余 倩 姜立新
胰腺癌的轉(zhuǎn)移和復發(fā)是影響腫瘤患者長期存活的最主要因素,在轉(zhuǎn)移的過程中,原發(fā)腫瘤細胞可通過多種途徑侵入到血液循環(huán)系統(tǒng)中,產(chǎn)生循環(huán)腫瘤細胞 (CTCs)。這些細胞以單個或聚集成團的形式存在,部分CTCs作為腫瘤轉(zhuǎn)移的種子,在脫離原發(fā)病灶后能夠抑制失巢凋亡,在血液循環(huán)中抵抗流體剪切力和躲避免疫監(jiān)視,具有在機體其他部位附著形成新的癌轉(zhuǎn)移灶的潛能[1]。CTCs有原發(fā)灶細胞的生物學特性,因此被認為在反映癌癥惡性程度及預后方面有重要的應用潛能。研究表明,CTCs的檢測結(jié)果、細胞計數(shù)、特定表面標志物識別與胰腺癌患者的診斷及分期、療效判斷和預后顯著相關(guān),能夠為胰腺癌的個體化診療提供可靠依據(jù)[2]。
胰腺癌CTCs進入血液循環(huán)后,絕大部分會受到失巢凋亡,流體剪切力和機體免疫識別殺傷作用的影響,最終在外周血中存活的CTCs數(shù)量稀少(約每109~1010個血細胞中有1~10個CTCs)。體外檢測又被稱為“液體活檢”,主要通過采集血樣,對CTCs進行計數(shù)及亞群特征分析。主要的分離檢測方法可分為免疫介導法和分子法(主要為PCR介導的檢測)兩大類[3]。此外,利用密度梯度離心和基于細胞尺寸的物理法分離,可對血樣中微量的CTCs進行富集,從而提高檢測敏感度[4]。
1.免疫介導法檢測胰腺癌CTCs:基于抗原-抗體結(jié)合反應的免疫學方法以其特異性、有效性,在胰腺癌CTCs檢測中發(fā)揮了重要作用。胰腺癌為上皮組織來源腫瘤,在其細胞表面表達特殊的表面分子,而血液中的紅細胞和白細胞則幾乎不表達上皮來源的表面分子。最常見的選擇性標志物為上皮細胞黏附分子(epithelial cell adhesion molecule, EpCAM)。
CellSearch系統(tǒng)是唯一受美國食品藥品監(jiān)督管理局(FDA)批準的,用于患者體內(nèi)CTCs分離檢測的技術(shù),該技術(shù)是一種自動化的CTCs免疫富集和染色的系統(tǒng)。檢測過程中,偶聯(lián)有EpCAM抗體的磁珠捕獲CTCs,通過磁珠分選將其富集[5]。然后固定富集的細胞并用DAPI、CK和CD45染色,通過CellSpotter分析儀(Veridex)將CK+、DAPI+、CD45-細胞計數(shù)為CTCs。
Hugenschmidt等[6]通過CellSearch系統(tǒng)檢測可切除的胰腺癌和壺腹周圍癌患者外周血CTCs與疾病預后,結(jié)合患者術(shù)后病理分析,高風險患者CTCs陽性(≥1/7.5ml)占6.8%(10/147),晚期患者CTCs陽性占6.2% (2/33),低風險和良性腫瘤患者CTCs均為陰性,盡管成功切除腫瘤,但術(shù)前CTCs陽性的患者仍顯示出不良預后。Okubo等[7]通過CellSearch系統(tǒng)檢測不可切除的胰腺癌患者外周血CTCs與疾病預后,CTCs陽性患者(21/65)總生存率明顯低于陰性患者,且伴有肝轉(zhuǎn)移的胰腺癌患者CTCs數(shù)量明顯增多,研究表明CTCs可預測晚期胰腺癌患者化療預后和治療反應。
微流體芯片技術(shù)(CTC-Chip)是基于EpCAM陽性選擇的另一種檢測方式,Nagrath等[8]于2007年首次報道,CTC-Chip由一系列具有EpCAM抗體的微柱組成,當外周血樣本流過芯片時,因抗原-抗體反應,腫瘤細胞被芯片捕獲。Ko等[9]研制的CTCs熒光原位雜交芯片可實現(xiàn)分離并檢測全血中的CTCs,該芯片將胰腺癌CTCs定義為RNA FISH(CK18+、CK19+、Ctnnd1+、CD45-),并應用于胰腺癌小鼠模型及25例晚期胰腺癌患者血液標本中。
以上兩種基于EpCAM陽性選擇的胰腺癌CTCs檢測方式也存在一定的局限性,由于腫瘤細胞的異質(zhì)性及上皮-間質(zhì)轉(zhuǎn)化(EMT)等特性,并非所有腫瘤細胞都表達EpCAM抗原,這有可能會降低CTCs檢測率。
免疫磁珠陰性富集可對胰腺癌CTCs進行陰性選擇,將患者血樣中的紅細胞裂解后,通過使用表面帶有白細胞特異性抗體(如CD45)的磁珠消耗胰腺癌患者血樣中的白細胞,獲得未標記的胰腺癌CTCs懸液。Zhang等[10]用抗CD45抗體消耗3.75ml血樣中的CD45+細胞,并通過結(jié)合CK、CD45、DAPI和CEP8鑒定胰腺癌患者CTCs。該方法不受腫瘤細胞異質(zhì)性及EMT特性影響,能夠提高CTCs檢測率[11]。
2.基于分子法PCR的胰腺癌CTCs檢測:該方法將胰腺癌患者血樣中腫瘤特異性mRNA高水平表達作為CTCs的替代標志物,通過將正常血樣作為對照設定閾值,以便定量檢測腫瘤特異性mRNA[12,13]。
Chausovsky等首次使用巢式實時定量PCR(nested RT-PCR)檢測胰腺癌患者血樣中CK20 mRNA的表達,79%(22/28)胰腺癌患者CK20擴增,22例正常對照者CK20擴增均為陰性。Zhou等[14]研究表明,多標記比單標記顯示出更好的結(jié)果,對25例初診胰腺癌患者進行人端粒酶反轉(zhuǎn)錄酶(hTERT)、C-MET、CK20和CEA的RT-PCR,檢測陽性表達率分別為100%(25/25)、80%(20/25)、84%(21/25)和80%(20/25)。
基于PCR的胰腺癌CTCs檢測具有較高的敏感度,但是由于并缺乏胰腺癌特異性mRNA,常用上皮特異性mRNA替代,因此敏感度往往會伴隨著假陽性的出現(xiàn)。
Lin的研究小組開發(fā)了一種用于CTCs檢測的體內(nèi)技術(shù),稱為活體流式細胞術(shù)(IVFC),它結(jié)合了傳統(tǒng)流式細胞術(shù)和共聚焦顯微鏡檢測。活體檢測的方法包括活體熒光流式細胞術(shù)(FFC)和活體光聲流式細胞術(shù)(PAFC):FFC的原理為當帶有熒光標記的CTCs流經(jīng)激光時,被激發(fā)的熒光被光電倍增管收集,產(chǎn)生不同于血液背景的信號,從而實現(xiàn)CTCs的活體檢測[15]。PAFC利用生物組織的光聲效應,當激光照射組織時,組織吸收光能量產(chǎn)生熱膨脹,向外輻射超聲波,通過分析超聲換能器接收的不同聲波信號來檢測CTCs[16]。
IVFC可用于研究活體循環(huán)系統(tǒng)中胰腺癌CTCs在特定時間區(qū)間內(nèi)的數(shù)量變化趨勢,為療效判斷和預后提供依據(jù)。目前實驗研究多采用胰腺癌細胞體外標記,注射入實驗動物循環(huán)系統(tǒng),或異種移植到實驗動物體內(nèi),對胰腺癌CTCs變化趨勢進行連續(xù)監(jiān)測。研究表明,CTC簇比單個CTC有更大的轉(zhuǎn)移潛能,IVFC檢測CTC簇的熒光信號顯示為多個峰,而單個CTC的熒光信號顯示為單峰,CTC簇的信號比單個CTC具有更長的持續(xù)時間[17]。IVFC可以實時、定量地對胰腺癌CTCs進行活體檢測,相較于體外檢測方式,具有非侵入性、高敏感度和動態(tài)監(jiān)測的優(yōu)勢,可用于研究胰腺癌發(fā)展、轉(zhuǎn)移的CTCs動力學變化。
1.診斷和分期:Xu等[11]通過陰性富集,免疫熒光8號染色體原位雜交(NE-iFISH)來捕獲和鑒定胰腺癌患者的CTCs,NE-iFISH系統(tǒng)在胰腺癌患者中表現(xiàn)出極高的CTCs檢出率(90%),結(jié)合CTCs≥2和CA19-9>37μmol/L,PC的診斷率可達到97.5%。
Ankeny檢測了72例胰腺癌患者和28例其他胰腺疾病患者的CTCs,顯示Ⅰ~Ⅱ期患者CTCs陽性率為54.84%(17/31)、Ⅲ期陽性率為78.57%(11/14)、Ⅳ期陽性率為96.30%(26/27);28例其他胰腺疾病患者中僅1例檢測出1個CTCs。統(tǒng)計表明可以將CTCs≥3個/4毫升作為Ⅳ期胰腺癌的評判標準,CTCs有望成為胰腺癌診斷和分期的生物學標志物。
2.療效和預后:Torphy等[18]建立胰腺導管腺癌小鼠模型,隨機分為兩組,分別使用化療藥物和空白載體治療28天,并于治療前后檢測CTCs,化療組CTCs計數(shù)治療后明顯減少(26.61個/250微升 vs 2.21個/250微升,P=0.021),而空白組治療前后CTCs計數(shù)比較差異無統(tǒng)計學意義(23.26個/250微升 vs 11.89個/250微升,P=0.808)。CTCs的連續(xù)監(jiān)測可以用作預測治療反應的微創(chuàng)方法以指導治療方案。
楊陽[19]通過檢測48例胰腺癌患者術(shù)后外周血CTCs變化情況,探討高強度聚焦超聲消融(high-intensity focused ultrasound, HIFU)與開放手術(shù)兩種治療方法對胰腺癌細胞血行性播散的影響, 應用免疫磁珠負性富集結(jié)合免疫熒光原位雜交技術(shù)檢測外周血CTCs。研究發(fā)現(xiàn),開放手術(shù)和HIFU治療均有可能發(fā)生醫(yī)源性癌細胞血行播散,并且手術(shù)治療CTCs檢出率高于HIFU治療,因此胰腺癌患者接受開放手術(shù)或HIFU治療后,應酌情給予化療、增強免疫力等輔助治療。
CTCs診斷胰腺癌的敏感度低于EUS-FNA,但特異性(100%)與組織病理活檢相當,具有低風險、低成本、高特異性等優(yōu)點[20]。目前對胰腺癌CTCs的檢測尚未形成統(tǒng)一指南,檢測方法的差異使得研究之間的比較變得困難,并且在廣泛采用之前,必須嚴格驗證“可重復性”。未來的發(fā)展中,實現(xiàn)胰腺癌CTCs檢測的標準化,需要更多獨立驗證研究以及在大型前瞻性臨床試驗中的嚴格評估。