增效縮節(jié)安化學封頂對棉花主莖生長的影響及其相關機制

安 靜 黎 芳 周春江 田曉莉,* 李召虎

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增效縮節(jié)安化學封頂對棉花主莖生長的影響及其相關機制

安 靜1黎 芳1周春江2田曉莉1,*李召虎1

1中國農(nóng)業(yè)大學農(nóng)學院 / 植物生長調(diào)節(jié)劑教育部工程研究中心, 北京 100193;2北京市植物保護站, 北京 100029

縮節(jié)安(1,1-dimethyl piperidinium chloride, DPC)是棉花生產(chǎn)中廣泛應用的植物生長延緩劑。增效DPC (DPC+, 25%水劑)助劑中的成分能對植物幼嫩組織表面形成輕微傷害, 實踐證明其可實現(xiàn)棉花化學封頂、起到替代人工打頂?shù)淖饔谩樘骄緿PC+作用機制, 本試驗于2015年在田間條件下研究了棉花盛花期后(7月24日)應用DPC+(1125 mL hm–2)對棉花主莖生長和頂芽解剖結(jié)構、氧化還原狀態(tài)及相關基因表達的影響。結(jié)果表明, 與對照(同期噴施清水)相比, DPC+處理后棉花株高降低, 白花以上節(jié)位(nodes above the last white flower, NAWF)更早降到5; 處理后3 d即可觀察到主莖生長點較對照扁平, 生長點的縱橫比顯著低于對照; 處理后6 h棉花頂芽的O2?、H2O2和MDA含量高于對照, 而開花相關基因和及頂端分生組織相關基因的表達量則低于對照?；瘜W封頂劑DPC+可引起棉株頂芽的短期氧化應激反應, 降低與主莖生長點發(fā)育和花芽分化相關基因的表達水平, 從而延緩棉株生長和花芽的產(chǎn)生, 實現(xiàn)化學封頂。

棉花; 增效縮節(jié)安; 化學封頂; 頂芽解剖結(jié)構; 氧化還原; 基因表達

棉花打頂(或稱摘心、掐尖)是我國各棉區(qū)普遍采用的一項整枝技術, 可控制棉株主莖生長, 避免出現(xiàn)無效果枝, 增加光合產(chǎn)物向果枝的運輸[1], 還可防止倒伏、減輕蟲害和爛鈴[2-4]。目前棉花打頂仍以人工操作為主, 費工費時、勞動效率低, 制約了棉花生產(chǎn)輕簡化、規(guī)?；⒕珳驶蜋C械化作業(yè)[5-6]。自20世紀60年代, 國內(nèi)逐漸開展棉花打頂機的相關研究, 但機械打頂對棉株的農(nóng)藝性狀、種植模式及整地質(zhì)量要求較高, 易出現(xiàn)過打或漏打現(xiàn)象[7]?；瘜W封頂是指利用植物生長調(diào)節(jié)劑強力延緩或抑制棉花頂芽生長, 控制棉花頂端優(yōu)勢, 從而達到調(diào)節(jié)營養(yǎng)生長與生殖生長的目的[5]。與人工打頂和機械打頂相比, 化學封頂簡單方便、勞動強度低, 且有效避免了人工打頂和機械打頂易出現(xiàn)的物理傷害、時間跨度大、漏打和重復打頂?shù)葐栴}[5]。

縮節(jié)安(1,1-二甲基哌啶鎓; 1,1-dimethyl piperid-inium chloride, DPC)是在國內(nèi)外棉花生產(chǎn)中廣泛應用的植物生長延緩劑, 從種子萌發(fā)開始至打頂后多次施用DPC的“系統(tǒng)化控”技術是我國棉花生產(chǎn)的常規(guī)管理措施[1,8]。增效DPC (25% DPC水劑, 簡稱DPC+)較普通DPC可溶性粉劑的有效期長, 并可借助助劑中的成分對幼嫩組織表面形成輕微傷害[9-11], 起到化學封頂?shù)淖饔肹9,12-14], 但其作用機制尚不清晰。

本文在DPC“系統(tǒng)化控”的基礎上應用化學封頂劑DPC+, 研究其對棉花主莖生長、頂芽解剖結(jié)構、氧化還原狀態(tài)和開花等基因表達的影響, 旨在揭示DPC+化學封頂?shù)男螒B(tài)、生理和分子機制, 從而為該技術的合理應用提供理論指導。

1 材料與方法

試驗于2015年在北京市海淀區(qū)中國農(nóng)業(yè)大學上莊實驗站(40°08￠N, 110°10￠E)進行, 試驗地土壤類型為潮土, 前茬作物為棉花。土壤基礎肥力情況: 有機質(zhì)6.96 g kg–1、pH 7.86、堿解氮21.10 mg kg–1、全氮0.46 g kg–1、速效磷6.96 mg kg–1、速效鉀53.47 mg kg–1。供試棉花品種為欣試17, 由河北省河間市國欣農(nóng)村技術服務總會提供。增效縮節(jié)安(DPC+)為25%水劑, 由北京市農(nóng)業(yè)技術推廣站和中國農(nóng)業(yè)大學植物生長調(diào)節(jié)劑教育部工程研究中心共同研發(fā), 由新疆金棉科技有限責任公司生產(chǎn)并提供。普通DPC為98%的可溶性粉劑, 由江蘇潤澤農(nóng)化有限公司生產(chǎn)。

1.1 試驗設計

采用隨機區(qū)組設計, 重復3次?；瘜W封頂處理于棉花盛花期后(7月24日)施用DPC+, 劑量為1125 mL hm–2; 對照小區(qū)噴施清水。處理和對照在生育期間均進行常規(guī)DPC “系統(tǒng)化控”, DPC應用時間和劑量為苗期(6月3日) 7.5 g hm–2、蕾期(6月21日) 15 g hm–2、初花期(7月13日) 75 g hm–2、化學封頂后7 d (7月31日) 150 g hm–2。6行區(qū), 行長7 m, 行距0.9 m, 小區(qū)面積37.8 m2。

1.2 試驗地管理

于2015年4月26日播種, 種植密度約6萬株 hm–2。播前施基肥, 包括有機肥3750.0 kg hm–2、N (尿素) 153.0 kg hm–2、P2O5(磷酸二銨) 82.8 kg hm–2和K2O (硫酸鉀) 135.0 kg hm–2。盛花期追施N (尿素) 138.0 kg hm–2和K2O (硫酸鉀) 120.0 kg hm–2。其他田間管理與當?shù)卮筇锷a(chǎn)一致。

1.3 調(diào)查和取樣方法

1.3.1 株高及白花以上節(jié)位(nodes above the last white flower, NAWF) 處理前在每小區(qū)掛牌標記10株代表性植株, 處理后定期調(diào)查株高及NAWF。

1.3.2 頂芽解剖結(jié)構 于處理后0、3、6及11 d取樣。從每小區(qū)選5株代表性植株, 取下頂芽并剝?nèi)ネ鈬兹~, 將約0.5 cm長的頂芽放入FAA固定液, 真空抽氣5 min。經(jīng)梯度乙醇脫水、二甲苯透明和石蠟包埋后, 利用Leica RM2235石蠟切片機(Germany)切片, 厚度8 μm, 經(jīng)粘片、脫蠟、番紅-固綠對染、中性樹脂封片等常規(guī)石蠟切片步驟制作成永久制片, 采用配備DP80 CCD的Olympus顯微鏡(Japan)觀察和拍照。利用ImageJ/Fiji軟件統(tǒng)計棉花頂芽生長點的長和高, 并計算其縱橫比。

1.3.3 氧化還原狀態(tài) 于處理后0、6、24、48、72和120 h取樣。從每小區(qū)選4株代表性植株, 取頂芽部位(包括剛展開的新葉), 液氮速凍后于–40℃保存?zhèn)溆谩?/p>

參照Sergiev方法[15]測定H2O2含量; 采用羥胺氧化的方法測定超氧陰離子自由基(O2?)含量; 利用與硫代巴比妥酸(TBA)顯色反應測定丙二醛(MDA)含量[16]。

1.3.4 基因表達 于處理后0、6、24、48、72及120 h取樣。從每小區(qū)選代表性植株3株, 取頂芽部位(不包括剛展開的新葉), 液氮速凍后于-80℃保存?zhèn)溆谩?/p>

用植物RNA提取試劑盒(艾德萊, 北京)提取棉花葉片的總RNA, 用M-MLV反轉(zhuǎn)錄試劑盒(TaKaRa, Japan)合成cDNA。根據(jù)(GenBank登錄號為KJ622311.1)、(GenBank登錄號為GU929695)和(CottongenCotAD_04603)基因序列設計qRT-PCR特異性引物, 以(GenBank登錄號為AY305737.1)作為內(nèi)參, 引物序列見表1。用SYBR green II熒光染料試劑盒(TaKaRa, Japan)進行qRT-PCR, 擴增條件為95℃ 30 s; 95℃ 5 s, 60℃ 35 s, 40個循環(huán)。采用2–ΔΔCT對基因的相對表達量進行分析。

1.4 數(shù)據(jù)統(tǒng)計

應用IBM SPSS Statistics 20軟件統(tǒng)計分析數(shù)據(jù), Microsoft Excel 2016軟件作圖。

表1 qRT-PCR引物序列

2 結(jié)果與分析

2.1 DPC+化學封頂對棉株生長的影響

用化學封頂劑DPC+處理7 d后, 棉株生長速度逐漸降低; 32 d后, 株高比對照低5.3 cm (圖1和圖2-A)。白花以上節(jié)位(nodes above the last white flower, NAWF)可以反映棉株生殖生長與營養(yǎng)生長的協(xié)調(diào)狀況和熟期[17-18]。一般情況下, NAWF在初花期最高, 之后逐漸下降。當NAWF達到5.0時, 棉株進入生理成熟階段(physiological cutout), 即棉株不再形成有效花[19]。DPC+化學封頂處理后, 棉株NAWF更早降到5, 表明其較早進入生理成熟期; 處理14 d和22 d后, NAWF分別為3.8和3.3, 同期對照的NAWF顯著高于處理, 分別為4.3和4.4 (圖2-B)。

圖1 化學封頂劑DPC+對棉花株高的影響

比例尺: 10 cm。Scale bar: 10 cm.

圖2 化學封頂劑DPC+對棉花株高(A)及白花以上節(jié)位(B)的影響

誤差線表示3次重復的標準誤, *< 0.05, ***< 0.001。

Error bars represent standard error,= 3 biological replicates, *< 0.05, ***< 0.001.

2.2 DPC+化學封頂對棉花頂芽解剖結(jié)構的影響

棉花的主莖頂端分生組織為近乎扁平的圓丘狀, 棉株地上部的各類器官均由此分化發(fā)育形成[1,20]。由圖3可知, 化學封頂劑DPC+處理后3 d, 棉株主莖生長點較對照趨于平緩, 生長點的縱橫比與對照相比顯著降低。此后對照棉株的生長點也較之前平緩、縱橫比也開始下降, 這是棉株自身營養(yǎng)生長勢減弱和DPC“系統(tǒng)化控”最后一次(化學封頂后7 d)施藥共同作用的結(jié)果。但同期DPC+化學封頂生長點的形態(tài)仍較對照更扁平、縱橫比仍低于對照, 其中處理后11 d差異顯著。

圖3 化學封頂劑DPC+對棉花頂芽生長點解剖結(jié)構的影響

誤差線表示3次重復的標準誤, *<0.05。比例尺: 100 μm。

Error bars represent standard error,= 3 biological replicates, *<0.05. Scale bar: 100 μm.

2.3 DPC+化學封頂對棉花頂芽氧化還原狀態(tài)的影響

化學封頂處理后, 對照棉株頂芽中的O2?含量逐漸下降(圖4-A), 但H2O2和MDA總體變化不大(圖4-B, C)。與對照相比, DPC+化學封頂后6 h棉株頂芽的兩種活性氧(reactive oxygen species, ROS)組份和MDA均升高, 其中O2?顯著升高, 提示化學封頂導致棉株頂芽出現(xiàn)了短期的氧化脅迫。

2.4 DPC+化學封頂對棉花頂芽中相關基因表達的影響

GhSPL3是一種轉(zhuǎn)錄因子, 在棉花花芽分化、生長階段的轉(zhuǎn)變和花器官的形成上起著重要作用[21]。GhV1屬于B3類轉(zhuǎn)錄因子, 在棉花頂芽部位特異表達, 可能參與棉花花芽起始[22]。GhREV3屬于HD-Zip III轉(zhuǎn)錄因子, 與REVOLUTA (REV)同源性最高, 該轉(zhuǎn)錄因子正調(diào)控植物頂芽分生組織、側(cè)芽分生組織和花芽分生組織的起始及維持[23-26]。化學封頂后棉花頂芽中的表達量與對照相比降低, 其中在封頂后6 h和120 h顯著低于對照(圖5-A);和的表達量在處理后6 h也顯著低于對照(圖5-B, C), 之后幾天與對照差異不大。

3 討論

活性氧(ROS)是一類具有氧化能力的分子、離子和自由基, 包括超氧陰離子(O2?)、羥基自由基(?OH)、過氧化氫(H2O2)、單線態(tài)氧(1O2)等, 可參與調(diào)控植物的生長發(fā)育以及各種脅迫反應[27-29]。MDA是植物膜脂過氧化的產(chǎn)物, 其含量可以反映植物遭受逆境傷害的程度[16]?；瘜W封頂劑DPC+中的助劑可對棉株頂芽造成輕微傷害[9-11], 這一方面可提高DPC的吸收速度、加大DPC的吸收量, 另一方面?zhèn)Ρ旧硪部裳泳徶仓甑纳L。本研究中DPC+處理后6 h, 棉株頂芽的O2?、H2O2和MDA含量均高于對照, 表明DPC+化學封頂對棉株頂芽產(chǎn)生了短時的氧化刺激。這種刺激可能會影響棉花頂芽發(fā)育和開花等生長發(fā)育過程。

圖4 化學封頂劑DPC+對棉花頂芽氧化還原狀態(tài)的影響

誤差線表示3次重復的標準誤, *< 0.05。

Error bars represent standard error,= 3 biological replicates, *< 0.05.

圖5 化學封頂劑DPC+對棉花頂芽中3種基因表達水平的影響

誤差線表示3次重復的標準誤, *< 0.05。

Error bars represent standard error,= 3 biological replicates, *< 0.05.

基因在棉花頂芽和花中表達量最高[21], 在擬南芥中超表達, 轉(zhuǎn)基因株系花期顯著提前, 蓮座葉數(shù)目顯著降低, 莖生葉數(shù)目顯著增加, 表明其參與了側(cè)枝和花芽的分化[30]。GbHB1是海島棉(L.)的一個HD-Zip III轉(zhuǎn)錄因子家族成員, 與擬南芥REV同源,基因在胚珠和莖中的表達量最高, 推測其可能參與棉花纖維發(fā)育的調(diào)控[31]。本課題組已克隆了陸地棉(L.)的基因, 并應用VIGS (Virus-Induced Gene Silencing)技術證明該基因沉默后棉花頂芽發(fā)育逐漸停止(未發(fā)表數(shù)據(jù))。本研究中, DPC+化學封頂后6 h, 棉株頂芽中參與花芽分化()、花芽起始()和頂端分生組織維持()的基因表達量下降, 提示棉株生長速度和花芽分化活性將減弱。

植株生理和分子水分上的改變, 通常引起形態(tài)變化。已有研究表明, DPC+化學封頂與對照相比, 上部主莖節(jié)間和果枝均明顯縮短, 葉片也明顯減小[10-11,32-33]。本研究發(fā)現(xiàn), DPC+化學封頂后, 棉株高度低于對照, 且較對照更早進入生理成熟期。

上述結(jié)果在已有研究的基礎上進一步揭示了棉花DPC+化學封頂?shù)淖饔眉捌錂C制, 這有助于深化對該技術的理解, 也展現(xiàn)了其應用潛力。

4 結(jié)論

應用DPC+(增效DPC)進行棉花化學封頂使頂芽在短時間內(nèi)(6 h)內(nèi)出現(xiàn)氧化應激反應, 并降低了控制主莖生長點發(fā)育和花芽分化基因的表達, 從而延緩了棉株的生長和花芽的產(chǎn)生, 實現(xiàn)了化學封頂。

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Morpho-physiological Responses of Cotton Shoot Apex to the Chemical Topping with Fortified Mepiquat Chloride

AN Jing1, LI Fang1, ZHOU Chun-Jiang2, TIAN Xiao-Li1,*, and LI Zhao-Hu1

1College of Agronomy and Biotechnology, China Agricultural University / Engineering Research Center of Plant Growth Regulator, Ministry of Education, Beijing 100193, China;2Beijing Plant Protection Station, Beijing 100029, China

The plant growth regulator mepiquat chloride (1,1-dimethyl piperidinium chloride, DPC) has been successfully and worldwide used in cotton production. Fortified mepiquat chloride is a type of aqueous formulation containing 25% DPC (referred to DPC+hereafter), whichcan slightly damage young tissues of epidermis. DPC+has shown potential in cotton chemical topping in China, and may replace the conventional manual topping in future. In order to investigate the mechanism of cotton chemical topping with DPC+, this field study was conducted in 2015. DPC+(1125 mL ha–1) was applied after peak blooming stage on 24 July, with water as a control (CK). DPC+application significantly decreased plant height and reduced the nodes above the last white flower (NAWF) as compared with CK. After three days of DPC+treatment, cotton shoot apical meristem (SAM) became flatter than CK, and the ratio of height/length of SAM was significantly less than that of CK. With respect to redox status at shoot apex, O2?production rate, H2O2generation and MDA content were significantly increased at six hours after DPC+application. In addition, the expression of(a SPL transcription factor, which might play an important role in bud differentiation, the transition of growth phase and flower formation),(a B3-domain containing transcription factor, which potentially involved in floral initiation), and(a class III homeodomain-leucine zipper transcription factors, which has key roles in meristem and organ development) were down-regulated by DPC+also at six hours after application. In conclusion, DPC+application during later flowering period can implement cotton chemical topping by inducing short-time oxidative stress at cotton apex, down-regulating genes involved in SAM development, flower bud differentiation, and reducing cotton shoot growth.

cotton; fortified mepiquat chloride; chemical topping; anatomy of shoot apical meristem; redox status; gene expression

2018-05-06;

2018-08-20;

2018-09-19.

10.3724/SP.J.1006.2018.01837

通信作者(Corresponding author): 田曉莉, E-mail: tianxl@cau.edu.cn, Tel: 010-62734550

E-mail: ahananjing@126.com, Tel: 010-62733453

本研究由國家現(xiàn)代農(nóng)業(yè)產(chǎn)業(yè)技術體系建設專項(CARS-18-18)和國家自然科學基金項目(31571588)資助。

This study was supported by the China Agricultural Research System (CARS-18-18) and the National Natural Science Foundation of China (31571588).

URL:http://kns.cnki.net/kcms/detail/11.1809.s.20180917.1521.002.html