趙慧軍 康雅娟 李建鵬 李志忠
1. 蘭州職業(yè)技術(shù)學(xué)院,甘肅、蘭州,730000;2.蘭州理工大學(xué),甘肅、蘭州,730000
灰霉病是由半知菌亞門(mén)、葡萄孢屬的灰葡萄孢菌侵染引起的植物病害[1],其分生孢子萌發(fā)侵染性強(qiáng)、可感染多種果蔬,引起植株枯萎、根部及果實(shí)腐爛、莖稈壞疽[2],不僅嚴(yán)重危害果蔬的生長(zhǎng),也影響果蔬運(yùn)輸過(guò)程中的防腐保鮮。當(dāng)前灰霉病的防治主要采用化學(xué)防治為主,配合農(nóng)業(yè)防治措施,輔以使用微生物菌劑,但不可避免的環(huán)境污染、健康問(wèn)題及作物病蟲(chóng)害抗性等日益嚴(yán)重[3]。
隨著灰霉病生物防治 的廣泛深入研究,植物病害生物防治的優(yōu)勢(shì)凸顯,尤其是其生態(tài)效益和安全性。研究發(fā)現(xiàn),綠色木霉孢子懸液、羅倫隱球酵母細(xì)胞、放射腐霉、地衣芽孢桿菌、熒光假單胞菌等生防菌都能有效的抑制草莓灰霉菌的生長(zhǎng)及侵染[4]。芽孢桿菌由于其對(duì)熱、紫外線(xiàn)、輻射和化學(xué)藥劑的強(qiáng)耐受性和抗性[5],及其在工業(yè)、農(nóng)業(yè)、醫(yī)藥研究領(lǐng)域的廣泛應(yīng)用引起關(guān)注,研究表明,芽孢桿菌作為植物體內(nèi)常見(jiàn)內(nèi)生細(xì)菌,其抗菌物質(zhì)可拮抗多種植物病原菌。植物病原菌在不同的地域及生長(zhǎng)環(huán)境中表現(xiàn)出不同的致病性及遺傳學(xué),因此,從靶向區(qū)域作物根際土壤微生態(tài)系統(tǒng)中篩選優(yōu)勢(shì)拮抗菌,更能實(shí)現(xiàn)生物防治的靶向性及長(zhǎng)效性[5]。
甘肅省蘭州市紅古區(qū)作為綠色農(nóng)產(chǎn)品產(chǎn)業(yè)化示范區(qū),土壤氣候條件適合多品種草莓種植。本實(shí)驗(yàn)通對(duì)紅古區(qū)花莊鎮(zhèn)草莓標(biāo)準(zhǔn)化生產(chǎn)基地的調(diào)查采樣,從感染灰霉病的草莓果實(shí)、根際土壤中分離得到芽孢桿菌26株,通過(guò)抑菌實(shí)驗(yàn)篩出對(duì)草莓灰霉菌具有較強(qiáng)抑菌和拮抗作用的芽孢桿菌,并進(jìn)行菌種誘變得到2株具有穩(wěn)定抗病能力的菌株,通過(guò)生物學(xué)特征檢測(cè)和分子鑒定,為后續(xù)草莓灰霉病的生物防治提供了研究基礎(chǔ)[5]。
實(shí)驗(yàn)中植物病原菌草莓灰葡萄孢菌(Botrytis sp. isolate NO_9)由課題組從蘭州市花莊鎮(zhèn)河咀村草莓種植基地(103°07′23.93″E,36°12′16.36″N)灰霉病高發(fā)區(qū)病果中分離鑒定保藏。拮抗菌HZ12和 HZ02從蘭州市花莊鎮(zhèn)河咀村草莓種植基地灰霉病高發(fā)區(qū)病果根際土壤分離純化保藏。
牛肉膏蛋白胨平板培養(yǎng)基;牛肉膏液體培養(yǎng)基;馬鈴薯培養(yǎng)基;DNA提取試劑盒(購(gòu)自北京索萊寶科技有限公司);DNA 電泳上樣緩沖液(日本TaKaRa 公司);Taq 酶(日本TaKaRa 公司);100 DNA Ladder Marker(北京艾德萊生物科技有限公司,DM1001);瓊脂糖(西班牙Biowest 公司);DNA 膠純化試劑盒(購(gòu)自AXYGEN 公司);引物(invitrogen)。
1.3.1 拮抗菌的形態(tài)觀(guān)察
將拮抗菌接種到牛肉膏液體培養(yǎng)基,35℃,160r/min發(fā)酵培養(yǎng)12h,用無(wú)菌水制備菌懸液,稀釋后涂布平板,35℃培養(yǎng)12h,觀(guān)察單菌落形態(tài)。
1.3.2 拮抗菌的生理生化檢測(cè)
參照《伯杰氏細(xì)菌鑒定手冊(cè)》[7]、《常見(jiàn)細(xì)菌系統(tǒng)鑒定手冊(cè)》[8]和《微生物鑒定手冊(cè)》[9]對(duì)拮抗菌進(jìn)行生理生化指標(biāo)檢測(cè)。
1.3.3 拮抗菌分子鑒定
拮抗菌的DNA提取使用細(xì)菌基因組DNA提取試劑盒,PCR擴(kuò)增16srDNA,采用25μl擴(kuò)增體系(見(jiàn)表1-2)?;厥諗U(kuò)增片段,委托南京鐘鼎生物技術(shù)有限公司完成測(cè)序。
表1 PCR 反應(yīng)體系的組成
表2 PCR 反應(yīng)程序
1.3.4 拮抗細(xì)菌對(duì)草莓灰霉菌抑菌作用研究
1.3.4.1 拮抗菌對(duì)草莓灰葡萄孢菌的抑菌作用
將拮抗菌置于液體培養(yǎng)基中,37℃搖床160r/min震蕩培養(yǎng)24h。發(fā)酵液12000r/min離心10min,上清液用0.22μm細(xì)菌過(guò)濾器過(guò)濾制備無(wú)菌濾液;分離得到的菌體用無(wú)菌生理鹽水洗滌3次制成菌懸液備用。挑取培養(yǎng)5d的灰霉菌絲接種到PDA平板培養(yǎng)基中心,25℃恒溫培養(yǎng)12h后進(jìn)行抑菌試驗(yàn)[10-11]。
采用杯碟法進(jìn)行抑菌活性測(cè)定:PDA平板培養(yǎng)基放置3個(gè)牛津杯,分別加入100μl拮抗菌發(fā)酵液、拮抗菌發(fā)酵無(wú)菌濾液、拮抗菌菌懸液。25℃恒溫培養(yǎng)48h后側(cè)抑菌圈[12-13]。
1.3.4.2 拮抗菌對(duì)草莓灰霉病菌絲的破壞作用
對(duì)灰葡萄孢菌正常生長(zhǎng)菌絲和對(duì)峙生長(zhǎng)邊緣菌絲制備樣品[14],掃描電鏡觀(guān)察。
1.3.4.3 拮抗菌對(duì)草莓灰葡萄孢菌分生孢子萌發(fā)的抑制作用
將培養(yǎng)5d的灰霉平板用0.3%吐溫80洗脫收集孢子,配置濃度為1.0×106個(gè)/ mL的孢子懸液,各取200μl孢子菌懸液和800μL細(xì)菌發(fā)酵濾液液加入EP管中充分震蕩,對(duì)照組取200μl孢子菌懸液和800μL無(wú)菌水;分別25℃恒溫培養(yǎng)24h后觀(guān)察孢子萌發(fā)狀態(tài),統(tǒng)計(jì)孢子萌發(fā)率[15]。
菌株HZ12單菌落圓形,白色不透明(圖1),菌落干燥,邊緣光滑,中間稍隆起,表面有褶皺(圖5-6);油鏡鏡檢,革蘭氏染色陽(yáng)性,細(xì)胞呈桿狀,形成橢圓形中生芽孢[10](如圖3)。菌株HZ02單菌落白色不透明(圖2),成片菌落呈黏稠狀,表層光滑濕潤(rùn),中間稍隆起,邊緣不規(guī)則(圖7-8);菌體均為橢圓形、短桿狀,革蘭氏陽(yáng)性菌,形成內(nèi)生芽孢(如圖4)。
圖1 HZ12菌落
圖2 HZ02菌落
圖3 HZ12菌體掃描電鏡
圖4 HZ02菌體掃描電鏡
圖5 HZ12單菌落
圖6 HZ12單菌落
圖7 HZ02單菌落
圖8 HZ02單菌落
如下表結(jié)果所示,菌株HZ12和HZ01均為好氧菌,均能耐受10%NaCl,接觸酶、淀粉水解、明膠水解、糖醇發(fā)酵實(shí)驗(yàn)均為陽(yáng)性;葡糖糖、蔗糖、麥芽糖、半乳糖、甘露醇、半乳糖發(fā)酵產(chǎn)酸,果糖、乳糖、棉子糖不產(chǎn)酸。
表3拮抗菌生理生化特征測(cè)定結(jié)果
菌株HZ12、HZ02的DNA進(jìn)行PCR擴(kuò)增,得到目標(biāo)條帶1-2號(hào)(如圖7),經(jīng)測(cè)序,菌株HZ12、HZ02的序列分長(zhǎng)度分別為1454bp、1445bp。將16s rDNA序列與Genbank中的相關(guān)序列進(jìn)行BLAST比較,并采用DNAStar構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù)。結(jié)果表明,菌株HZ12與 Bacillus subtilis subsp. subtilis strain DSM 10(KJ812207.1 )序列相似度達(dá)到 99%(如圖8);菌株HZ02與Bacillus amyloliquefaciens strain(KU879248.1 )相似性最高,序列相似度達(dá)到 100%(如圖9)。
圖8:菌株HZ1216S rDNA序列系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)
圖9:菌株HZ0216S rDNA序列系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)
2.4.1 拮抗菌對(duì)草莓灰葡萄孢菌的抑菌作用
采用杯碟法檢測(cè)拮抗菌株對(duì)草莓灰葡萄孢菌的抑制作用,圖10顯示,以無(wú)菌水為對(duì)照,菌株HZ12和HZ02具有較強(qiáng)的抑菌作用;發(fā)酵液抑菌試驗(yàn)培養(yǎng)3d 后,抑菌圈直徑均在10-25 mm,抑菌效果較為穩(wěn)定(圖11-12)。如圖13-14所示,抗菌發(fā)酵液、拮抗菌發(fā)酵無(wú)菌濾液、拮抗菌菌懸液對(duì)灰霉菌均有抑制作用,發(fā)酵液與菌懸液的抑制效果最好,發(fā)酵無(wú)菌濾液的抑制效果較弱。說(shuō)明拮抗菌對(duì)灰霉菌的抑制作用主要來(lái)源于菌體。
圖10拮抗菌對(duì)照實(shí)驗(yàn)
圖11 HZ12菌株
圖12 HZ02菌株
圖13 菌株HZ12拮抗實(shí)驗(yàn):A發(fā)酵液 B菌懸液C無(wú)菌濾液
圖14菌株HZ02拮抗實(shí)驗(yàn):A發(fā)酵液 B菌懸液C無(wú)菌濾液
表4 拮抗菌對(duì)灰霉菌的抑制作用
2.4.2 拮抗菌對(duì)草莓灰葡萄孢菌菌絲的抑菌作用
抑菌圈邊緣菌絲表現(xiàn)出一定的畸形:菌絲變粗,扁平出現(xiàn)褶皺,菌絲斷裂。正常培養(yǎng)的菌絲光滑、細(xì)長(zhǎng)均勻。可見(jiàn)菌株HZ12和HZ02可抑制灰霉菌絲的生長(zhǎng)。
圖15正常生長(zhǎng)菌絲
圖16 菌株HZ12擴(kuò)散培養(yǎng)邊緣菌絲
圖17 菌株HZ02擴(kuò)散培養(yǎng)邊緣菌絲
2.4.3 拮抗菌對(duì)草莓灰葡萄孢菌孢子萌發(fā)的抑制作用
如圖18-20所示,添加了拮抗菌發(fā)酵濾液的灰霉孢子萌發(fā)率低,菌絲生長(zhǎng)出現(xiàn)畸形:多核,細(xì)胞內(nèi)容物出現(xiàn)凝聚、空洞,菌絲粗短等?;颐规咦釉?%的PDB培養(yǎng)基中培養(yǎng)24h,萌發(fā)率穩(wěn)定的保持在90%以上,平均達(dá)到94.72;添加拮抗菌發(fā)酵上清液的孢子懸液中,菌株HZ12處理的萌發(fā)率不超過(guò)14%,菌株HZ02處理的萌發(fā)率不超過(guò)18%;兩株拮抗菌對(duì)灰霉孢子的萌發(fā)有較強(qiáng)的抑制作用。
圖18 PDB孢子萌發(fā)液
圖 19 添加HZ12發(fā)酵液的孢子萌發(fā)液
圖20 添加HZ02發(fā)酵液的孢子萌發(fā)液
表5拮抗菌對(duì)灰霉孢子的萌發(fā)抑制作用
綜上所述,從蘭州市花莊鎮(zhèn)河咀村草莓種植基地灰霉病高發(fā)區(qū)病果根際土壤篩選到的兩株細(xì)菌,通過(guò)對(duì)分離純化的菌株進(jìn)行形態(tài)學(xué)鑒定、生物學(xué)特征及分子生物學(xué)鑒定,根據(jù)同源性比較,菌株HZ12鑒定為枯草芽孢桿菌,菌株HZ02 為解淀粉芽孢桿菌。菌株HZ12、HZ02 對(duì)灰霉均有較好的抑制作用,可致使菌絲生長(zhǎng)出現(xiàn)多核、空洞,菌絲粗短,生長(zhǎng)緩慢;灰葡萄孢子萌發(fā)率從>90%降低到<18%,很大程度上減少了灰霉菌的感染率。研究發(fā)現(xiàn),芽孢桿菌的抗病機(jī)制主要是與致病菌競(jìng)爭(zhēng)營(yíng)養(yǎng)和空間位點(diǎn)、分泌脂肽類(lèi)化合物、有機(jī)酸、水解酶等抑菌物質(zhì),誘導(dǎo)植物產(chǎn)生抗性等[16-21]。本研究將繼續(xù)對(duì)兩株拮抗菌發(fā)酵培養(yǎng)基的優(yōu)化、抑菌活性物質(zhì)的分離純化,抑菌物質(zhì)對(duì)灰葡萄孢菌的抑制作用機(jī)理和安全性能等方面進(jìn)一步深入研究。