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    背根神經(jīng)節(jié)巨噬細(xì)胞遷移抑制因子參與調(diào)控神經(jīng)病理性疼痛的機(jī)制研究*

    2018-11-29 05:42:22龍迎曦唐軼珣黃曉玲潘冰冰劉永平魏來孔高茵
    關(guān)鍵詞:機(jī)械

    龍迎曦,唐軼珣,黃曉玲,潘冰冰,劉永平,魏來,孔高茵

    [湖南省人民醫(yī)院(湖南師范大學(xué)附屬第一醫(yī)院) 麻醉科(湖南省圍術(shù)期加速康復(fù)麻醉臨床醫(yī)學(xué)研究中心),湖南 長沙410005]

    神經(jīng)病理性疼痛困擾全世界約1.0~5.6億人,其病因復(fù)雜,疼痛程度嚴(yán)重,給患者帶來極大的痛苦[1-2]。因此,為深入研究神經(jīng)病理性疼痛產(chǎn)生的機(jī)制,學(xué)者們建立許多重復(fù)性好、臨床模擬度高的動物模型,其中最經(jīng)典的是慢性坐骨神經(jīng)壓迫(chronic constriction injury, CCI)模型?;趧游锬P秃团R床層面的研究提示,炎癥反應(yīng)、神經(jīng)受損后的異常放電、膠質(zhì)細(xì)胞的活化和中樞及外周的敏化是神經(jīng)病理性疼痛的主要機(jī)制[2-4]。其中,炎癥反應(yīng)是導(dǎo)致神經(jīng)病理性疼痛形成的重要機(jī)制[5]。當(dāng)外周神經(jīng)受損時,背根神經(jīng)節(jié)上的炎癥反應(yīng)激活膠質(zhì)細(xì)胞,導(dǎo)致神經(jīng)細(xì)胞的敏化[5]。因此,以神經(jīng)受損后產(chǎn)生的炎癥反應(yīng)為靶向目標(biāo),給神經(jīng)病理性疼痛的治療帶來廣闊的前景。

    巨噬細(xì)胞遷移抑制因子(macrophage migration inhibitory factor, MIF)是第一個被發(fā)現(xiàn)在免疫性炎癥中發(fā)揮多效炎癥介質(zhì)功能的細(xì)胞因子,可由免疫細(xì)胞如巨噬細(xì)胞、B細(xì)胞以及非免疫細(xì)胞如內(nèi)皮細(xì)胞等合成,它主要通過抑制巨噬細(xì)胞游走,增強(qiáng)巨噬細(xì)胞的吞噬、內(nèi)殺傷等作用促進(jìn)炎癥反應(yīng)[6]。本研究復(fù)制CCI模型,通過觀察鞘內(nèi)注射MIF拮抗劑ISO-1對CCI大鼠機(jī)械痛閾、脊髓背根神經(jīng)節(jié)(dorsal root ganglion, DRG)MIF、腫瘤壞死因子α(tumor necrosis factor-α, TNF-α)、白細(xì)胞介素1β(interleukin-1β, IL-1β)表達(dá)變化、坐骨神經(jīng)電生理的影響,探討DRG中MIF參與調(diào)控神經(jīng)病理性疼痛的機(jī)制,從炎癥機(jī)制的角度為開發(fā)特異性高、鎮(zhèn)痛效果良好的新型藥物提供理論依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    10%水合氯醛(購自湖南省人民醫(yī)院),MIF拮抗體劑ISO-1(MIF拮抗劑)購自德國Calbiochem公司,TNF-α及IL-1β ELISA試劑盒(武漢博士德生物工程有限公司),小鼠單克隆Anti-MIF抗體和大鼠單克隆Anti-GAPDH抗體購自Santa Cruz公司,電子von Frey測痛儀(型號2390)購自美國IITC。

    1.2 動物及分組

    24只無特定病原體(SPF)級雄性SD大鼠,由湖南省人民醫(yī)院動物實驗中心代購,體重220~250 g,飼養(yǎng)于24℃室溫條件下,相對濕度50%~60%,自由攝食和飲水。隨機(jī)分為3組,每組8只:假手術(shù)組(Sham組);CCI組(CCI術(shù)后,鞘內(nèi)連續(xù)注射溶劑——10%DMSO 10 μl 14 d);ISO-1組(CCI術(shù)后,鞘內(nèi)連續(xù)注射含 ISO-1 30 μg的 10% DMSO 10 μl 14 d)。該實驗所有與動物飼養(yǎng)和操作都遵循國際動物保護(hù)協(xié)會和國際疼痛研究學(xué)會的相關(guān)規(guī)定,并經(jīng)湖南省人民醫(yī)院/湖南師范大學(xué)附屬第一醫(yī)院倫理委員會批準(zhǔn)(倫理批號:2016年009號)。

    1.3 鞘內(nèi)置管

    腹腔注射10%水合氯醛麻醉(劑量350 mg/kg)。刺激大鼠無體動后,置大鼠于俯臥位,通過髂棘定位于L3~L4間隙,去毛,使用絡(luò)合碘消毒,作長2~3 cm的縱切口,分離L4棘突兩側(cè)肌肉,切除L4棘突和鄰近椎板,定位L3與L4棘突間隙,置入25 G針,穿破黃韌帶及硬脊膜后,可見腦脊液溢出。經(jīng)破口處插入PE-10導(dǎo)管2 cm,18 G硬膜外穿刺針在大鼠皮下穿一隧道,導(dǎo)管的另一端送至頸背部,外露2~3 cm固定,外口封閉,防止腦脊液外溢。排除置管時癱瘓的大鼠(可能為脊髓受損所致,出現(xiàn)概率約為20%)。術(shù)后于傷口處涂抹金霉素軟膏,并于術(shù)后3 d肌內(nèi)注射青霉素1萬IU/d抗感染。置管后第3天,導(dǎo)管內(nèi)注射2%利多卡因20 μl。若出現(xiàn)下肢癱瘓,且30~40 min左右恢復(fù),即提示鞘內(nèi)置管成功。每次注藥時,使用微量注射器(規(guī)格50 μl)給藥10 μl,注射時間為20 s,再用10μl生理鹽水沖管,確保藥液完全進(jìn)入鞘內(nèi)。

    1.4 CCI模型的復(fù)制

    按照BENNET等人的方法制備大鼠左后肢CCI模型[7],方法如下:大鼠鞘內(nèi)置管5 d后,腹腔注射10%水合氯醛麻醉(劑量350 mg/kg)。刺激大鼠無體動后,置大鼠于俯臥位,在左股骨外側(cè)切開皮膚,鈍性分離肌肉,暴露坐骨神經(jīng),用4-0鉻制羊腸線松結(jié)扎坐骨神經(jīng)干4道,每道間距為1 mm。小腿肌肉輕度顫動且不影響神經(jīng)外膜血運的結(jié)扎強(qiáng)度為最佳。術(shù)畢使用金霉素眼膏涂抹傷口,并使用青霉素肌內(nèi)注射1萬IU/d,抗感染3 d。術(shù)后單籠飼養(yǎng),加強(qiáng)營養(yǎng)。Sham組大鼠僅暴露坐骨神經(jīng)不進(jìn)行結(jié)扎。

    1.5 機(jī)械痛閾測定

    在術(shù)前1天,術(shù)后第1、3、5、7、10及14天(鞘內(nèi)給藥2 h后)測定各組大鼠機(jī)械痛閾值(術(shù)前1天,術(shù)后第1、3、5及7天測8只大鼠機(jī)械痛閾值;由于第7天每組處死4只大鼠取組織,因此術(shù)后第10和14天測余下4只大鼠機(jī)械痛閾值):將大鼠放置于距實驗臺高30 cm的鐵絲網(wǎng)架上,大鼠適應(yīng)且處于安靜狀態(tài)后,用電子von Frey痛閾測定儀探頭接觸小鼠患側(cè)肢體足底中央,緩慢增加壓力直至肢體抬起。此時儀器的讀數(shù)為小鼠機(jī)械性縮足閾值。每只動物測5次,取平均值。

    1.6 ELISA檢測脊髓背根神經(jīng)節(jié)炎癥因子TNF-α、IL-1β的濃度

    于術(shù)后第7和14天,腹腔注射10%水合氯醛350 mg/kg麻醉后,采用頸椎脫臼法,每組各處死大鼠4只,沿棘突切開皮膚,剪除棘突和椎板,快速取出取各組大鼠左側(cè)L4~6脊髓DRG,置于EP管中,置入-80℃冰箱冷凍保存。

    檢測前將脊髓DRG取出,稱質(zhì)量,標(biāo)本放入4℃、pH=7.4的磷酸鹽緩沖液中,制成勻漿液,4℃下20 000 r/min離心30 min,取上清液(主要含有非膜結(jié)合TNF-α),置于4℃冰箱中保存;再用pH=7.4的PBS懸浮上述離心后的沉淀,4℃孵育1 h,然后4℃下20 000 r/min離心20 min,取上清液(主要含膜結(jié)合的TNF-α)。兩上清液之和即為各組織中的總TNF-α含量,混勻待測。采用ELISA試劑盒檢測TNF-α濃度,Bio-Rad酶標(biāo)儀測定450 nm波長處吸光度(A)值,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計算TNF-α相對濃度,結(jié)果以pg/mg表示。

    檢測前將脊髓DRG取出,稱重量,然后將其置于4℃、pH=7.4的磷酸鹽緩沖液中,制成勻漿液。使用玻璃勻漿器在4℃下勻漿,4 ℃下20 000 r/min離心30 min,取上清液。按照ELISA試劑盒提供的標(biāo)準(zhǔn)步驟測定IL-1β濃度,Bio-Rad酶標(biāo)儀測定450 nm波長處吸光度(A)值,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計算IL-1β相對濃度,結(jié)果以pg/mg表示。

    1.7 Western blot檢測患肢側(cè)背根神經(jīng)節(jié)MIF的表達(dá)

    于術(shù)后第7和14天,腹腔注射10%水合氯醛350 mg/kg麻醉后,采用頸椎脫臼法處死大鼠,沿棘突切開皮膚除棘突和椎板,快速取出取各組大鼠左側(cè)L4~6脊髓DRG,取出已收集的脊髓DRG,加入組織裂解液,提取總蛋白,采用BCA蛋白定量檢測試劑盒測定蛋白濃度。取50 μl蛋白行SDS-PAGE電泳,轉(zhuǎn)膜,室溫下5%脫脂奶粉封閉2 h,加入MIF抗體(1∶1 000稀釋)4℃下孵育過夜。重復(fù)清洗3次后,加入辣根過氧化物酶標(biāo)記的二抗工作液(羊抗兔1∶2 000),室溫下孵育1 h,增強(qiáng)化學(xué)發(fā)光顯色,采用Alpha Innotech光密度分析軟件,以GAPDH為內(nèi)參進(jìn)行定量分析,每組重復(fù)檢測3次。圖像分析軟件定量分析靶蛋白及內(nèi)參GAPDH條帶含量,計算MIF/GAPDH比值,進(jìn)行統(tǒng)計分析。

    1.8 大鼠坐骨神經(jīng)傳導(dǎo)速度測定

    于術(shù)后第14天測定大鼠坐骨神經(jīng)的傳導(dǎo)速度(conduction velocity, CV)(n=4)。采用 BL-420E 生物機(jī)能實驗系統(tǒng)軟件(成都泰盟公司)肌肉神經(jīng)實驗中神經(jīng)干興奮傳導(dǎo)速度測定模塊,刺激并記錄動作電位。腹腔注射10%水合氯醛麻醉(350 mg/kg)。刺激大鼠無體動后,置大鼠于俯臥位固定,切開皮膚,分離肌肉,充分暴露結(jié)扎段坐骨神經(jīng)。游離出坐骨神經(jīng)干,用兩絕緣電極分別勾于結(jié)扎坐骨神經(jīng)處的近端和遠(yuǎn)端(兩絕緣電極距離為2 cm),其中刺激電極位于記錄電極的遠(yuǎn)端。接地線連接的鉗夾夾住皮膚。確認(rèn)接觸良好后,施加電刺激,找出誘發(fā)穩(wěn)定動作電位的最大刺激,記錄到穩(wěn)定的動作電位后,記錄潛伏期(兩電極之間的距離刺激偽跡出現(xiàn)至動作電位的起始部)。并計算出(CV)。

    1.9 統(tǒng)計學(xué)方法

    數(shù)據(jù)分析采用SPSS 22.0統(tǒng)計軟件,計量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,比較采用t檢驗,配對t檢驗,單因素方差分析或重復(fù)測量設(shè)計的方差分析,方差分析的兩兩比較用LSD-t檢驗,P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 ISO-1對CCI大鼠機(jī)械痛敏的影響

    3組大鼠在術(shù)前1天的機(jī)械痛閾值差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。3組大鼠術(shù)后第1、3、5及7天的機(jī)械痛閾值,采用重復(fù)測量設(shè)計的方差分析,結(jié)果:①不同時間點的機(jī)械痛閾值有差異(F=22.843,P=0.000);②3組大鼠機(jī)械痛閾值有差異(F=58.170,P=0.000);③3組大鼠的機(jī)械痛閾值變化趨勢有差異(F=37.413,P=0.000)。見表1。3組大鼠術(shù)后第10和14天的機(jī)械痛閾值有差異(第7天:F=139.399,P=0.000;第14天:F=246.908,P=0.000);與Sham組比較,CCI組大鼠機(jī)械痛閾值均降低(P<0.05);與CCI組比較,ISO-1組大鼠機(jī)械痛閾值均升高(P<0.05)。見表2。

    表1 各組大鼠各時間點機(jī)械痛閾值比較 (n =8,±s)

    表1 各組大鼠各時間點機(jī)械痛閾值比較 (n =8,±s)

    組別 術(shù)前1天 術(shù)后第1天 術(shù)后第3天 術(shù)后第5天 術(shù)后第7天Sham 組 13.65±1.66 13.26±1.39 12.81±1.54 14.13±1.92 13.60±1.87 CCI組 13.00±1.49 5.12±0.90 4.10±0.68 4.56±0.84 4.23±0.78 ISO-1 組 13.16±1.08 4.99±1.08 4.20±1.22 4.99±1.08 4.20±1.22

    表2 各組大鼠術(shù)后第7和14天的機(jī)械痛閾值比較(n =4,±s)

    表2 各組大鼠術(shù)后第7和14天的機(jī)械痛閾值比較(n =4,±s)

    組別 術(shù)后第7天 術(shù)后第14天Sham 組 13.26±1.39 12.81±1.54 CCI組 5.12±0.90 4.1±0.68 ISO-1組 10.85±1.33 10.45±1.24 F值 139.399 246.908 P值 0.000 0.000

    2.2 ISO-1對CCI大鼠脊髓背根神經(jīng)節(jié)炎癥細(xì)胞因子IL-1β、TNF-α表達(dá)的影響

    第7和14天,3組大鼠IL-1β表達(dá)水平,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。與Sham組比較,在術(shù)后第7和14天,CCI組大鼠DRG中IL-1β表達(dá)均升高(P<0.05);與CCI組比較,術(shù)后第7和14天,ISO-1組大鼠DRG中IL-1β表達(dá)均下調(diào)(P<0.05);與Sham組比較,術(shù)后第7天,ISO-1組大鼠DRG處IL-1β表達(dá)增加(P<0.05),術(shù)后第14天,ISO-1組大鼠DRG中IL-1β表達(dá)差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。見表3。

    第7和14天,3組大鼠TNF-α表達(dá)差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。與Sham組比較,在術(shù)后第7和14天,CCI組大鼠DRG中TNF-α表達(dá)升高(P<0.05);與CCI組比較,術(shù)后第7和14天,ISO-1組大鼠DRG中TNF-α表達(dá)下調(diào)(P<0.05)。與Sham組比較,術(shù)后第7和14天,ISO-1組大鼠DRG中TNF-α表達(dá)增加(P<0.05)。見表4。

    表3 各組大鼠術(shù)后第7和14天的IL-1β表達(dá)(n =4,±s)

    表3 各組大鼠術(shù)后第7和14天的IL-1β表達(dá)(n =4,±s)

    注:1)與Sham組比較,P <0.05;2)與CCI組比較,P <0.05

    組別 術(shù)后第7天 術(shù)后第14天Sham 組 6.28±0.72 6.18±0.97 CCI組 17.42±0.781) 15.62±0.651)ISO-1 組 9.0±0.581)2) 6.96±0.982)F值 345.619 177.345 P值 0.000 0.000

    2.3 ISO-1對CCI大鼠脊髓背根神經(jīng)節(jié)MIF表達(dá)的影響

    術(shù)后第7和14天,3組大鼠MIF表達(dá)差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。與Sham組比較,術(shù)后第7和14天CCI組大鼠DRG中MIF表達(dá)均升高(P<0.05)。與CCI組比較,ISO-1組大鼠術(shù)后第7和14天DRG中MIF表達(dá)均下降,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。與Sham組比較,ISO-1組大鼠術(shù)后第7天DRG中MIF表達(dá)無變化(P>0.05),第 14 天表達(dá)增加(P<0.05)。見表5和圖1。

    2.4 ISO-1對CCI大鼠坐骨神經(jīng)CV的影響

    3組大鼠坐骨神經(jīng)CV的比較,經(jīng)方差分析,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(F=7 481.400,P=0.000);與Sham組比較,CCI大鼠坐骨神經(jīng)CV降低(P<0.05),與CCI組比較,ISO-1組大鼠坐骨神經(jīng)CV差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。見圖2。

    表4 各組大鼠術(shù)后第7、14天的TNF-α表達(dá)(n =4,±s)

    表4 各組大鼠術(shù)后第7、14天的TNF-α表達(dá)(n =4,±s)

    注:1)與Sham組比較,P <0.05;2)與CCI組比較,P <0.05

    組別 術(shù)后第7天 術(shù)后第14天Sham 組 2.34±0.73 2.50±0.61 CCI組 8.08±0.741) 7.1±0.721)ISO-1 組 4.14±0.551)2) 3.98±0.591)2)F值 93.140 70.505 P值 0.000 0.000

    表5 各組大鼠術(shù)后第7和14天的MIF表達(dá)(n =4,±s)

    表5 各組大鼠術(shù)后第7和14天的MIF表達(dá)(n =4,±s)

    注:1)與Sham組比較,P <0.05;2)與CCI組比較,P <0.05

    組別 術(shù)后第7天 術(shù)后第14天Sham 組 0.14±0.006 0.13±0.02 CCI組 0.80±0.011) 0.87±0.041)ISO-1 組 0.13±0.0052) 0.29±0.051)2)F值 7 481.400 320.773 P值 0.000 0.000

    圖1 各組大鼠DRG中MIF的表達(dá)

    圖2 各組大鼠坐骨神經(jīng)CV比較

    3 討論

    本研究顯示,坐骨神經(jīng)損傷后,受損部位的動作電位的傳導(dǎo)速度減慢,患肢表現(xiàn)出機(jī)械痛覺過敏,同時相應(yīng)DRG中MIF及炎癥細(xì)胞因子IL-1β、TNF-α表達(dá)上調(diào)。鞘內(nèi)注射ISO-1能減輕CCI大鼠患肢的機(jī)械痛覺過敏,下調(diào)患肢相應(yīng)的DRG中MIF、IL-1β及TNF-α的表達(dá),但不能改善受損神經(jīng)的傳導(dǎo)速度。本結(jié)果揭示MIF通過上調(diào)DRG中炎癥反應(yīng)參與調(diào)控神經(jīng)病理性疼痛的形成。

    MIF是一種多功能的促炎因子之一,與多種疾病相關(guān)[8]。神經(jīng)受損后中樞和外周神經(jīng)系統(tǒng)中的MIF表達(dá)改變提示其參與神經(jīng)元的變性和再生的調(diào)節(jié)[9]。DRG是外周痛覺信息傳入的第一級神經(jīng)元,組織損傷后,神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞和施旺細(xì)胞被激活并釋放一系列炎癥細(xì)胞因子,導(dǎo)致炎癥的發(fā)生;該細(xì)胞的激活也導(dǎo)致疼痛介質(zhì)的產(chǎn)生,降低動作電位的閾值,使膠質(zhì)細(xì)胞敏化,導(dǎo)致外周和中樞敏化,從而導(dǎo)致慢性神經(jīng)病理神經(jīng)痛形成[10]。筆者通過結(jié)扎大鼠左側(cè)的坐骨神經(jīng)復(fù)制CCI模型,行為學(xué)結(jié)果顯示,CCI術(shù)后,大鼠有穩(wěn)定的機(jī)械痛閾降低。蛋白印跡檢測證明同側(cè)DRG中MIF表達(dá)上調(diào)與CCI誘導(dǎo)的疼痛密切相關(guān),且表現(xiàn)出時間依賴性。既往研究證實,在神經(jīng)病理性疼痛中,脊髓背角MIF表達(dá)也升高[11]。上述結(jié)果提示,MIF在脊髓背角和DRG 2個層面都與神經(jīng)病理性疼痛的形成相關(guān)。既往研究證實,ISO-1 30 μg能抑制炎性痛[12],在筆者的前期實驗中,發(fā)現(xiàn)該劑量也能抑制CCI大鼠的機(jī)械痛敏。鞘內(nèi)注射ISO-1后,術(shù)后第1和3天實驗動物的機(jī)械痛閾并未增加,提示此劑量的ISO-1的鎮(zhèn)痛效應(yīng)出現(xiàn)在觀察期的中晚期。既往研究證實,在炎癥或神經(jīng)病理性疼痛模型中,脊髓背角小神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞和神經(jīng)元可能是炎性和神經(jīng)病性情況下MIF表達(dá)上調(diào)的主要來源[11]。然而,在背根神經(jīng)節(jié)中,是否存在者不同細(xì)胞的表達(dá)差異,有待進(jìn)一步探究。

    炎癥細(xì)胞因子導(dǎo)致的神經(jīng)炎癥在神經(jīng)病理性疼痛的發(fā)生、發(fā)展中越來越受到關(guān)注。其中在背根神經(jīng)節(jié)層面,促炎因子IL-1β和TNF-α與神經(jīng)病理性疼痛關(guān)系的研究較多。IL-1β可通過作用于辣椒素受體和IL-1R受體作用于p38 MAPK通路誘發(fā)疼痛[13];TNF-α通過激活p38 MAPK通路促進(jìn)Na+內(nèi)流,降低興奮性閾值,還可與受體結(jié)合后激活細(xì)胞NF-κB,引起炎癥級聯(lián)反應(yīng),促進(jìn)疼痛的產(chǎn)生[14]。而作為重要的促炎因子,MIF可通過cPLA2-COX2通路調(diào)節(jié)小膠質(zhì)細(xì)胞中其他炎癥介質(zhì)TNF-α、IL-1β、IL-6的表達(dá)[14]。本實驗中,鞘內(nèi)注射ISO-1可抑制DRG中TNF-α、IL-1β的表達(dá)。因此,MIF可能是促使疼痛形成的神經(jīng)炎癥級聯(lián)反應(yīng)中的上游介質(zhì)。

    神經(jīng)電生理指標(biāo)是評估神經(jīng)受損、功能狀態(tài)最客觀的指標(biāo)。其中,神經(jīng)CV是神經(jīng)沖動傳導(dǎo)的直接表現(xiàn)。在本實驗中,使用神經(jīng)電生理技術(shù)測量實驗動物受損坐骨神經(jīng)的動作電位傳導(dǎo)速度,結(jié)果顯示,與CCI組比較,ISO-1組的坐骨神經(jīng)CV并未改善。筆者推測,鞘內(nèi)注射ISO-1通過抑制脊髓和DRG中MIF的促炎作用,從而減輕CCI模型大鼠的機(jī)械痛敏,但并不能修復(fù)受損的坐骨神經(jīng)。但在受損神經(jīng)局部使用ISO-1處理是否能改善坐骨神經(jīng)的功能,將在進(jìn)一步的實驗中探索。

    本研究存在以下不足:首先,DRG中不同細(xì)胞對神經(jīng)病理性疼痛的貢獻(xiàn)不一,該研究并未從細(xì)胞層面去探究相關(guān)細(xì)胞的活化狀態(tài)與MIF的表達(dá)關(guān)系。其次,在該研究中,鞘內(nèi)注射ISO-1并未完全緩解CCI大鼠的疼痛,有可能與ISO-1的劑量相關(guān),也可能與存在其他的機(jī)制參與CCI大鼠的痛覺形成有關(guān)。因此,在下一階段的研究中,筆者將從上述的不足著手,對背根神經(jīng)節(jié)MIF參與調(diào)控神經(jīng)病理性疼痛的機(jī)制進(jìn)行更深一步的研究。

    綜上所述,MIF可能通過上調(diào)炎癥細(xì)胞因子的表達(dá)參與神經(jīng)病理性疼痛的形成。因此,從炎癥角度,針對MIF拮抗劑的研究將為神經(jīng)病理性疼痛的治療提供新視角。

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