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    長鏈非編碼RNA ATB調(diào)控miR-144對膠質(zhì)瘤遷移和侵襲的影響

    2018-11-08 05:02:28張孝禮萬曉強
    安徽醫(yī)學 2018年10期
    關鍵詞:影響實驗檢測

    雷 波 詹 傲 張 召 張孝禮 萬曉強

    膠質(zhì)瘤是人類最致命的惡性腫瘤之一,每年導致超過40萬人死亡[1],5年生存率低于15%[2]。目前,常用的膠質(zhì)瘤經(jīng)典腫瘤標志物有血清鱗狀細胞癌抗原(serum squamous cell carcinoma antigen,SCCA)、碳水化合物抗原(carbohydrate antigen ,CA)19-9、癌胚抗原(carcinoembryonic antigen ,CEA),但在早期診斷中缺乏敏感性和特異性[3-4]。因此,探索新的標志物對早期發(fā)現(xiàn)膠質(zhì)瘤十分重要。長鏈非編碼RNA(long-chain non-coding RNA ,lncRNA)長度超過200個堿基,缺乏蛋白質(zhì)編碼能力,通過調(diào)控致癌和腫瘤抑制途徑在腫瘤發(fā)生、發(fā)展和轉(zhuǎn)移中發(fā)揮關鍵作用[5-6]。lncRNA在多種腫瘤中常表達失調(diào),其異常表達可作為多種人類惡性腫瘤如乳腺癌、肺癌、肝癌、結腸癌的潛在診斷或預后生物標志物[7-11]。本研究探討長鏈非編碼RNA ATB(long-chain non-coding RNA ATB,lncRNA ATB)在膠質(zhì)瘤中的表達情況及調(diào)控miR-144對膠質(zhì)瘤遷移和侵襲的影響。

    1 材料與方法

    1.1 病理組織收集 收集2017年1月至2018年1月樂山市人民醫(yī)院術前病理檢查確診為膠質(zhì)瘤并行手術切除的腫瘤組織30份,同時取距癌灶2 cm的癌旁正常組織30份。取材后將組織樣品迅速放在入液氮中保存,至RNA提取。所有患者術前未行新輔助化療、放療,無手術禁忌證,并隨訪其生存時間和狀態(tài)。本研究通過院倫理委員會審批,患者及家屬術前均簽署知情同意書。

    1.2 細胞培養(yǎng) 人膠質(zhì)瘤細胞株U87、U251、SHG44和SWO-38購于上海復旦大學細胞研究所。1640培養(yǎng)基和0.25%胰酶購于美國 Gibco公司,胎牛血清購于美國??寺」荆瑂i-ATB購于上海吉瑪有限公司。U87、U251、SHG44和SWO-38胞均培養(yǎng)于含10%胎牛血清和1%青鏈霉素的培養(yǎng)基中,置于5% CO2、37℃培養(yǎng)箱中,每隔3 d換液1次,待細胞鋪滿培養(yǎng)瓶底進行傳代。以下所有試驗均取處于對數(shù)生長期的細胞。

    1.3 細胞轉(zhuǎn)染 使用PBS緩沖液將細胞清洗干凈,重復3次,胰酶消化細胞2 min,轉(zhuǎn)移至無菌15 mL離心管,離心并計數(shù)細胞,以每孔4×105個細胞接種于6孔板中,使融合率達70%左右,使用無血清培養(yǎng)基按3 μL/L進行稀釋轉(zhuǎn)染試劑,37℃孵育20 min,用無血清培養(yǎng)基分別將si-ATB和對照組按50 μmol/L濃度稀釋,常溫下孵育5 min,最后與轉(zhuǎn)染試劑等體積分別混勻,37℃培養(yǎng)箱繼續(xù)培養(yǎng)。12 h后,觀察轉(zhuǎn)染細胞狀態(tài),并將無血清培養(yǎng)基更換為完全培養(yǎng)基,繼續(xù)培養(yǎng),繼續(xù)培養(yǎng)48 h后,提取細胞RNA,驗證轉(zhuǎn)染效率。實驗分為慢病毒轉(zhuǎn)染實驗組和空白病毒轉(zhuǎn)染組,轉(zhuǎn)染si-ATB為實驗組,轉(zhuǎn)染空白慢病毒為對照組。

    1.4 定量實時PCR分析 定量實時聚合酶鏈式反應反應條件為:95℃預變性10 min,95℃15 s,60℃15 s,45個循環(huán),獲取熒光信號溫度為60℃。普通DNA PCR檢測,以GAPDH為內(nèi)參,采用2-△△Ct方法進行統(tǒng)計。ATB序列:正向5’-AAATATGGCGGCGTCTA CACGGA-3’,反向5’-TCCAGAACCCTCTGACATTTGCCT-3’;miR-144引物序列:正向5’-AATCAGAGTACATGCGACTGAGA-3’, 反向5’-GCTGTATCCTTCGCTGTTTCC-3’。

    1.5 平板克隆細胞實驗 首先消化并計數(shù)細胞,以5 000個/孔細胞數(shù)接種于96孔板中,每組3個復孔,37℃培養(yǎng)箱培養(yǎng);待細胞貼壁,觀察細胞狀態(tài),吸出培養(yǎng)基,避光條件下,分別加入慢病毒轉(zhuǎn)染的細胞中,37℃孵育24 h;檢測不同組細胞的克隆形成數(shù)目,并統(tǒng)計分析。

    1.6 Transwell侵襲實驗 將5×104個轉(zhuǎn)染慢病毒后的細胞置于上室,并加入Matrigel基質(zhì)膠,將10%FBS的培養(yǎng)基置于下室中。在37℃下孵育24 h后,細心去除上膜表面的細胞。用95%乙醇固定20 min后,用0.5%結晶紫溶液染色10 min,自來水沖洗干凈后,于倒置顯微鏡下計數(shù)。

    1.7 雙熒光素酶報告基因檢測實驗 ATB基因野生型3’UTR、突變型3’UTR片段,兩端均設計XbaⅠ酶切位點,插入熒光素酶基因質(zhì)粒構建 pGL3-3’UTR野生型(wild type,wt)、pGL3-3’UTR突變型(mutant type,mut), 取生長狀態(tài)良好的細胞,質(zhì)粒轉(zhuǎn)染后48 h根據(jù)操作說明,裂解細胞,加入熒光素酶底物,檢測熒光素酶活性。

    1.8 裸鼠腫瘤異種移植模型 將si-ATB組和對照組U87細胞按1×106/孔濃度分別注射到4~6周齡裸鼠的腋窩下。飼養(yǎng)8周后檢測兩組裸鼠異種移植物的體積和質(zhì)量生長情況。

    2 結果

    2.1 lncRNA ATB在膠質(zhì)瘤組織中表達及和生存率之間的關系 通過qPCR檢測lncRNA ATB在膠質(zhì)瘤組織中和癌旁正常組織中的表達差異,癌組織中l(wèi)ncRNA ATB的相對表達量高于癌旁正常組織[(3.84±0.32)比(1.21±0.15),t=12.670,P=0.003]。同時對患者進行隨訪,通過Kaplan-Meier生存分析發(fā)現(xiàn),lncRNA ATB的表達水平與膠質(zhì)瘤患者的生存情況相關(χ2=9.348,P=0.016),見圖1。

    圖1 lncRNA ATB表達水平與膠質(zhì)瘤患者的生存情況分析

    2.2 lncRNA ATB在細胞株中的表達水平及慢病毒轉(zhuǎn)染情況 通過qPCR實驗檢測lncRNA ATB在不同膠質(zhì)瘤細胞株中的表達情況,結果顯示,lncRNA ATB在U87細胞株表達水平相對升高,與其他細胞株相比,表達水平差異有統(tǒng)計學意義[(2.12±0.32)比(3.36±0.35)比(1.26±0.23)比(0.86±0.11),t=12.516,P=0.023;t=14.112,P=0.011;t=11.957,P=0.005]。通過使用si-ATB1和si-ATB2轉(zhuǎn)染膠質(zhì)瘤U87和U251細胞后,lncRNA ATB的相對表達量降低,差異有統(tǒng)計學意義[U521si-ATB1:(1.01±0.02)比(0.56±0.02),t=23.029,P=0.005;U521si-ATB2:(1.01±0.02)比(0.43±0.01),t=43.078,P=0.003;U87si-ATB1:(1.03±0.01)比(0.44±0.02),t=46.561,P=0.003;U87si-ATB2:(1.03±0.01)比(0.49±0.03),t=37.912,P=0.004]。

    2.3 雙熒光素酶實驗檢測lncRNA ATB和miR-144之間的關系 通過檢測到lncRNA ATB與miR-144具有相似的結合位點,兩者可能存在內(nèi)在調(diào)控關聯(lián)。為進一步驗證lncRNA ATB與miR-144之間的聯(lián)系,通過雙熒光素酶實驗進行檢測。過表達miR-144后,野生型lncRNA ATB的熒光素酶活性受到明顯抑制[(1.95±0.05)比(0.83±0.15),t=37.064,P=0.002],而對突變型lncRNA ATB的熒光素酶活性影響不大[(1.93±0.02)比(2.01±0.05),t=1.752,P=0.149],顯示miR-144可以直接與lncRNA ATB結合位點結合并影響熒光素酶活性。

    2.4 ATB對細胞株增殖能力的影響 通過平板克隆實驗檢測lncRNA ATB對膠質(zhì)瘤細胞株U87和U251增殖能力的影響。首先使用特異的干擾RNA(si-ATB)抑制膠質(zhì)瘤細胞中l(wèi)ncRNA ATB的表達,在轉(zhuǎn)染si-ATB 24、48和72 h后,U87和U251細胞的增殖能力低于各自對照組[U521si-ATB1:(0.56±0.05)個 比(0.23±0.02)個,t=34.762,P=0.003;U521si-ATB2:(0.56±0.05)個 比(0.19±0.04)個,t=48.180,P=0.002;U87si-ATB1:(0.50±0.06)個 比(0.18±0.02)個,t=51.309,P<0.001;U87si-ATB2:(0.50±0.06)個 比(0.21±0.05)個,t=39.030,P=0.003]。詳見圖2。

    圖2 lncRNA ATB對膠質(zhì)瘤細胞U87和U251增殖能力的影響

    2.5 lncRNA ATB對膠質(zhì)瘤細胞株凋亡行為的影響 用流式細胞術檢測lncRNA ATB對膠質(zhì)瘤細胞凋亡的影響。lncRNA ATB的下調(diào)提高了U251[(14.2±0.5)% 比 (7.2±0.4)%比(4.6±0.3)%;t=13.324、P=0.0347,t=10.471、P<0.001]和U87[(13.9±0.7)% 比 (10.1±0.3)% 比 (5.6±0.4)%;t=14.760、P=0.033,t=16.682、P=0.002]凋亡百分比。詳見圖3。

    2.6 lncRNA ATB對細胞株侵襲能力的影響 抑制lncRNA ATB 72 h后,U251細胞[(186.4±12.4)個 比 (73.6±8.6)個 比 (62.6±5.6)個;t=10.269、P<0.001,t=11.587、P=0.001]和U87細胞[(192.2±15.3)個 比(63.6±6.3)個 比(68.3±7.6)個;t=14.432、P<0.001,t=13.783、P<0.001]的侵襲能力降低。詳見圖4。

    2.7 lncRNA ATB對裸鼠移植瘤的影響情況 通過裸鼠異種移植腫瘤生長測定移植瘤體積和質(zhì)量情況。將si-ATB轉(zhuǎn)染的U87細胞分別注射入裸鼠,在注射后28 天,將小鼠處死并取腫瘤。與對照組相比,si-ATB組平均腫瘤體積小于對照組[(846.3±26.3)mm3比 (306.5±19.9)mm3,t=15.332,P<0.001],且si-ATB組平均腫瘤質(zhì)量也低于對照組[(0.62±0.23)g 比 (1.52±0.24)g,t=10.580,P<0.001]。詳見圖5。

    圖3 lncRNA ATB對膠質(zhì)瘤細胞U87和U251凋亡的影響

    圖4 lncRNA ATB對膠質(zhì)瘤細胞株侵襲能力的影響

    圖5 lncRNA ATB對膠質(zhì)瘤細胞裸鼠成瘤模型的影響

    3 討論

    lncRNA ATB作為癌癥發(fā)生和發(fā)展過程中的關鍵調(diào)控分子[12-13],其可能會成為膠質(zhì)瘤最有潛力的治療靶點。lncRNA作為一種新型腫瘤標志物,檢測血循環(huán)中RNA已成為非侵入性診斷應用的新方向[14]。然而,目前關于早期檢測膠質(zhì)瘤患者血循環(huán)中l(wèi)ncRNA水平的研究較少,本研究就此開展此項實驗。

    有報道指出,lncRNA ATB在乳腺癌,結、直腸癌,食管鱗狀細胞癌中上調(diào),并且促進腫瘤侵襲和轉(zhuǎn)移以及影響生存率[15]。本研究首次證明了lncRNA ATB在膠質(zhì)瘤中的調(diào)控方式,并揭示lncRNA ATB表達與膠質(zhì)瘤的侵襲性生物學行為相關,同時在動物體內(nèi)檢測lncRNA ATB的表達下調(diào)可以直接影響膠質(zhì)瘤細胞的成瘤能力。此外,lncRNA ATB表達高的患者的淋巴結轉(zhuǎn)移多,晚期和組織學分化程度高于lncRNA ATB表達低的患者[13]。

    lncRNA ATB在體外調(diào)節(jié)多種腫瘤細胞的增殖、侵襲和凋亡[13]。lncRNA ATB在乳腺癌細胞中的表達促進了細胞侵襲,lncRNA ATB的敲低降低了乳腺癌細胞侵襲能力,同時抑制了細胞生長,調(diào)節(jié)了細胞周期進程并誘導細胞凋亡,并且在多種腫瘤組織中都存在lncRNA ATB的表達異常[15-17]。本實驗證實siRNA介導的ATB導致膠質(zhì)瘤細胞增殖、集落形成效率和侵襲能力顯著降低及細胞凋亡顯著增加,推測lncRNA ATB調(diào)控miR-144的表達影響膠質(zhì)瘤的發(fā)展。

    本研究表明,lncRNA ATB在膠質(zhì)瘤患者中存在過表達狀態(tài),且在一定程度上表明預后差,通過誘導腫瘤細胞增殖和侵襲并減少癌細胞凋亡來促進腫瘤的發(fā)展。此外,lncRNA ATB可能通過靶向調(diào)控miR-144的表達參與下游信號通路的介導,lncRNA可能是未來膠質(zhì)瘤治療中有價值的預測標志和新的治療靶標。

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