熊海濤, 唐志華,吳迎春,龐海霞1,
1(陜西省催化基礎(chǔ)與應(yīng)用重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,陜西 漢中,723001) 2(陜西理工大學(xué) 化學(xué)與環(huán)境科學(xué)學(xué)院,陜西 漢中,723001)
隨著現(xiàn)代工業(yè)的發(fā)展,含氟物質(zhì)與日俱增,其通常以廢氣、廢水及廢渣的形式向大氣水體土壤中排放,給生態(tài)環(huán)境帶來巨大危害[1]。因此,對氟含量的準(zhǔn)確監(jiān)測就具有重要意義。
目前,對氟定量分析的方法主要有:離子選擇電極法[2-3]、分光光度法(包括催化光度法)[4-6]、離子色譜法[7-9]、極譜法[10]、石墨爐分子吸收光譜法[11-12]及熒光光度法[13-15]等。在這些方法中,離子選擇電極與分光光度法盡管儀器簡單,操作方便,但是重現(xiàn)性均較差;離子色譜法需要較為苛刻的分離條件,極譜法會(huì)帶來一定的環(huán)境污染,而石墨爐分子吸收光譜法往往需要昂貴的儀器設(shè)備。熒光光度法具有靈敏度高、選擇性好及線性范圍廣等優(yōu)點(diǎn)。近年來該法結(jié)合時(shí)間分辨技術(shù)、偏振技術(shù)、同步掃描和三維掃描等實(shí)驗(yàn)新技術(shù),在食品檢測中得到廣泛應(yīng)用。
聚乙烯吡咯烷酮(PVP)是一種水溶性高分子聚合物,具有良好化學(xué)穩(wěn)定性、成膜性及保護(hù)膠體作用等。尤其是近幾年,PVP與一些納米材料相結(jié)合而制備出多種功能性復(fù)合材料[16-18]并應(yīng)用于藥物分析領(lǐng)域[19-20]。另外,PVP也具有一定的熒光特性[21-22],但是未見其分析應(yīng)用方面的文獻(xiàn)報(bào)道。本研究利用強(qiáng)酸性溶液中,F(xiàn)-競爭性結(jié)合Fe3+而使PVP-Fe3+體系熒光得到恢復(fù),基于此特性建立了一種Off/On型熒光光度法分析氟離子含量的新方法。該方法靈敏度較高,試劑廉價(jià)易得,無二次污染。該方法有望用于生物與環(huán)境水樣中氟離子含量的批量分析。
F4600熒光光度計(jì),日本日立公司;HH-6型恒溫水浴鍋,江蘇省金壇市金祥龍電子有限公司;HL-3000型電子天平,日本AND公司;FW135型絞碎機(jī),天津市泰斯特儀器有限公司;SX2-4-13型馬弗爐,上海有限微行爐業(yè)公司。
PVP(美國Sigma-Aldrich公司,wt: 10000):3.0 mmol/L;FeCl3(天津市天力化學(xué)試劑有限公司):8.0 mmol/L;KF(天津市天力化學(xué)試劑有限公司):0.1 mmol/L;醋酸-醋酸鈉緩沖溶液(0.20 mol/L)。
氯乙酸-氫氧化鉀緩沖溶液:準(zhǔn)確稱量13.135 0 g氯乙酸和5.218 0 g KOH,用二次水溶解后移入1 000 mL容量瓶中定容;B-R緩沖液:磷酸(0.04 mol/L)、HCl(0.04 mol/L)及醋酸(0.04 mol/L)各100 mL,混合而成;
草魚、鰱魚及鯽魚:均購自漢中市漢臺(tái)區(qū)漢豐水產(chǎn)市場;
所用試劑均為分析純,實(shí)驗(yàn)用水為超純水(電阻率18.24 MΩ·cm)。
取2支10 mL比色管依次編號(hào)1、2,各加入0.5 mL PVP(3.0 mmol/L)溶液與8.0 mmol/L FeCl3溶液,2號(hào)比色管另加標(biāo)準(zhǔn)系列KF或樣品溶液,然后均用氯乙酸-氫氧化鉀緩沖溶液(pH=2.0)定容至刻度線,每支比色管振蕩3 min,再靜置30 min之后,用F4600熒光光度計(jì)分別掃描熒光光譜(1,2號(hào)比色管對應(yīng)熒光分別記為F1、F2,用熒光恢復(fù)(ΔF=F2-F1)對F-濃度做圖,通過得到的工作曲線確定樣品中F-含量。
按照1.3實(shí)驗(yàn)方法,分別以270 nm激發(fā)波長研究了PVP、PVP-Fe3+及PVP-Fe3+-F-三個(gè)不同反應(yīng)體系的熒光發(fā)射光譜(如圖1所示)。
圖1 不同體系熒光發(fā)射光譜圖Fig.1 Fluorescence emission spectrums of different systems注:C(PVP)=0.01 mmol/L;C(Fe3+)=0.3 mmol/L;C(F-)=0.01 mmol/L;pH=2.0;溫度(25℃);時(shí)間(25 min)。
結(jié)果表明,3種不同體系的熒光發(fā)射波長均為544 nm,單獨(dú)PVP體系的熒光強(qiáng)度為1 860,PVP-Fe3+體系的熒光強(qiáng)度為208,說明Fe3+能在強(qiáng)酸性介質(zhì)中猝滅PVP的熒光,這與文獻(xiàn)相一致[21]。而當(dāng)PVP-Fe3+體系中加入少量的F-后,反應(yīng)體系的熒光強(qiáng)度變?yōu)?36,這可能是基于加入的F-競爭性結(jié)合了原有反應(yīng)體系中的Fe3+而生成[FeF6]3-絡(luò)合物,致使PVP-Fe3+生成物中的PVP被釋放到溶液中,結(jié)果使體系熒光強(qiáng)度有所恢復(fù)。
2.2.1 最佳緩沖溶液確定
按照實(shí)驗(yàn)方法,用氯乙酸-氫氧化鉀緩沖溶液、醋酸-醋酸鈉緩沖溶液及B-R緩沖溶液進(jìn)行實(shí)驗(yàn)且保持其他因素不變的情況下,初步研究表明:在氯乙酸-氫氧化鉀緩沖溶液下熒光恢復(fù)ΔF值最大。因此,實(shí)驗(yàn)選擇氯乙酸-氫氧化鉀緩沖溶液作為下面研究的最佳緩沖溶液。
2.2.2 最佳pH的選擇
固定其他條件不變,取pH=1.5,2.0,2.5,3.0及3.5氯乙酸-氫氧化鉀緩沖溶液配制反應(yīng)體系溶液。由圖2可以發(fā)現(xiàn):在pH=2.0時(shí), PVP的熒光恢復(fù)最大。這主要是由于強(qiáng)酸性介質(zhì)中不利于游離的F-存在,而較弱的酸性介質(zhì)中則不利于Fe3+的穩(wěn)定存在。因此,在以后的研究中,選擇pH=2.0的氯乙酸-氫氧化鉀緩沖溶液作為最佳pH值。
圖2 pH對相對熒光強(qiáng)度ΔF的影響Fig.2 Effect of pH on ΔF注:C(PVP)=0.010 mmol/L;C(Fe3+)=0.3 mmol/L;C(F-)=0.01 mmol/L;溫度(25℃);時(shí)間(25 min)。
2.2.3 最佳PVP濃度的選擇
作為研究體系中的熒光探針,PVP濃度會(huì)直接影響F-的分析特性。選定加入不同濃度PVP溶液,對PVP-Fe3+及PVP-Fe3+-F-兩個(gè)體系分別進(jìn)行熒光光譜掃描。圖3表明:隨著PVP濃度的增加熒光恢復(fù)程度逐漸增大,但是當(dāng)其濃度超過0.015 mmol/L后體系的熒光恢復(fù)又逐漸減弱。這可能是由于太低濃度的PVP會(huì)得到較弱的熒光發(fā)射峰值,而過高濃度的PVP會(huì)致使少量F-存在時(shí),恢復(fù)的體系熒光發(fā)射不明顯。因此,選擇0.015 mmol/L PVP濃度作為最佳濃度。
圖3 PVP濃度對ΔF的影響Fig.3 Effect of PVP concentration on ΔF注:C(Fe3+)=0.3 mmol/L;C(F-)=0.01 mmol/L;pH=2.0;溫度(25℃);時(shí)間(25 min)。
2.2.4 最佳Fe3+濃度的選擇
在確定pH為2,PVP濃度為0.015 mmol/L,溫度與時(shí)間保持不變的條件下,改變Fe3+濃度以進(jìn)行反應(yīng)體系的熒光光譜掃描。由圖4可以觀察到:隨著Fe3+濃度的增大,熒光恢復(fù)程度呈現(xiàn)出先增強(qiáng)后減弱的趨勢,僅當(dāng)Fe3+濃度為0.4 mmol/L時(shí)體系熒光恢復(fù)最強(qiáng)??赡苁怯捎赑VP和F-同時(shí)對Fe3+進(jìn)行競爭反應(yīng),較低濃度的Fe3+對PVP的熒光猝滅較弱(背景信號(hào)較高),不利于方法靈敏度的提高,而高濃度的Fe3+與一定量PVP反應(yīng)后,溶液中存在的游離Fe3+濃度仍然較高,會(huì)導(dǎo)致因少量的F-引起的熒光恢復(fù)較弱。為此,選取Fe3+最佳濃度為0.4 mmol/L。
圖4 Fe3+濃度對ΔF的影響Fig.4 Effect of Fe3+ concentration on ΔF注:C(PVP)=0.015 mmol/L;C(F-)=0.01 mmol/L;pH=2.0;溫度(25 ℃);時(shí)間(25 min)。
2.2.5 最佳反應(yīng)時(shí)間的選擇
設(shè)定PVP-Fe3+及PVP-Fe3+-F-兩種體系溶液均反應(yīng)5、15、25、35、45及55 min后進(jìn)行熒光光譜掃描(熒光強(qiáng)度恢復(fù)研究)。圖5說明:在2種體系各自反應(yīng)35 min后,二者的熒光強(qiáng)度差異(恢復(fù))最大,再延長反應(yīng)時(shí)間,熒光恢復(fù)程度基本不變,這說明PVP和F-同時(shí)對Fe3+競爭反應(yīng)可以在35 min之內(nèi)完成。因此,選定35 min后,對兩種體系進(jìn)行熒光光譜掃描。
圖5 反應(yīng)時(shí)間對ΔF的影響Fig.5 Effect of reaction time on ΔF注:C(PVP)=0.015 mmol/L;C(Fe3+)=0.4 mmol/L;C(F-)=0.01 mmol/L;pH=2.0;溫度(25℃)。
2.2.6 最佳反應(yīng)溫度的選擇
在其他實(shí)驗(yàn)條件不變的情況下,考察反應(yīng)溫度對選定反應(yīng)體系熒光強(qiáng)度變化的影響。由圖6可以看出:隨著溫度增加,在20~40 ℃,ΔF值基本保持不變;繼續(xù)升高反應(yīng)溫度,ΔF值逐漸下降,這可能是由于溫度過高會(huì)使PVP分子結(jié)構(gòu)不穩(wěn)定。所以,選擇在常溫下(25 ℃)對不同體系的熒光光譜進(jìn)行研究。
圖6 溫度對相對熒光強(qiáng)度ΔF的影響Fig.6 Effect of temperature on ΔF注:C(PVP)=0.015 mmol/L;C(Fe3+)=0.4 mmol/L;C(F-)=0.01 mmol/L;pH=2.0;時(shí)間(35 min)。
在最佳實(shí)驗(yàn)條件下,F(xiàn)-濃度在1.5~30.0 μmol/L與體系熒光恢復(fù)程度(ΔF)呈良好的線性相關(guān)(如圖7與圖8所示),其回歸方程為ΔF=63 334.1C(mmol/L)+7.89, 相關(guān)系數(shù)r=0.997 5。按照國際純粹與應(yīng)用化學(xué)聯(lián)合會(huì)(IUPAC)建議,計(jì)算方法的檢出限為0.6 μmol/L。對含有3.0 μmol/L F-的反應(yīng)體系進(jìn)行連續(xù)8次熒光光譜掃描,其相對標(biāo)準(zhǔn)偏差為2.8%,說明該方法具有良好的重現(xiàn)性。
圖7 不同F(xiàn)-濃度對體系熒光強(qiáng)度的響應(yīng)Fig.7 Fluorescence emission spectra of F- withdifferent concentrations
圖8 校準(zhǔn)曲線Fig.8 Calibration curve
2.5.1 魚肉樣品前處理
取適量魚(包括草魚、鯉魚及鯽魚)肉并去皮、去骨,再將魚肉組織清洗干凈,然后用絞碎機(jī)將其絞碎。接著,準(zhǔn)確稱取2.000 0 g魚肉于坩堝中,加4 mL 0.5 mol/L硝酸鎂溶液與少量1.0 mol/L氫氧化鈉溶液,攪拌混勻后放置30 min(固定樣品中的氟)。然后,在水浴上揮干,再用電爐加熱炭化至不冒煙,再將其于600 ℃馬弗爐內(nèi)灰化6 h。待灰化完全,取出放冷,將灰分全部轉(zhuǎn)移至潔凈燒杯中并加高純水和少量氫氧化鈉溶解,再加入適量活性炭攪拌5 min,靜置30 min以后,先用濾紙過濾1次,將濾液經(jīng)過0.45、0.22 μm水系濾膜過濾,得到透明的所需要樣品溶液,并用緩沖溶液定容到10 mL容量瓶中備用。同樣的方法,再平行處理2份。
2.5.2 樣品測定結(jié)果及回收率
在最優(yōu)的實(shí)驗(yàn)條件下,按照1.3實(shí)驗(yàn)方法測定樣品中F-含量,并分別添加3.0 μmol/L標(biāo)準(zhǔn)樣品液進(jìn)行加標(biāo)回收實(shí)驗(yàn)。分析結(jié)果如表1所示:測得草魚、鰱魚及鯽魚樣品中F-的含量分別為1.9、3.0及2.6 μg/g,加標(biāo)回收率在93.33%~100.00%,其相對標(biāo)準(zhǔn)偏差均小于5.3%。這說明本實(shí)驗(yàn)所建立起來的方法具有較高的準(zhǔn)確度與精密度。
表1 樣品測定結(jié)果及回收率實(shí)驗(yàn)(n=3)Table 1 Determination results of samples and recovery rate (n=3)
本文基于強(qiáng)酸性介質(zhì)中,少量F-能競爭性結(jié)合Fe3+-PVP體系中Fe3+而形成[FeF6]3-配離子,導(dǎo)致反應(yīng)體系的熒光強(qiáng)度發(fā)生顯著恢復(fù),據(jù)此建立了一種Off/On型熒光光度法檢測氟的新方法。采用該方法測定3種魚肉樣品中F-的最高含量為3.0 μg/g,遠(yuǎn)低于國標(biāo)中氟含量(21.0 μg/g),說明該地區(qū)草魚受到氟污染的程度較低。該方法操作簡便、試劑廉價(jià)且無污染,有望為食品監(jiān)督與檢測部門分析本地區(qū)魚肉樣品中F-含量提供技術(shù)參考。