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    產(chǎn)纖維素酶枯草芽孢桿菌Kpg酶學(xué)性質(zhì)研究及對麩皮纖維素含量的影響

    2019-01-16 06:00:24聶利波史敦勝宋洋洋王占彬
    家畜生態(tài)學(xué)報 2018年12期
    關(guān)鍵詞:麩皮菌液纖維素

    聶利波,李 旺,史敦勝,宋洋洋,王占彬

    (河南科技大學(xué) 動物科技學(xué)院,河南 洛陽 471003)

    中國是農(nóng)業(yè)大國,每年能夠生產(chǎn)數(shù)以萬噸糧食,同時也產(chǎn)生大量農(nóng)產(chǎn)品廢棄物。其中的大部分都以焚燒的方式進(jìn)行處理,不僅造成了環(huán)境的污染,同時也浪費(fèi)了大量資源[1]。秸稈、麩皮、稻殼等產(chǎn)量較大,同時也是浪費(fèi)最嚴(yán)重的,而其中的主要成分纖維素卻可以作為飼料原料供畜牧業(yè)生產(chǎn)使用。但由于纖維素結(jié)構(gòu)比較復(fù)雜,這些纖維素原料難以被動物消化吸收,同樣會造成資源的浪費(fèi)[2]。

    纖維素酶能夠?qū)⒗w維素降解為可以供動物機(jī)體消化吸收的葡萄糖,為緩解畜牧業(yè)中飼料來源緊缺的局面提供可能。纖維素酶的來源十分廣泛,在植物、細(xì)菌、真菌和動物體內(nèi)均能分泌或生成纖維素酶[3-4]。隨著科學(xué)技術(shù)的發(fā)展,尤其是分子生物技術(shù)的逐漸成熟,科技工作者通過基因重組和篩選的方式,從自然界中獲得能夠降解纖維素的纖維素酶基因,將其整合到特定細(xì)菌的基因組中,以便達(dá)到降解纖維素的目的。由于大多數(shù)的纖維素酶都是通過微生物分泌的,進(jìn)行篩選和構(gòu)建重組菌時,選擇對動物機(jī)體無害的益生菌作為宿主菌,不但能促進(jìn)動物機(jī)體對營養(yǎng)物質(zhì)的消化吸收,而且對目前畜牧行業(yè)存在的抗生素濫用現(xiàn)象也是一種有效的抵制。

    本試驗(yàn)的研究對象是一株源自于動物腸道的益生菌——野生型枯草芽孢桿菌(B.subtilis) LN,經(jīng)過基因重組技術(shù)改造后,篩選出能夠表達(dá)纖維素酶的重組菌B.subtilisKpg,通過研究其最適反應(yīng)溫度和最適反應(yīng)pH,以及對麩皮中纖維素和真蛋白含量的影響,為重組菌B.subtilisKpg的實(shí)際應(yīng)用提供參考。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 菌 種 產(chǎn)纖維素酶的重組菌B.subtilisKpg,野生型B.subtilisLN,均由河南科技大學(xué)生物飼料和精準(zhǔn)營養(yǎng)實(shí)驗(yàn)室保存。

    1.1.2 培養(yǎng)基 LB固體培養(yǎng)基:胰蛋白胨10 g,酵母粉5 g,氯化鈉10 g,瓊脂粉20 g,蒸餾水定容到1 L,121 ℃高溫高壓滅菌25 min。

    種子培養(yǎng)基:牛肉膏0.5 g,蛋白胨1 g,氯化鈉0.5 g溶于90 mL滅菌水,待溶解完全后,定容至100 mL,121℃滅菌25 min。

    固體發(fā)酵培養(yǎng)基:麩皮100 g,氯化銨2 g,氯化鈉1 g,滅菌水60~70 mL。

    1.1.3 主要試劑的配制 CMCA底物溶液:羧甲基纖維素鈉(CMC-Na)1 g,磷酸鹽緩沖液定容至100 mL。121 ℃滅菌25 min,4 ℃保存。

    DNS染液:3,5-二硝基水楊酸6.3 g定容至500 mL,45 ℃恒溫水浴鍋中溶解,逐步加入氫氧化鈉21.0 g,不斷攪拌,至完全溶解。緩慢加入四水酒石酸鈉182 g,再依次加入苯酚5 g,無水亞硫酸鈉5 g,置于45 ℃恒溫水浴鍋中,邊攪拌邊補(bǔ)滅菌水,使添加物完全溶解,定容至1 L。將配制好的溶液轉(zhuǎn)移褐色瓶中,置于避光處7 d后使用。

    不同pH濃度磷酸鹽緩沖液的配制見表1,配制完成后以弱酸弱堿進(jìn)行pH值的標(biāo)定后定容至1 L。

    表1 不同pH濃度磷酸鹽緩沖液的配制

    1.2 方法

    1.2.1 粗酶液的提取 取實(shí)驗(yàn)室保存的重組菌B.subtilisKpg 20 μL均勻涂布于LB固體培養(yǎng)基上,37 ℃倒置培養(yǎng)16 h。將活化好的B.subtilisKpg挑取單菌落,接種于種子培養(yǎng)基中,置于37 ℃,220 r/min恒溫?fù)u床振蕩培養(yǎng)18 h。將菌液置于4 ℃,5 000 r/min超低溫離心機(jī)中離心30 min,上清液即為粗酶液。利用同樣的方法制備野生型B.subtilisLN粗酶液。

    1.2.1 不同溫度對重組菌B.subtilisKpg纖維素酶活性的影響測定 試驗(yàn)分為7個試驗(yàn)組,每組取制備好的重組菌B.subtilisKpg粗酶液1 mL,加入2 mL的CMCA底物溶液,混勻后分別置于不同反應(yīng)溫度(30 ℃、40 ℃、50 ℃、60 ℃、70 ℃、80 ℃、90 ℃)的恒溫水浴鍋中,水浴30 min。待水浴結(jié)束后加入2.5 mL DNS染液混勻,100 ℃沸水浴中煮沸10 min,迅速通過流水冷卻至室溫后用去離子水定容至25 mL。以不加酶液的相同底物為對照組,利用紫外線分光光度計在540 nm波長條件下,測定OD值。各試驗(yàn)組3個重復(fù)。每個溫度梯度試驗(yàn)組均以野生型B.subtilisLN為對照。

    酶活力單位規(guī)定: 50 ℃條件下,以1 mL纖維素酶粗酶液在1 min內(nèi)水解羧甲基纖維素鈉生成1 μg葡萄糖的酶量為1個酶活力單位。

    酶活力計算公式:

    式中:X. 酶活力(U/mL);W. 測得的吸光度值;N. 酶樣所稀釋的倍數(shù);k. 葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線的斜率;T. 反應(yīng)時間;M. 酶樣體積;1000. mg轉(zhuǎn)化為μg。

    1.2.2 不同pH對重組菌B.subtilisKpg纖維素酶活性的影響測定 試驗(yàn)分為10個試驗(yàn)組,每個試驗(yàn)組取制備好的重組菌B.subtilisKpg粗酶液1 mL,分別加入2 mL不同pH(3.5、4.0、4.5、5.0、5.5、6.0、6.5、7.0、7.5、8.0)配制的CMCA底物溶液,混勻后置于50 ℃恒溫水浴鍋中,水浴30 min。待水浴結(jié)束后加入2.5 mL DNS染液混勻,100 ℃沸水浴中煮沸10 min,迅速通過流水冷卻至室溫后用去離子水定容至25 mL。以不加酶液的相同底物為對照組,測定OD540值。每組3個重復(fù),每個溫度梯度試驗(yàn)組均以野生型B.subtilisLN為對照。

    1.2.3 不同溫度、pH對重組菌B.subtilisKpg纖維素酶活性的影響測定 取制備好的重組菌B.subtilisKpg粗酶液1 mL,分別加入不同pH值(5.5、6.0、6.5、7.0、7.5、8.0)配置的CMCA底物溶液,混勻后分別置于不同反應(yīng)溫度(40 ℃、50 ℃、60 ℃、70 ℃、80 ℃)恒溫水浴鍋中,水浴30 min。待水浴結(jié)束后加入2.5 mL DNS染液混勻,100 ℃沸水浴中煮沸10 min,迅速通過流水冷卻至室溫后用去離子水定容至25 mL。以不加酶液的相同底物為對照組,測定OD540值。各試驗(yàn)組3個重復(fù)。

    1.2.4 麩皮發(fā)酵試驗(yàn) 選擇5個固體發(fā)酵培養(yǎng)基分別加入無菌種子培養(yǎng)基、重組菌B.subtilisKpg粗酶液、重組菌B.subtilisKpg菌液、野生型B.subtilisLN粗酶液和野生型B.subtilisLN菌液,添加量均為10 mL。混勻置于燒杯中,用報紙包好,并用針頭扎孔,放置于37 ℃ 恒溫培養(yǎng)箱內(nèi),靜止培養(yǎng)6 d。每隔1 d翻動一次,并適當(dāng)補(bǔ)水。發(fā)酵完成的培養(yǎng)產(chǎn)物置于65 ℃烘箱中進(jìn)行烘干,至培養(yǎng)產(chǎn)物中水分一致。

    1.2.5 發(fā)酵麩皮中纖維素和真蛋白含量的測定 發(fā)酵麩皮中纖維素和真蛋白含量的測定參照《飼料分析及飼料質(zhì)量檢測技術(shù)》中纖維素[5]67-77和真蛋白[5]48-53的測定方法進(jìn)行。

    1.2.6 數(shù)據(jù)統(tǒng)計 試驗(yàn)結(jié)果用Excel 2013軟件進(jìn)行預(yù)處理,用SPSS 19.1統(tǒng)計軟件對數(shù)據(jù)進(jìn)行單因素方差分析,采用Duncan氏法進(jìn)行多重比較檢驗(yàn)。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 不同溫度對纖維素酶活性的影響

    不同反應(yīng)溫度下,重組菌B.subtilisKpg的纖維素酶活性均大于野生型B.subtilisLN,但兩者的粗酶液隨溫度的變化趨勢類似。反應(yīng)溫度為60 ℃時,酶活性最大為108.45 U/mL,與對照組相比提高了172%。超過60 ℃之后,隨著反應(yīng)溫度的升高,重組菌B.subtilisKpg纖維素酶活性逐漸降低,反應(yīng)溫度到達(dá)90 ℃時,纖維素酶活最低,但依舊能表現(xiàn)出一定的活性,為8.80 U/mL(圖1)。

    2.2 不同pH對纖維素酶活性的影響

    pH值為6時,重組菌B.subtilisKpg纖維素酶活性最大為97.72 U/mL,相對于野生型B.subtilisLN酶活性提高了220%。pH為3時,重組菌B.subtilisKpg和野生型B.subtilisLN的纖維素酶活性均為最低,僅為5.03 U/mL和5.65 U/mL。反應(yīng)環(huán)境為弱堿時,纖維素酶的最適pH為7.5,酶活性為78.24 U/mL,隨著pH值的增大,纖維素酶活性逐漸降低。在弱堿環(huán)境中,重組菌B.subtilisKpg纖維素酶仍能表現(xiàn)出較高的活性(圖2)。試驗(yàn)結(jié)果顯示,pH值為7時的中性環(huán)境并不是重組菌B.subtilisKpg纖維素酶的最適反應(yīng)環(huán)境。

    圖1 不同溫度對重組菌與野生菌纖維素酶活力的影響

    圖2 不同pH對重組菌與野生菌纖維素酶活力的影響

    注:同組數(shù)據(jù)標(biāo)注不同小寫字母表示差異顯著(P<0.05),相同字母者為差異不顯著(P>0.05)。

    Notes: In the same group, values with different lowercase letter mean significant difference (P<0.05), the same letter mean insignificant difference (P>0.05).

    2.3 不同溫度、pH對纖維素酶活性的影響

    通過對重組菌B.subtilisKpg粗酶液在不同反應(yīng)溫度和不同pH環(huán)境中的酶活性測定發(fā)現(xiàn),在60 ℃,pH為6.0時其酶活力最高,達(dá)到113.58±1.8 U/mL,與其他條件下相比差異顯著(P<0.05)(表2)。相同溫度條件下,當(dāng)pH為6時,重組菌B.subtilisKpg的粗酶液活力均高于其他pH條件下的酶活力;相同pH環(huán)境下,溫度為60 ℃時,重組菌B.subtilisKpg的粗酶液活力均高于其他溫度條件下的酶活力。試驗(yàn)結(jié)果與之前所測結(jié)果相符,為重組菌B.subtilisKpg的應(yīng)用提供參考。

    2.4 重組菌B.subtilis Kpg對麩皮粗纖維和真蛋白含量的影響

    由表3可看出,重組菌B.subtilisKpg菌液和粗酶液均能夠?qū)熎だw維素含量產(chǎn)生顯著影響(P<0.05)。在不添加任何菌液和粗酶液的無菌種子培養(yǎng)基中,發(fā)酵后麩皮的纖維素含量為13.1%,添加重組菌粗酶液可以使麩皮中纖維素含量降低至12.2%,添加重組菌菌液可將纖維素含量降低至11.7%,與無菌種子培養(yǎng)基試驗(yàn)組相比差異顯著(P<0.05);將宿主菌添加到麩皮中,粗酶液和菌液對麩皮中纖維素含量影響不明顯(P>0.05)。通過發(fā)酵麩皮試驗(yàn)發(fā)現(xiàn),重組菌對纖維素的降解效果顯著(P<0.05),證明了重組菌B.subtilisKpg在生產(chǎn)實(shí)踐中對纖維素酶降解的可靠性。

    表2 不同溫度、pH對重組菌纖維素酶活力的影響

    注:同行數(shù)據(jù)肩標(biāo)為不同小寫字母表示差異顯著(P<0.05),相同字母或無字母表示差異不顯著(P>0.05)。下同。

    Notes: In the same row, values with different lowercase letter superscripts mean significant difference (P<0.05), the same or no superscripts mean insignificant difference (P>0.05) .The same below.

    表3 發(fā)酵麩皮中纖維素和真蛋白成分變化

    注:同行數(shù)據(jù)后肩小寫字母為P<0.05時差異顯著性檢測,相同字母者為差異不顯著。

    Note::Values with different lowercase superscripts in the same line are significantly different (P<0.05), the same superscripts are insignificantly different.

    由表3可看出,重組菌B.subtilisKpg和野生型B.subtilisLN均能將固體發(fā)酵培養(yǎng)基中的無機(jī)氮轉(zhuǎn)化為有機(jī)氮,提高真蛋白含量且差異顯著(P<0.05)。在不添加任何菌液和粗酶液的無菌種子培養(yǎng)基中,發(fā)酵后麩皮的真蛋白含量為17.4%,添加重組菌B.subtilisKpg粗酶液和野生型B.subtilisLN粗酶液的發(fā)酵麩皮,真蛋白含量提高至19.0%和19.1%,與無菌種子培養(yǎng)基試驗(yàn)組相比差異顯著(P<0.05),但兩者之間無明顯差異(P>0.05);添加重組菌B.subtilisKpg和野生型B.subtilisLN的菌液也能提高發(fā)酵麩皮中真蛋白含量,且差異顯著(P<0.05)。試驗(yàn)發(fā)現(xiàn),在發(fā)酵麩皮過程中,添加粗酶液效果優(yōu)于添加相應(yīng)菌液。在一定的發(fā)酵時間內(nèi),B.subtilis粗酶液可以直接發(fā)揮作用,縮短了菌液生長分泌相應(yīng)酶類的培養(yǎng)周期。

    3 討 論

    由于在植物中的纖維素酶含量少且難以提取,因此大多數(shù)纖維素酶的篩選都來自于微生物中。經(jīng)常被科技工作者用來生產(chǎn)纖維素酶的微生物有青霉、曲霉、芽孢桿菌、酵母菌等[6-9]。本試驗(yàn)選用的研究對象是對野生型B.subtilisLN進(jìn)行DNA改造后,能夠分泌纖維素酶的重組菌B.subtilisKpg。野生型B.subtilisLN源自于動物腸道益生菌菌群,在生產(chǎn)使用中對動物機(jī)體造成的不良影響可降到最低。劉鑫[10]以藏綿羊源的產(chǎn)纖維素酶B.subtilis為研究對象,使用不同的抗生素進(jìn)行處理,結(jié)果發(fā)現(xiàn)其具有良好的耐堿性、耐酸性和抗藥性。本試驗(yàn)同樣采用的是動物源B.subtilis,為重組菌B.subtilisKpg的生產(chǎn)應(yīng)用提供理論支持。其次,B.subtilis自身對外界環(huán)境的耐受程度比較好,生存條件要求不高,便于培養(yǎng)[11]。在研究過程中發(fā)現(xiàn),在低溫、高溫和強(qiáng)酸條件下,重組菌B.subtilisKpg分泌的纖維素酶均能表達(dá)一定的活性,證明了重組菌B.subtilisKpg具有較強(qiáng)的耐受性。B.subtilis表達(dá)系統(tǒng)能夠直接將表達(dá)產(chǎn)物分泌到細(xì)胞外,增加了產(chǎn)物的回收利用效率。B.subtilis憑借自身高效的信號肽和分子伴侶系統(tǒng),可以有效地提高目的蛋白的分泌量。陳大超[12]利用B.subtilis表達(dá)系統(tǒng)構(gòu)建能夠降解有機(jī)磷的新型菌株,使其分泌的酶活性提高了0.9倍。本試驗(yàn)選用野生型B.subtilisLN作為宿主菌,目的是為了借助B.subtilis高效的表達(dá)系統(tǒng),增加纖維素酶的表達(dá)量,為生產(chǎn)實(shí)踐提供便利。

    在本研究中,通過設(shè)計不同的反應(yīng)溫度梯度,探索重組菌B.subtilisKpg分泌的纖維素酶表達(dá)活性,結(jié)果發(fā)現(xiàn)重組菌B.subtilisKpg在30~90 ℃范圍內(nèi)均能表現(xiàn)出一定活性。張偉[13]在構(gòu)建產(chǎn)木聚糖酶B.subtilis的過程中發(fā)現(xiàn),重組菌在85 ℃的高溫環(huán)境中,酶活性最強(qiáng),在65~95 ℃環(huán)境中,仍能保持酶活性最高時的70%,與本試驗(yàn)結(jié)果相似。B.subtilis在生長繁殖過程中會產(chǎn)生芽孢,對極端溫度有較好的耐受性,可以減輕表達(dá)產(chǎn)物受溫度、紫外線以及其他物質(zhì)的破壞,保持相應(yīng)的活性[14]。在飼料加工過程中,制粒時伴隨著高溫的產(chǎn)生,一般為60~80 ℃范圍內(nèi),制粒時間大概1~2 min,因此需要微生物或者酶制劑具有一定耐熱性[15]。重組菌B.subtilisKpg能使酶活性較強(qiáng)的溫度集中在40~70 ℃之間,但在80 ℃時僅能表現(xiàn)出最高酶活性的40.1%,有待進(jìn)一步改進(jìn)提高。影響纖維素酶活性的因素除了溫度,pH的影響也很大。在動物的消化系統(tǒng)中,各部位的pH大多維持在5~7.5之間,呈中性偏酸。重組菌B.subtilisKpg表達(dá)的纖維素酶在pH5.5~8之間均能表現(xiàn)出較高的活性,避免了纖維素酶在使用過程中失活的現(xiàn)象發(fā)生。劉暉[16]在纖維素酶的耐受性試驗(yàn)研究中發(fā)現(xiàn),其纖維素酶的最佳pH環(huán)境維持在5~7之間,與本試驗(yàn)結(jié)果相似,但酶活性最高時是在pH為5,而在本研究中,最適pH為6,這可能與纖維素酶基因的來源不同有關(guān)。纖維素酶是由多種水解酶組合在一起形成的,不同基因來源的纖維素酶基因,其組分比例也存在差異,因此對最適環(huán)境也會存在差異[17-18]。

    在固體發(fā)酵試驗(yàn)中,選用麩皮為發(fā)酵原料,麩皮自身纖維素含量較高,且每年我國的麩皮產(chǎn)量很大[19]。研究重組菌B.subtilisKpg對麩皮的影響,對合理運(yùn)用麩皮具有一定的意義。通過試驗(yàn)發(fā)現(xiàn)重組菌B.subtilisKpg可以降低麩皮中的纖維素含量,效果顯著(P<0.05),同時還能夠顯著提高真蛋白的合成(P<0.05)。崔晨曉[20]在研究酵母菌發(fā)酵對小麥麩皮含量的影響中發(fā)現(xiàn),酵母菌35 ℃發(fā)酵48 h條件下能使麩皮中的膳食纖維含量降低6.45%,真蛋白含量提高21.97%。在本試驗(yàn)中,重組菌B.subtilisKpg可以將麩皮纖維素降低10.7%,B.subtilis在發(fā)酵過程中利用纖維素酶可以破壞纖維素的結(jié)構(gòu),使其水解為單糖,降低纖維素含量。但在真蛋白的提高上效果不如酵母菌,僅提高9.2%。這是由于酵母菌更適合在麩皮基質(zhì)中生長,在生長過程中將麩皮中的無機(jī)氮轉(zhuǎn)化有機(jī)氮[21]。試驗(yàn)過程中還發(fā)現(xiàn),發(fā)酵過程中,添加重組菌B.subtilisKpg菌液對麩皮中纖維素的降解最好,添加重組菌B.subtilisKpg粗酶液對麩皮中的真蛋白提高效果也是最好。因?yàn)樵诮到饫w維素的過程中,添加菌液可以增加纖維素酶的表達(dá)量。但是,纖維素酶對真蛋白的轉(zhuǎn)化卻無明顯作用,真蛋白含量的提高,只能依靠B.subtilis自身生長過程中表達(dá)或分泌的某種產(chǎn)物。同時在細(xì)菌生長過程中,也會消耗掉一部分的真蛋白,因此直接添加粗酶液,減少了細(xì)菌對真蛋白的利用,提升效果優(yōu)于直接添加菌液[22]。

    4 結(jié) 論

    重組菌B.subtilisKpg分泌纖維素酶的最適反應(yīng)溫度為60 ℃,最適pH為6.0,在兩者協(xié)同作用下纖維素酶活性為113.58 U/mL。重組菌B.subtilisKpg能夠有效減少麩皮中纖維素含量,同時明顯提高真蛋白含量。

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