林 凡 , 張震宇 , 孫付保 *, 于 林
(1.江南大學(xué) 生物工程學(xué)院,江蘇 無錫 214122;2.工業(yè)生物技術(shù)教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,江蘇 無錫 214122;3.糖化學(xué)與生物技術(shù)教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,江蘇無錫214122)
反式-4-羥脯氨酸屬于不常見的氨基酸,其在醫(yī)藥、美容、化工、食品等領(lǐng)域均具有重要作用[1-3],故近年來對其研究愈發(fā)增多。羥脯氨酸最初是在特定的蛋白中發(fā)現(xiàn)的,如膠原蛋白、肽類抗生素(放線菌素、綠灰菌素)[4],目前主要是從動物膠原蛋白中分離提取獲得[5],但由于該方法需要復(fù)雜的純化過程并會產(chǎn)生大量的廢棄物[6],所以研究酶轉(zhuǎn)化生產(chǎn)羥脯氨酸具有現(xiàn)實(shí)必要性。
putA編碼的PutA蛋白具有脯氨酸脫氫酶和吡咯啉-5-羧酸脫氫酶雙重功能,在E.coli細(xì)胞中,該蛋白可以催化脯氨酸氧化生成谷氨酸,使得細(xì)胞內(nèi)的脯氨酸積累量減少,不利于羥脯氨酸的生成。敲除putA基因可以有效提高由脯氨酸向羥脯氨酸的轉(zhuǎn)化率[7]。在TCA循環(huán)中,α-酮戊二酸脫氫酶催化α-酮戊二酸到琥珀酸的過程[8-9],sucA基因編碼的是α-酮戊二酸脫氫酶復(fù)合體的E1亞基,敲除該基因可以使α-酮戊二酸脫氫酶活性喪失[10]。而來自于指孢囊菌并已進(jìn)行密碼子優(yōu)化的反式-4-羥化酶基因(hyp)編碼的酶可以將游離的L-脯氨酸轉(zhuǎn)化為反式-4-羥脯氨酸[1,6],同時(shí)將α-酮戊二酸轉(zhuǎn)化為琥珀酸。利用此特點(diǎn),以羥化酶基因取代sucA基因,使得菌株在生長的同時(shí)可以積累反式-4-羥脯氨酸。在此過程中,反式-4-羥脯氨酸的積累與細(xì)胞的生長相互偶聯(lián)。此外,編碼透明顫菌血紅蛋白(VHb)的vgb基因可以通過提高氧氣的傳遞而增強(qiáng)呼吸作用和能量代謝[11-12],故在質(zhì)粒上引入該基因?qū)τ陂L時(shí)間的發(fā)酵過程較為有利。
1.1.1 菌種與質(zhì)粒 E.coli BL21(DE3)ΔputA為本實(shí)驗(yàn)室前期構(gòu)建,E.coli JM109、E.coli BL21(DE3)為本實(shí)驗(yàn)室保存;表達(dá)載體pUC19-ptrp2-hyp-vgb(簡稱pUHVT4)為實(shí)驗(yàn)室之前構(gòu)建的,質(zhì)粒pET21a、pKD4為本實(shí)驗(yàn)室所有,質(zhì)粒pKD46由他人惠贈,T載(pUCm-T)購自上海生工。
1.1.2 試劑與酶 實(shí)驗(yàn)中涉及的限制性內(nèi)切酶、T4 DNA連接酶、rTaq DNA聚合酶、DNA Marker購自Takara(大連寶生物),Taq DNA聚合酶和Pfu DNA聚合酶購自上海生工。膠回收試劑盒、質(zhì)粒提取試劑盒、PCR產(chǎn)物純化試劑盒、胰蛋白胨和酵母提取物購自上海生工。其他的生化試劑購自國藥。
1.1.3 引物 引物H1和H2用于合成sucA基因的上游同源臂,P1和P2用于合成卡那抗性基因(kan),引物H3和H4用于合成sucA基因的下游同源臂,同源臂選用長同源臂,引物設(shè)計(jì)參考文獻(xiàn)[13]。其中,引物 H1的 5′端帶有 Nde I酶切位點(diǎn),H4的5′端帶有Xho I酶切位點(diǎn),用于基因片段與載體的連接;引物H2帶有Hind III和BamH I酶切位點(diǎn),用于羥化酶基因的插入;引物H2和P1、P2和H3反向互補(bǔ),用于基因片段的融合。上述引物均由上海生工合成。
表1 研究中用到的引物Table 1 Primers used in the research
1.2.1 含有打靶片段載體的構(gòu)建 擴(kuò)增獲得sucA基因的上、下游同源臂和卡那抗性基因,將三者以摩爾比1∶1∶1進(jìn)行混合,以H1和H4為引物,擴(kuò)增獲得3個基因片段的融合片段[14-15]。將融合片段與T載(pUCm-T)以 7∶1~10∶1 的比例混合,用 T4 DNA連接酶進(jìn)行連接后導(dǎo)入E.coli JM109,載體命名為pUCm-T-AK,連接體系和條件參照Takara說明書。之后用Xho I和Nde I雙酶切載體pUCm-T-AK獲得含有酶切位點(diǎn)的融合片段,與同樣雙酶切的pET21a進(jìn)行連接,載體命名為pET21a-AK。Hind III和BamH I雙酶切質(zhì)粒pUHVT4獲得hyp基因,與同樣雙酶切的質(zhì)粒pET21a-AK進(jìn)行連接,載體命名為pET21a-AKH,從而獲得含有打靶片段的載體。
1.2.2 sucA基因敲除菌的獲得 本次基因敲除是基于Red重組系統(tǒng)進(jìn)行的,具體實(shí)施步驟參考文獻(xiàn)[16-18]。
1.2.3 發(fā)酵液中羥脯氨酸的測定 采用比色法測定發(fā)酵液中的羥脯氨酸含量,反應(yīng)原理與具體實(shí)驗(yàn)步驟參考文獻(xiàn)[19]。
1.2.4 初步篩選高產(chǎn)菌株 將質(zhì)粒pUHVT4轉(zhuǎn)入E.coli BL21(DE3)ΔputAΔsucA 的轉(zhuǎn)化子中,35 ℃,220 r/min進(jìn)行發(fā)酵 ,比色法測定羥脯氨酸的產(chǎn)量,將最為高產(chǎn)的菌株作為后續(xù)實(shí)驗(yàn)的研究對象。提取該菌株的基因組,以Y1和H4為引物,PCR獲得打靶片段所在的基因片段,并測序。
1.2.5 全細(xì)胞酶活測定 在平板上劃線后,挑取單菌落接種LB液體培養(yǎng)基,37℃培養(yǎng)12 h,測定菌的全細(xì)胞酶活,測定方法參考[1,4]。其中,1個單位酶活的定義為:1 min催化反應(yīng)得到1 μmol反式-4-羥脯氨酸的酶量,單位為U;全細(xì)胞酶活為每g干菌體的酶活,單位為U/DCW。
1.2.6 重組菌株發(fā)酵條件的優(yōu)化 種子培養(yǎng):挑取活 化 后 的 E.coliBL21 (DE3)ΔputAΔsucA(pUHVT4)單菌落接種到含有抗生素的30 mL(250 mL錐形瓶)LB培養(yǎng)基中,37℃,220 r/min培養(yǎng)8 h。發(fā)酵培養(yǎng):將種子液以6%的接種量接入30 mL(250 mL錐形瓶)發(fā)酵培養(yǎng)基中,35℃,220 r/min培養(yǎng)12 h。在搖瓶水平優(yōu)化發(fā)酵培養(yǎng)基的組分與發(fā)酵條件下,確定較優(yōu)的培養(yǎng)基組分。 包括葡萄糖(0、2、4、8、12、16 g/L)和甘油(0、3、6、10、14 g/L)、玉米漿(8、12、16、20、24 g/L)、K2HPO4(1.5、9、11、14、17、25 g/L)、(NH4)2SO4(0、3、8、13、17、21 g/L)和 FeSO4濃度 (0、1、2、3、4 mmol/L) 以及 pH(6.5、7.0、7.5、8.0、8.5、9.0、9.5),之后進(jìn)行正交實(shí)驗(yàn)。
以提取的E.coli BL21(DE3)的基因組為模板,以H1、H2和H3、H4為引物,PCR獲得sucA基因的548 bp的上游同源臂和591 bp的下游同源臂。以質(zhì)粒pKD4為模板,以P1和P2為引物,獲得大小為1 521 bp的kan基因片段(圖1)。三者混合,PCR獲得大小為2.6 kb的片段。
圖1 基因敲除用PCR片段的電泳圖譜Fig.1 Electrophoresis maps of PCR products for gene deletion
重組質(zhì)粒pUCm-T-AK,用引物H1和H4作為驗(yàn)證引物,以提取的質(zhì)粒為模板,PCR獲得大小為2.6 kb的條帶為正確質(zhì)粒。質(zhì)粒pET21a-AK用Hind III單酶切獲得大小為8 049 bp的條帶,Xho I和Hind III得到大小分別為2 093 bp和5 956 bp的兩條條帶,凝膠電泳圖譜見圖2。
以提取的質(zhì)粒pET21a-AKH為模板,以H1和H4為引物,獲得大小為3.4 kb的打靶片段。電轉(zhuǎn)后的轉(zhuǎn)化子以引物Y1和P2作為驗(yàn)證引物,在NCBI里將該引物與E.coli BL21(DE3)的基因組比對后沒有條帶,缺失菌經(jīng)菌落PCR擴(kuò)增則獲得大小為3 kb的電泳條帶。驗(yàn)證正確的 E.coli BL21(DE3)ΔputAΔsucA(BPAP)轉(zhuǎn)化子有 4個,分別導(dǎo)入質(zhì)粒pUHVT4。初始脯氨酸濃度為8 mmol/L,發(fā)酵12 h的發(fā)酵結(jié)果如圖3所示,選用羥脯氨酸產(chǎn)量最高的3號菌株作為后續(xù)的實(shí)驗(yàn)對象。提取3號菌株的基因組,以Y1和H4為引物進(jìn)行PCR,將獲得的PCR片段進(jìn)行測序,測序結(jié)果表明,羥化酶基因成功重組到基因組上。
圖2 pET21a-AK單、雙酶切Fig.2 Double digests of pET21a-AK
圖3 4個轉(zhuǎn)化子的發(fā)酵結(jié)果Fig.3 Fermentation results of converters
測定 E.coli BL21 (DE3)、E.coli BL21(DE3)(pUHVT4)、E.coli BL21(DE3)ΔputA(pUHVT4)、E.coli (DE3)ΔsucA (pUHVT4)、E.coli BL21 (DE3)ΔputAΔsucA(pUHVT4)五株菌株的全細(xì)胞酶活,結(jié)果見圖4。從測定結(jié)果看,菌株E.coli BL21(DE3)ΔputAΔsucA(pUHVT4)的全細(xì)胞酶活最高,其次是E.coli BL21(DE3)ΔsucA(pUHVT4)和 E.coli BL21(DE3)ΔputA (pUHVT4), 均高于原菌 E.coli BL21(DE3)(pUHVT4),說明不論單基因敲除還是雙基因敲除均有利于提高細(xì)胞的全細(xì)胞酶活。其次,E.coli BL21(DE3)ΔsucA(pUHVT4)的全細(xì)胞酶活高于菌 E.coli BL21(DE3)ΔputA(pUHVT4),說明從全細(xì)胞酶活來看,敲除基因sucA后的產(chǎn)羥脯氨酸的效果要好于敲除基因putA。而菌株E.coli BL21(DE3)ΔputAΔsucA(pUHVT4)的全細(xì)胞酶活高于任何一個單敲除菌,說明兩個基因的敲除效果是相互疊加的卻又不是簡單的相加效果。
圖4 不同菌株的全細(xì)胞酶活Fig.4 Whole cell activity of strains
2.5.1 碳源對反式-4-羥脯氨酸產(chǎn)量的影響 在不加甘油的前提下,對葡萄糖的質(zhì)量濃度進(jìn)行優(yōu)化。從圖5來看,不加葡萄糖時(shí),OD600與羥脯氨酸的產(chǎn)量遠(yuǎn)低于其他濃度,但是羥脯氨酸的產(chǎn)量也在160 mg/L左右,分析原因可能是:發(fā)酵用的玉米漿中含有還原糖,可以為微生物提供少量的碳源。葡萄糖質(zhì)量濃度為2 g/L時(shí)的OD600遠(yuǎn)高于不加葡萄糖,但在高于2 g/L之后便沒有明顯的變化,而羥脯氨酸的產(chǎn)量則在葡萄糖質(zhì)量濃度為4g/L時(shí)達(dá)到了最高值。在葡萄糖添加質(zhì)量濃度為4 g/L的條件下,優(yōu)化甘油的濃度。從圖6來看,甘油質(zhì)量濃度對OD600沒有明顯的影響,而羥脯氨酸的產(chǎn)量則在甘油質(zhì)量濃度為6 g/L時(shí)達(dá)到了最大值。
2.5.2 氮源對反式-4-羥脯氨酸產(chǎn)量的影響 玉米漿中富含多肽、多糖、亞硫酸、蛋白質(zhì)以及多種氨基酸,這些成分多作為發(fā)酵生產(chǎn)氨基酸的前提物質(zhì)。在發(fā)酵生產(chǎn)過程中除了作為氮源,玉米漿中的生長因子尤其是生物素對氨基酸的生產(chǎn)也有促進(jìn)作用,故以玉米漿作為發(fā)酵有機(jī)氮源,成本低廉并且有效[20]。從圖7來看,玉米漿的添加有利于菌體的生長,在低于20 g/L時(shí)有利于羥脯氨酸的生成,但添加量高于20 g/L時(shí),羥脯氨酸的產(chǎn)量不但沒有提高,反而有所下降。最終優(yōu)化后,將最適的玉米漿質(zhì)量濃度定為20 g/L。
圖5 葡萄糖對反式-4-羥脯氨酸產(chǎn)量的影響Fig.5 Effect of glucose on trans-4-hydroxyproline
圖6 甘油對反式-4-羥脯氨酸產(chǎn)量的影響Fig.6 Effect of glycerol on trans-4-hydroxyproline
圖7 玉米漿對反式-4-羥脯氨酸產(chǎn)量的影響Fig.7 Effectofcorn steep liquor on trans-4-hydroxyproline
2.5.3 K2HPO4對反式-4-羥脯氨酸產(chǎn)量的影響對K2HPO4的質(zhì)量濃度進(jìn)行優(yōu)化,發(fā)現(xiàn)其對羥脯氨酸產(chǎn)量的影響最為顯著。從圖8來看,在K2HPO4的質(zhì)量濃度低于17 g/L時(shí),OD600隨著K2HPO4的添加逐漸升高,當(dāng)質(zhì)量濃度高于17 g/L時(shí),OD600有所下降。而羥脯氨酸的產(chǎn)量在質(zhì)量濃度為11 g/L時(shí)達(dá)到了最高值,由初始培養(yǎng)基的216 mg/L達(dá)到了753 mg/L。分析原因:K2HPO4為微生物的生長與氨基酸的發(fā)酵提供磷、鉀元素;同時(shí),K2HPO4水溶液呈微堿性,可以與酸性物質(zhì)反應(yīng)生成KH2PO4,KH2PO4則與堿性物質(zhì)反應(yīng)生成 K2HPO4,K2HPO4與KH2PO4的酸堿性均不強(qiáng),可以將發(fā)酵體系的pH維持在較為穩(wěn)定的范圍。
圖8 K2HPO4對反式-4-羥脯氨酸產(chǎn)量的影響Fig.8 Effect of K2HPO4on trans-4-hydroxyproline
2.5.4 (NH4)2SO4對反式-4-羥脯氨酸產(chǎn)量的影響發(fā)酵過程中,(NH4)2SO4既可以作為無機(jī)氮源,同時(shí)NH4+是一種較好的緩沖離子,在某種程度上可以調(diào)節(jié)pH。其質(zhì)量濃度對羥脯氨酸產(chǎn)量的影響如圖9所示,在(NH4)2SO4質(zhì)量濃度低于 17 g/L 時(shí),OD600隨著 (NH4)2SO4的添加而升高,當(dāng)添加質(zhì)量濃度高于17 g/L時(shí),OD600開始下降。而羥脯氨酸的產(chǎn)量則在(NH4)2SO4質(zhì)量濃度為13 g/L時(shí)達(dá)到了最高值。
圖9 (NH4)2SO4對反式-4-羥脯氨酸產(chǎn)量的影響Fig.9 Effect of(NH4)2SO4on trans-4-hydroxyproline
2.5.5 FeSO4對反式-4-羥脯氨酸產(chǎn)量的影響 脯氨酸羥基化生成羥脯氨酸的過程是由反式-4-羥化酶催化的,而反式-4-羥化酶屬于2-酮戊二酸依賴型雙加氧酶家族,該酶的催化過程需要Fe2+的參與[6]。從圖10來看,OD600隨著FeSO4濃度的升高而升高,也就是說,適量的添加亞鐵離子有利于菌體的生長。當(dāng)不添加FeSO4時(shí),仍有較高的羥脯氨酸產(chǎn)量,可能是由于玉米漿中含有一定濃度的鐵元素。最終優(yōu)化結(jié)果表明,羥脯氨酸的產(chǎn)量在FeSO4濃度為1 mmol/L時(shí)達(dá)到了最高值。
圖10 FeSO4對反式-4-羥脯氨酸產(chǎn)量的影響Fig.10 Effect of FeSO4on trans-4-hydroxyproline
3.5.6 pH對反式-4-羥脯氨酸產(chǎn)量的影響 發(fā)酵培養(yǎng)液的初始pH會直接影響菌株的生長與代謝活動[21],隨著發(fā)酵過程的進(jìn)行,培養(yǎng)基成分的改變和微生物的代謝產(chǎn)物都會使pH發(fā)生極大變化。從圖11來看,隨著初始pH的增大,菌體OD600有所升高,但當(dāng)pH到9.5時(shí),菌體的生長受到極大的抑制,幾乎不能夠進(jìn)行生長。而羥脯氨酸的積累量隨著pH的增大而逐漸升高,在pH為8.5時(shí)達(dá)到了最大值,之后迅速下降。表明,過堿的環(huán)境會嚴(yán)重抑制菌的生長與羥脯氨酸的產(chǎn)生。
圖11 pH對反式-4-羥脯氨酸產(chǎn)量的影響Fig.11 Effect of pH on trans-4-hydroxyproline
3.5.7 正交實(shí)驗(yàn) 根據(jù)單因素優(yōu)化的結(jié)果,進(jìn)行正交實(shí)驗(yàn),正交因素和水平以及正交結(jié)果分別如表2和表3所示。
表2 正交實(shí)驗(yàn)因素水平Table 2 Factors level of orthogonal experiment
表3 正交實(shí)驗(yàn)結(jié)果Table 3 Results of orthogonal experiment
由表中的極差得到因素的主次順序依次為:(NH4)2SO4(E)>玉米漿(C)>Fe2+(G)>葡萄糖(A)>甘油(B)>K2HPO4(D)>NaCl(F),得到的最佳組合:A2B3C1D2E1F1G2,即葡萄糖 4 g/L,甘油 10 g/L,玉米漿16 g/L,K2HPO411 g/L,(NH4)2SO4 8 g/L,NaCl 0.75 g/L,MgSO40.3 g/L,CaCl20.005 g/L,F(xiàn)eSO41 mmol/L。優(yōu)化后的發(fā)酵培養(yǎng)基驗(yàn)證:同樣培養(yǎng)條件下,培養(yǎng)基優(yōu)化前的反式-4-羥脯氨酸產(chǎn)量為0.28 g/L,培養(yǎng)基優(yōu)化后的反式-4-羥脯氨酸產(chǎn)量為1.08 g/L,是優(yōu)化前的3.87倍。
本文在 E.coli BL21(DE3)ΔputA 的基礎(chǔ)上,進(jìn)一步敲除了基因sucA并在基因組上引入羥化酶基因(hyp)。但由于基因組上的表達(dá)量不夠高,故導(dǎo)入輔助質(zhì)粒pUC19-ptrp2-hyp-vgb,其中,vgb基因能夠提高細(xì)胞的溶氧,對于長時(shí)間的發(fā)酵過程較為有利。實(shí)驗(yàn)室前期進(jìn)行菌株 E.coli BL21(DE3)(pUHVT4)的培養(yǎng)基優(yōu)化,在初始脯氨酸400 mmol/L,發(fā)酵24 h后的反式-4-羥脯氨酸產(chǎn)量為0.97 g/L。而構(gòu)建的突變菌優(yōu)化發(fā)酵培養(yǎng)基后,在初始L-脯氨酸為100 mmol/L,發(fā)酵12 h時(shí)的產(chǎn)量為1.08 g/L,相比較而言,雙敲除菌 E.coli BL21(DE3)ΔputAΔsucA(pUHVT4)具有明顯優(yōu)勢,不僅縮短了發(fā)酵時(shí)間,而且提高了脯氨酸的轉(zhuǎn)化率。
接下來需在搖瓶優(yōu)化的基礎(chǔ)上,進(jìn)行發(fā)酵罐的放大實(shí)驗(yàn),通過流加葡萄糖,維持重組大腸桿菌的持續(xù)生長從而不斷積累反式-4-羥脯氨酸,為工業(yè)化生產(chǎn)做準(zhǔn)備。