一些負(fù)調(diào)控元件的結(jié)合位點(diǎn),而M5啟動(dòng)GUS基因的表達(dá)情況與陽性對(duì)照CAMV35S相同,這說明-238~+1區(qū)域是該啟動(dòng)子的核心區(qū)段。
通過PCR技術(shù)獲取甘藍(lán)型油菜A7-FT基因啟動(dòng)子并驗(yàn)證啟動(dòng)子的功能,對(duì)研究甘藍(lán)型油菜開花調(diào)控具有重大意義。本試驗(yàn)克隆獲得了295 bp甘藍(lán)型油菜A7-FT基因啟動(dòng)子序列,該序列與甘藍(lán)型油菜基因組FT基因上游序列比對(duì),同源性100%,說明在同物種不同品種之間的A7-FT基因啟動(dòng)子高度保守。通過啟動(dòng)子在線預(yù)測軟件分析甘藍(lán)型油菜A7-FT基因啟動(dòng)子,預(yù)測結(jié)果表明,在啟動(dòng)子上分布許多光應(yīng)答元件,說明光照能調(diào)控A7-FT基因的表達(dá),這與鄭小一[17]在光照條件下,蘋果FT基因啟動(dòng)子才有活性的研究結(jié)論一致;預(yù)測結(jié)果顯示,在啟動(dòng)子上還有一個(gè)與生理控制相關(guān)的順式作用元件Circadian,這也表明,A7-FT基因的表達(dá)受晝夜的影響,間接地證明了該基因也受光周期調(diào)控;在啟動(dòng)子上還發(fā)現(xiàn)了各種激素元件,包括TAC-element(水楊酸應(yīng)答元件)和ABRE(脫落酸應(yīng)答元件),Wada等[18]用外源水楊酸處理日本牽?;?,發(fā)現(xiàn)FT基因高效表達(dá),進(jìn)而促進(jìn)開花,這就表明植物開花也受生物壓力影響;在啟動(dòng)子上發(fā)現(xiàn)W-box元件,該元件在植物開花上也扮演著重要的角色,因?yàn)檗D(zhuǎn)錄因子WRKY特異性識(shí)別W-box,前者參與許多植物生理與發(fā)育過程[19],Miao等[19]在擬南芥中過表達(dá)WRKY53、WRKY6均使植株開花提前,Robatzek等[20]利用RNAi技術(shù)干擾WRKY表達(dá),發(fā)現(xiàn)植株開花延遲,從這些研究推測W-box是A7-FT基因啟動(dòng)子上調(diào)控植物開花的重要順式元件。
圖7 不同片段長度啟動(dòng)子GUS染色結(jié)果Fig.7 The GUS staining of different fragments of promoters