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    雷公藤甲素對大鼠坐骨神經(jīng)冷保存后細(xì)胞活性及異體移植后神經(jīng)再生的影響

    2018-11-28 08:31:12汪一黃英如張松李子健曾歡歡冼華
    中國康復(fù)理論與實(shí)踐 2018年11期
    關(guān)鍵詞:異體預(yù)處理營養(yǎng)

    汪一,黃英如,張松,李子健,曾歡歡,冼華

    重慶醫(yī)科大學(xué)中醫(yī)藥學(xué)院,中醫(yī)藥防治代謝性疾病重慶市重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,重慶市400016

    目的 探討雷公藤甲素(T10)對冷保存大鼠坐骨神經(jīng)生物活性和異體移植后神經(jīng)再生的影響。

    方法 取對數(shù)生長期施萬細(xì)胞(SCs),CCK-8檢測1×10-6mol/L、1×10-7mol/L、1×10-8mol/L、1×10-9mol/L T10溶液對SCs增殖的影響。取Sprague-Dawley大鼠雙側(cè)坐骨神經(jīng)15 mm,分別在含0 mol/L、1×10-6mol/L、1×10-7mol/L、1×10-8mol/L、1×10-9mol/L T10的DMEM液中,4℃或37℃ 放置24 h(n=6),Western blotting檢測神經(jīng)生長因子(NGF)、神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞源性神經(jīng)營養(yǎng)因子(GDNF)、腦源性神經(jīng)營養(yǎng)因子(BDNF)表達(dá)。另取大鼠坐骨神經(jīng)15 mm,隨機(jī)分成新鮮神經(jīng)組(A組,n=30)、DMEM保存組(B組,n=30)、T10保存組(C組,n=30)、T10預(yù)處理后DMEM保存組(D組,n=30)、T10預(yù)處理后T10保存組(E組,n=30),4℃保存4周,Calcein-AM/PI雙染激光共聚焦顯微鏡觀察、流式細(xì)胞術(shù)檢測神經(jīng)活細(xì)胞、死細(xì)胞數(shù),Western blotting檢測主要組織相容性復(fù)合體-Ⅰ(MHC-Ⅰ)、MHC-Ⅱ、細(xì)胞間黏附分子-1(ICAM-1)表達(dá)。用上述坐骨神經(jīng)修復(fù)Wistar大鼠坐骨神經(jīng)10 mm缺損(A′組、B′組、C′組、D′組、E′組,n=10),設(shè)立同系移植新鮮組(F′組,n=10)。術(shù)后16周,電生理檢測肌肉復(fù)合動作電位(CMAP)和運(yùn)動神經(jīng)傳導(dǎo)速度(MNCV);取移植段神經(jīng),觀察神經(jīng)纖維數(shù)和神經(jīng)超微結(jié)構(gòu)。

    結(jié)果 SCs在濃度為1×10-9~1×10-7mol/L T10溶液下,細(xì)胞增殖與對照組無顯著性差異(P>0.05)。各濃度T10溶液下,大鼠坐骨神經(jīng)各神經(jīng)營養(yǎng)因子表達(dá)均37℃明顯高于4℃;相同溫度時,1×10-8mol/L組各神經(jīng)營養(yǎng)因子表達(dá)均高于其他濃度組(P<0.05)。大鼠坐骨神經(jīng)冷保存4周后,與B、C、D組相比,E組神經(jīng)活細(xì)胞數(shù)量多,MHC-I、MHC-II、ICAM-1表達(dá)降低(P<0.05)。移植術(shù)后16周,E′組CMAP、MNCV、再生有髓神經(jīng)纖維數(shù)量均優(yōu)于A′、B′、C′、D′組(P<0.05),E′、F′組有髓神經(jīng)纖維數(shù)量多,粗細(xì)均勻,分布廣泛,髓鞘厚。

    結(jié)論 一定濃度T10體外能誘導(dǎo)大鼠坐骨神經(jīng)神經(jīng)營養(yǎng)因子表達(dá),提高冷保存神經(jīng)生物活性,降低免疫原性,促進(jìn)異體移植后受體神經(jīng)再生;冷保存前用一定濃度T10預(yù)處理效果更好。

    自體神經(jīng)移植作為周圍神經(jīng)缺損,尤其是長段神經(jīng)缺損的主要治療手段,因來源有限和造成新的神經(jīng)缺損等隱患,制約了其臨床應(yīng)用。同種異體神經(jīng)具有與自體神經(jīng)相同的組織結(jié)構(gòu),可能是自體神經(jīng)最好的替代物[1-2]。實(shí)現(xiàn)同種異體神經(jīng)的臨床化應(yīng)用,成功的體外保存是基礎(chǔ)。周圍神經(jīng)的體外保存面臨缺血、缺氧和低溫環(huán)境,會造成組織細(xì)胞損傷,導(dǎo)致周圍神經(jīng)的施萬細(xì)胞(Schwann cells,SCs)失去活性甚至死亡;而SCs是周圍神經(jīng)的主要結(jié)構(gòu)和功能細(xì)胞,能分泌多種神經(jīng)營養(yǎng)因子和黏附分子,對神經(jīng)損傷后軸突再生極為重要[3-4]。維持SCs的生物活性是周圍神經(jīng)體外保存的關(guān)鍵。

    雷公藤甲素(triptolide,T10)是我國傳統(tǒng)中藥雷公藤的主要藥理活性成分之一,具有抗炎和免疫抑制等作用[5-6]。T10可保護(hù)PC12細(xì)胞免受氧化應(yīng)激引起的細(xì)胞損傷和凋亡,具有保護(hù)神經(jīng)元、改善神經(jīng)功能的作用[7-9];還能促進(jìn)神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞合成和分泌多種神經(jīng)營養(yǎng)因子[10]。本研究觀察T10對低溫保存大鼠坐骨神經(jīng)生物活性和異體移植后受體神經(jīng)再生的影響,以提高周圍神經(jīng)低溫保存的成功率。

    1 材料與方法

    1.1 實(shí)驗(yàn)細(xì)胞和動物

    大鼠SCs株(RSC96細(xì)胞株):中國科學(xué)院典型培養(yǎng)物保藏委員會細(xì)胞庫,目錄號GNR 6。

    SPF級雌性Sprague-Dawley大鼠300只,體質(zhì)量(200±20)g,重慶醫(yī)科大學(xué)動物中心提供,動物生產(chǎn)許可證號SCXK(渝)2012-0001。Wistar雌性大鼠60只,體質(zhì)量(200±20)g,成都達(dá)碩實(shí)驗(yàn)動物有限公司提供,動物生產(chǎn)許可證號SCXK(川)2015-030。動物實(shí)驗(yàn)均根據(jù)《醫(yī)學(xué)實(shí)驗(yàn)動物管理實(shí)施細(xì)則》的要求,依照動物福利與倫理原則處理。12 h明暗交替,相對濕度65%~75%,室溫22~24℃。

    1.2 試劑與儀器

    T10:上海Aladdin公司。胎牛血清(fetal bovine serum,FBS)、DMSO、0.25%胰酶、Ⅱ型膠原酶、低糖型DMEM培養(yǎng)基、DMEM/F12培養(yǎng)基:美國HYCLONE公司。RPMI1640培養(yǎng)基:美國GIBCO公司。青霉素-鏈霉素雙抗:上海碧云天生物技術(shù)有限公司。神經(jīng)生長因子(nerve growth factor,NGF)、神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞源性神經(jīng)營養(yǎng)因子(glial cell line-derived neurotrophic factor,GDNF)、腦源性神經(jīng)營養(yǎng)因子(brain-derived neurotrophic factor,BDNF)、主要組織相容性復(fù)合體-Ⅰ(major histocompatibility complex-Ⅰ,MHC-Ⅰ)、MHC-Ⅱ、細(xì)胞間黏附分子-1(intercellular cell adhesion molecule-1,ICAM-1)單克隆抗體:美國SANTACRUZ公司。β-actin:武漢中杉金橋生物技術(shù)有限公司。山羊抗兔IgG二抗、山羊抗鼠IgG二抗:北京中杉金橋生物技術(shù)有限公司。CCK-8:日本DOJINDO公司。tritonX-100:北京鼎國昌盛生物技術(shù)有限責(zé)任公司。Calcein-AM:日本東仁化學(xué)科技有限公司。碘化丙啶(propidium iodide,PI):上海前塵生物科技有限公司。FITC-Annexin V凋亡檢測試劑盒Ⅰ:美國BD BIOSCIENCES公司。蛋白抽提試劑盒、SDS-PAGE凝膠制備試劑盒、BCA蛋白濃度測定試劑盒:碧云天生物技術(shù)研究所。

    EPICS-XL型流式細(xì)胞儀:美國BECKMANCOULTER公司。LEICA TCS SP2激光掃描共聚焦顯微鏡:德國LEICA公司。蛋白質(zhì)垂直電泳槽、穩(wěn)壓穩(wěn)流電泳儀、圖像分析軟件:美國BIO-RAD公司。VICTOR3酶標(biāo)儀、Geliance 200凝膠成像系統(tǒng):美國PERKENELMER公司。低溫高速離心機(jī):德國SIGMA公司。H-7500透射電鏡:日本HITACHI公司。

    1.3 方法

    1.3.1 T10冷保存大鼠坐骨神經(jīng)的適宜濃度

    1.3.1.1 對SCs毒性

    取處于對數(shù)生長期SCs,0.25%胰蛋白酶消化成單細(xì)胞懸液,半徑6 cm、1000 r/min離心5 min后棄上清,用含10%FBS的DMEM/F12培養(yǎng)基調(diào)整細(xì)胞濃度為 1×104/ml,接種于 96 孔板中,每孔 200 μl,37℃、5%CO2培養(yǎng)箱繼續(xù)培養(yǎng)。細(xì)胞貼壁后用無血清培養(yǎng)基培養(yǎng)24 h。棄上清,加入含T10 1×10-6mol/L、1×10-7mol/L、1×10-8mol/L、1×10-9mol/L的DMEM溶液(含10%FBS、4%DMSO、1%青-鏈雙抗),每孔200 μl;對照組加等量DMEM溶液,并設(shè)置加入等量蒸餾水的無細(xì)胞空白組。每組設(shè)5個復(fù)孔。37℃、5%CO2培養(yǎng)24 h。終止培養(yǎng)前2 h,每孔加CCK-8試劑20 μl。酶標(biāo)儀450 nm波長下檢測各孔吸光度(A);計(jì)算各組細(xì)胞存活率:

    重復(fù)3次。

    1.3.1.2 坐骨神經(jīng)神經(jīng)營養(yǎng)因子分泌

    Sprague-Dawley大鼠適應(yīng)性喂養(yǎng)5 d后,空腹24 h,SPF動物房無菌操作臺上消毒后鋪巾,10%水合氯醛4 ml/kg腹腔注射麻醉,于梨狀肌下緣5 mm處截取大鼠雙側(cè)坐骨神經(jīng)各約15 mm,生理鹽水沖洗。隨機(jī)數(shù)字表法將大鼠坐骨神經(jīng)浸在含T10 0 mol/L、1×10-6mol/L、1×10-7mol/L、1×10-8mol/L、1×10-9mol/L的DMEM溶液中,4℃或37℃、5%CO2細(xì)胞培養(yǎng)箱預(yù)處理24 h(n=6)。Western blotting檢測NGF、GDNF和BDNF蛋白表達(dá)。

    取神經(jīng)組織約30 mg,10 ml/kg加入裂解液,勻漿,靜置1 h;12000 r/min離心15 min,取上清,BCA法檢測蛋白濃度。SDS-PAGE電泳,轉(zhuǎn)移至PVDF膜,5%脫脂牛奶室溫封閉2 h,TBST洗膜,加一 抗 (NGF 1∶ 1000、 GDNF 1∶ 1000、 BDNF 1∶2000、GAPDH 1∶5000)4℃孵育過夜;TBST洗膜,加山羊抗兔IgG二抗,室溫孵育60 min,TBST洗膜,ECL顯色。Image J軟件處理,以GAPDH為內(nèi)參,計(jì)算目的蛋白與GAPDH的灰度比。生物學(xué)重復(fù)6次。

    1.3.2 坐骨神經(jīng)冷保存

    同法另取SPF級雌性Sprague-Dawley大鼠坐骨神經(jīng)15 mm,隨機(jī)數(shù)字表法分成5組(n=30)。A組不進(jìn)行任何處理;B組在DMEM溶液中4℃保存4周;C組在含1×10-8mol/L T10的DMEM溶液中4℃保存4周;D組在含有1×10-8mol/L T10的DMEM溶液中,37℃、5%CO2預(yù)處理24 h,然后在DMEM溶液中4℃保存4周;E組在含有1×10-8mol/L T10的DMEM溶液中,37℃、5%CO2預(yù)處理24 h,然后在含1×10-8mol/LT10的DMEM溶液中4℃保存4周。

    1.3.2.1 坐骨神經(jīng)活性

    取各組坐骨神經(jīng)各4條(A組檢測時取材,下同),修剪成2 mm,浸入1%tritonX-100中通透30 min,PBS沖洗;室溫Calcein-AM 20 μmol/L孵育30 min,PBS洗滌;PI 50 mg/L染色15 min,PBS洗滌;防熒光淬滅劑封片。激光共聚焦顯微鏡觀察,激發(fā)波長490 nm和535 nm,活細(xì)胞呈綠色熒光,死細(xì)胞呈紅色熒光。觀察熒光強(qiáng)度。

    將坐骨神經(jīng)置含10%胎牛血清的PBS中,加入Ⅱ型膠原酶,37℃振蕩1 h;置不含胎牛血清的RPMI1640培養(yǎng)基的平皿中,洗滌、剪切后研碎,200目過濾,制成單個細(xì)胞懸液,4℃、半徑6 cm、1000 r/min離心5 min。細(xì)胞37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)6 h,收集細(xì)胞,洗滌,根據(jù)Annexin V FITC/PI試劑盒說明染色,EPICS-XL流式細(xì)胞儀檢測。

    1.3.2.2 免疫原性

    按照1.3.1.2方法,檢測各組MHC-Ⅰ、MHC-Ⅱ和ICAM-1表達(dá),以β-actin為內(nèi)參。

    1.3.3 同種異體移植效果

    雌性Wistar大鼠60只,10%水合氯醛4 ml/kg腹腔注射麻醉,右股后外側(cè)縱行切口,鈍性分離,游離坐骨神經(jīng),距梨狀肌下緣5 mm處整齊切除坐骨神經(jīng)10 mm。分別取A、B、C、D和E組神經(jīng),修剪成10 mm,手術(shù)顯微鏡下,9-0線行神經(jīng)外膜無張力間斷縫合4~6針(A′組、B′組、C′組、D′組、E′組,n=10)。逐層關(guān)閉切口。手術(shù)由同一人操作,術(shù)后不做特殊處理。

    SPF級Wistar雄性大鼠5只,同法取坐骨神經(jīng)10條,修復(fù)Wistar雌性大鼠坐骨神經(jīng)10 mm缺損組(F′組,n=10)。

    觀察術(shù)后大鼠精神狀態(tài)、飲食、傷口愈合、潰瘍發(fā)生情況。

    1.3.3.1 神經(jīng)電生理檢測

    移植術(shù)后16周,大鼠10%水合氯醛4 ml/kg腹腔注射麻醉,原切口暴露坐骨神經(jīng)。觀察移植神經(jīng)段粗細(xì)、與周圍組織粘連情況等。刺激電極置梨狀肌下緣3 mm處神經(jīng)干,接收電極置外踝上10 mm腓腸肌中部,地線遠(yuǎn)離兩電極,刺激強(qiáng)度1 V,間歇0.25 ms。BL-420F系統(tǒng)測定肌肉復(fù)合動作電位(compound muscle action potential,CMAP)和神經(jīng)傳導(dǎo)速度(never conduction velocity,NCV)。

    1.3.3.2 組織學(xué)觀察

    電生理檢測后,整齊截取移植神經(jīng)中段3 mm,2.5%戊二醛4℃固定過夜,1%鋨酸固定2 h,丙酮梯度脫水,環(huán)氧樹脂包埋。0.5 μm半薄切片,甲苯胺藍(lán)染色,每個樣本隨機(jī)選5張切片,每張切片隨機(jī)取5個視野,CCD光譜測量系統(tǒng)觀察,Image-Pro Plus 6.0圖像分析軟件計(jì)數(shù)有髓神經(jīng)纖維數(shù)目。超薄切片,醋酸鈾-檸檬酸鉛雙重染色,透射電鏡觀察神經(jīng)超微結(jié)構(gòu),計(jì)算有髓神經(jīng)纖維髓鞘厚度與神經(jīng)纖維直徑的比。

    1.4 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析

    采用SPSS 22.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析。實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)均以(±s)表示,組間比較采用單因素方差分析,兩兩比較采用q檢驗(yàn)。顯著性水平α=0.05。

    2 結(jié)果

    2.1 T10冷保存大鼠坐骨神經(jīng)的適宜濃度

    2.1.1 對SCs毒性

    T10濃度為1×10-6mol/L時,SCs存活率下降(P<0.05)。其他濃度下,SCs存活率與對照組無顯著性差異(P>0.05)。見表1。

    表1 不同濃度T10下SCs存活率比較(%)

    2.1.2 坐骨神經(jīng)神經(jīng)營養(yǎng)因子分泌

    各組均可檢測出NGF、BDNF、GDNF蛋白表達(dá)。37℃預(yù)處理各組,NGF、BDNF、GDNF蛋白表達(dá)均高于4℃預(yù)處理各組(P<0.05)。

    4℃預(yù)處理時,NGF表達(dá)在1×10-8mol/L T10組最高(P < 0.05);GDNF表達(dá)1×10-8mol/L T10組、1×10-9mol/L T10組最高(P <0.05);BDNF表達(dá)1×10-8mol/L T10組、1×10-9mol/LT10組最高,1×10-7mol/LT10組次之(P<0.05)。

    37℃預(yù)處理時,NGF表達(dá)在1×10-8mol/L T10組最高(P < 0.05);GDNF表達(dá)1×10-8mol/L T10組、1×10-9mol/L T10組最高,1×10-6mol/L T10組、1×10-7mol/L T10組次之(P<0.05);BDNF表達(dá),1×10-7mol/L T10組、1×10-8mol/L T10組最高,1×10-9mol/L T10組次之,1×10-6mol/L T10組高于對照組(P<0.05)。

    見圖1、表2。

    圖1 不同溫度、濃度T10預(yù)處理坐骨神經(jīng)各神經(jīng)營養(yǎng)因子蛋白表達(dá)

    表2 不同溫度、濃度T10預(yù)處理坐骨神經(jīng)各神經(jīng)營養(yǎng)因子蛋白表達(dá)(/β-actin)

    2.2 坐骨神經(jīng)冷保存

    鑒于以上實(shí)驗(yàn)提示,1×10-8mol/L T10促神經(jīng)營養(yǎng)因子分泌最佳,故以下實(shí)驗(yàn)均按此濃度添加T10。

    2.2.1 MHC-Ⅰ、MHC-Ⅱ和ICAM-1蛋白表達(dá)

    與A組相比,B、C、D、E組MHC-Ⅰ、MHC-Ⅱ和ICAM-1蛋白表達(dá)均下降(P<0.05)。B、C、D、E組中,MHC-Ⅰ表達(dá),E、C組最低,D組次之,B組最高(P<0.05);MHC-Ⅱ、ICAM-1表達(dá),E組最低,C組次之,D組又次之,B組最高(P<0.05)。見圖2、表3。

    2.2.2 激光共聚焦顯微鏡觀察

    A組以綠色熒光為主,可見零星紅色熒光分布;B、C、D、E組紅色熒光強(qiáng)度較A組增加,綠色熒光強(qiáng)度減少。B、C、D、E組中,E組綠色熒光強(qiáng)度最強(qiáng),紅色熒光強(qiáng)度最低,C、D組次之,B組最差。見圖3。

    2.2.3 流式細(xì)胞儀檢測

    A組90%以上為活細(xì)胞,B、C、D、E組活細(xì)胞百分比均較A組降低。B、C、D、E組中,E組活細(xì)胞百分比最高,C組次之,B、D組最低(P<0.05)。見圖4、表4。

    圖2 冷保存下各組MHC-Ⅰ、MHC-Ⅱ和ICAM-1蛋白表達(dá)

    表3 冷保存下各組MHC-Ⅰ、MHC-Ⅱ和ICAM-1蛋白表達(dá)(/β-actin)

    表4 流式細(xì)胞儀檢測各組存活率(%)

    圖3 冷保存各組神經(jīng)細(xì)胞存活(免疫熒光染色,bar=50μm)

    圖4 冷保存各組神經(jīng)細(xì)胞存活和凋亡的流式細(xì)胞儀檢測

    2.3 同種異體移植

    2.3.1 一般情況

    各組大鼠術(shù)后切口均未出現(xiàn)感染,實(shí)驗(yàn)期間無大鼠死亡,無足底潰瘍、足趾脫落等損害。取材時,發(fā)現(xiàn)A′、B′、C′、D′、E′組神經(jīng)移植段與周圍組織輕度粘連,遠(yuǎn)近吻合口輕微膨大;F′組移植神經(jīng)與周圍組織無明顯粘連,遠(yuǎn)近吻合口無明顯膨大。

    2.3.2 神經(jīng)電生理

    移植術(shù)后16周,各組間CMAP、NCV均有非常高度顯著性差異(P<0.001),F(xiàn)′組最高,E′組次之,再次為C′、D′組,A′、B′組最低(P < 0.05)。見表5。(P<0.05)。見圖5、表6。

    表5 移植術(shù)后各組神經(jīng)電生理檢查結(jié)果

    電鏡觀察,F(xiàn)′組和E′組可見大量有髓神經(jīng)纖維,纖維粗細(xì)均勻;C′組和D′組再生有髓神經(jīng)纖維數(shù)量較多,分布較廣泛;A′組和B′組再生有髓神經(jīng)纖維數(shù)量較少,分布較稀疏,可見明顯結(jié)蹄組織增生。有髓神經(jīng)纖髓鞘厚度與神經(jīng)纖維直徑的比,F(xiàn)′組>E′組>C′組 > D′組 >A′組 =B′組(P < 0.05)。見圖6、表6。

    表6 移植術(shù)后各組再生神經(jīng)纖維情況

    2.3.3 組織學(xué)觀察

    各組之間有髓神經(jīng)纖維數(shù)有非常高度顯著性差異(P < 0.001),F(xiàn)′組 > E′組 > C′組 > D′組 > A′組 > B′組

    圖5 移植術(shù)后16周移植神經(jīng)中段(甲苯胺藍(lán)染色,bar=50μm)

    圖6 移植術(shù)后16周移植神經(jīng)中段超微結(jié)構(gòu)(透射電鏡,bar=10μm)

    3 討論

    自體神經(jīng)移植因來源受限、供區(qū)并發(fā)癥等缺點(diǎn),不能滿足周圍神經(jīng)缺損修復(fù)的需要;同種異體神經(jīng)具備相同的組織結(jié)構(gòu),且來源豐富,可能是自體神經(jīng)最佳替代物。與器官移植一樣,有效的體外保存成為移植技術(shù)的重要限制因素。目前國內(nèi)外尚無公認(rèn)的周圍神經(jīng)體外保存方法。

    T10是中藥雷公藤的主要活性成分之一,具有抗炎、免疫抑制作用。我們在坐骨神經(jīng)保存液中添加一定濃度T10,希望能對低溫保存的坐骨神經(jīng)發(fā)揮保護(hù)作用??紤]到T10的毒性,我們先進(jìn)行SCs細(xì)胞毒性試驗(yàn),結(jié)果表明,T10在1×10-9~1×10-7mol/L濃度下,對SCs無明顯毒性作用。

    T10能促進(jìn)體外培養(yǎng)的星形膠質(zhì)細(xì)胞分泌神經(jīng)營養(yǎng)因子[11],而神經(jīng)營養(yǎng)因子除了促進(jìn)神經(jīng)損傷后軸突生長和對新生軸突的導(dǎo)向作用外[12-13],還有營養(yǎng)作用和促神經(jīng)細(xì)胞存活的作用,對周圍神經(jīng)損傷后神經(jīng)細(xì)胞具有保護(hù)作用[14-15]。本研究顯示,1×10-8mol/L T10溶液37℃預(yù)處理24 h,神經(jīng)營養(yǎng)因子表達(dá)最多;T10中冷保存4周后,經(jīng)上述T10預(yù)處理的神經(jīng)活細(xì)胞最多。推測大鼠坐骨神經(jīng)用一定濃度T10溶液預(yù)處理和保存,能對大鼠坐骨神經(jīng)起到疊加保護(hù)作用。

    免疫排斥反應(yīng)是影響同種異體周圍神經(jīng)移植成功的重要因素,理想的體外保存異體神經(jīng)應(yīng)在盡量保留神經(jīng)活性細(xì)胞的前提下,降低神經(jīng)免疫原性。MHC-Ⅰ、MHC-Ⅱ和ICAM-1在移植排斥反應(yīng)中起重要作用[16-17]:MHC-Ⅰ分子由CD8+細(xì)胞毒性T淋巴細(xì)胞識別,MHC-Ⅱ分子與CD4+T細(xì)胞活化、增殖密切相關(guān),而CD8+、CD4+T細(xì)胞是介導(dǎo)同種異體排斥反應(yīng)的關(guān)鍵細(xì)胞;ICAM-1在T細(xì)胞黏附、激活及侵入等環(huán)節(jié)發(fā)揮作用[18-20]。雷公藤制劑有抗排斥反應(yīng)作用[21],在體外能抑制MHC、共刺激分子表達(dá),削弱抗原呈遞細(xì)胞抗原呈遞功能和對T細(xì)胞的激活作用[22]。本研究顯示,大鼠坐骨神經(jīng)4℃冷保存4周后,各組MHC-Ⅰ、MHC-Ⅱ和ICAM-1表達(dá)均較新鮮神經(jīng)降低,可能與冷保存后SCs活性下降、凋亡增加有關(guān);而T10冷保存能進(jìn)一步抑制神經(jīng)移植物MHC-Ⅰ、MHC-Ⅱ和ICAM-1表達(dá),從而降低異體移植后急性期排斥反應(yīng)。

    本研究用不同方法冷保存的Sprague-Dawley大鼠坐骨神經(jīng)修復(fù)Wistar大鼠坐骨神經(jīng)缺損,術(shù)后16周觀察,T10保存、T10預(yù)處理的神經(jīng),治療效果較佳;兩者合用效果更佳。神經(jīng)損傷后,隨著時間推移,其支配的靶肌肉將發(fā)生不可逆萎縮,失去功能,其功能恢復(fù)與神經(jīng)軸突的再生關(guān)系密切[23-24]。NCV與神經(jīng)纖維直徑相關(guān),再生纖維傳導(dǎo)速度的恢復(fù),很大程度上取決于髓鞘厚度的恢復(fù),髓鞘厚度也是再生纖維成熟程度的反映[25]。本研究顯示,T10保存、T10預(yù)處理的神經(jīng),再生效果良好。這可能由于T10對低溫保存的神經(jīng)組織具有保護(hù)作用;同時,T10預(yù)處理可通過促進(jìn)神經(jīng)組織分泌神經(jīng)營養(yǎng)因子,提高SCs活性;還能降低免疫原性,從而有利于異體移植后神經(jīng)軸突再生,促進(jìn)坐骨神經(jīng)功能恢復(fù)。

    綜上所述,T10預(yù)處理能促進(jìn)坐骨神經(jīng)神經(jīng)營養(yǎng)因子表達(dá);經(jīng)T10預(yù)處理后的坐骨神經(jīng),在保存液中添加T10,可提高SCs活性,降低免疫原性,從而減弱移植后排斥反應(yīng),促進(jìn)神經(jīng)再生及功能恢復(fù)。

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