王 鵬, 蔣 超,常 強(qiáng), 崔 磊,閆寅卓, 李 紅, 劉海坡, 韓興林,*
(1.中國(guó)食品發(fā)酵工業(yè)研究院, 北京 100027; 2.安徽文王釀酒股份有限公司, 安徽 臨泉 236400; 3.中國(guó)酒業(yè)協(xié)會(huì), 北京 100833)
中國(guó)白酒歷史悠久、種類繁多,至此已經(jīng)形成十二種香型白酒[1]。濃香型白酒作為我國(guó)傳統(tǒng)白酒的典型風(fēng)味之一,深受消費(fèi)者喜愛(ài),是我國(guó)白酒中最有影響力的酒種之一[2-3]。文王貢酒是安徽濃香型白酒的代表作之一,因?yàn)榫瀑|(zhì)綿軟、醇甜,帶有綿甜風(fēng)格,所以也稱之為綿甜型白酒。
濃香型白酒的生產(chǎn)是以酒醅為原料,以窖池為發(fā)酵容器,采用開(kāi)放式的固態(tài)發(fā)酵模式進(jìn)行的多菌種復(fù)合發(fā)酵[4-8]。濃香型白酒的釀造過(guò)程與微生物菌群的演化交替密不可分,窖內(nèi)微生物經(jīng)過(guò)長(zhǎng)期的馴化和發(fā)展,慢慢形成了獨(dú)特的微生物群落。酒醅中富含豐富的微生物,這些微生物的代謝產(chǎn)物是形成白酒獨(dú)特風(fēng)味與口感的重要物質(zhì)基礎(chǔ)[9]。因此,研究白酒發(fā)酵過(guò)程中酒醅微生物群落結(jié)構(gòu)可以了解白酒的發(fā)酵機(jī)理,解析釀造過(guò)程中的功能微生物,同時(shí)對(duì)白酒生產(chǎn)有著重要的指導(dǎo)意義[10]。
傳統(tǒng)菌群分析采用涂布分離純菌株,然后進(jìn)行分子鑒定,操作復(fù)雜,同時(shí)絕大多數(shù)的微生物是不能夠被培養(yǎng)或者很難被培養(yǎng),大量菌群的遺漏導(dǎo)致檢測(cè)結(jié)果不準(zhǔn)確[11]。高通量測(cè)序技術(shù)可以滿足對(duì)多個(gè)樣品中的微生物進(jìn)行深入分析,其主要特點(diǎn)是通量高、速度快、準(zhǔn)確度高、實(shí)時(shí)檢測(cè)、數(shù)據(jù)信息量大等,能在很短時(shí)間內(nèi)獲取大量的數(shù)據(jù)[12-13]。本文利用高通量測(cè)序技術(shù)對(duì)綿甜型白酒酒醅中原核微生物的構(gòu)成進(jìn)行分析,以期為綿甜型白酒功能微生物的篩選應(yīng)用,優(yōu)化發(fā)酵工藝提供指導(dǎo)。
窖池1號(hào)、窖池2號(hào):安徽文王釀酒股份有限公司中試車間濃香型窖池;Fast DNA Spin Kit for Soil試劑盒,美國(guó)MP公司。
Miseq型高通量測(cè)序儀,美國(guó)Illumina公司;BioSpec-nano型核酸蛋白檢測(cè)儀,德國(guó)Eppendorf公司;2-16N型高速微量離心機(jī),湖南恒諾儀器設(shè)備有限公司;Voetex-genie 2型多功能渦旋振蕩器,北京開(kāi)源國(guó)創(chuàng)科技有限公司;Mini Beadbeater型研磨珠均質(zhì)器,北京優(yōu)尼康生物科技有限公司;ES500型電子天平,上海仁沃實(shí)業(yè)發(fā)展有限公司。
1.3.1取樣方法
選取文王貢酒的2個(gè)窖池,跟蹤采集窖內(nèi)不同空間位置及不同發(fā)酵階段的酒醅。取樣位置分為上中下3層,其中窖深1.6 m,表層面糟0.2 m,上層取樣點(diǎn)(距窖頂0.6 m處)、中層取樣點(diǎn)(距窖頂1 m處)、下層取樣點(diǎn)(距窖頂1.4 m處)。
文王貢酒發(fā)酵車間窖池發(fā)酵周期為46 d,取樣時(shí)間設(shè)為發(fā)酵1、7、13、21、31、46 d。發(fā)酵期間窖池密封,取樣時(shí)使用取樣器通過(guò)取樣口直接插入酒醅進(jìn)行取樣,不破壞窖池整體的密封環(huán)境。每層取3點(diǎn)酒醅樣品均勻混合,混勻后,分裝于無(wú)菌真空塑料袋,置于冰盒運(yùn)回實(shí)驗(yàn)室,-20 ℃保藏,盡快進(jìn)行DNA提取實(shí)驗(yàn)。
本實(shí)驗(yàn)樣本DXLY和DXHY(X表示天數(shù),Y表示窖池取樣點(diǎn)的空間位置)分別表示1號(hào)窖池酒醅樣品和2號(hào)窖池酒醅樣品。
1.3.2酒醅中DNA的提取
1)加入300 mg研磨好的酒醅粉末到Lysing Matrix E管中。加入978 μL磷酸鈉緩沖液和122 μL MT緩沖液。
2)在多功能渦旋振蕩器中處理1)中離心管30 s。
3)將Lysing Matrix E管以14 000 r/min離心10 min。
4)將上清液轉(zhuǎn)移到一個(gè)新的2 mL離心管中,加入250 μL PPS,并用手搖10次進(jìn)行混合。
5)以14 000 r/min離心5 min,至形成球狀沉淀物,將上清液轉(zhuǎn)移到一個(gè)新的5 mL離心管,并加入1 mL Binding Matrix Suspension。
6)放到旋轉(zhuǎn)體或用手顛倒2 min,使DNA附著到基質(zhì)上,把離心管放到架子上靜置3 min。
7)小心去除500 μL上清液,避免擾動(dòng)沉淀的Binding Matrix,重懸剩余的上清液;轉(zhuǎn)移大約600 μL的混合液到一個(gè)SPINTMFilter中,以14 000 r·min-1離心1 min;將SPINTMFilter下面收集管中的液體倒掉;重復(fù)轉(zhuǎn)移混合液過(guò)程直到剩余混合液全部轉(zhuǎn)移離心完(1.5 mL酒醅樣品一般要轉(zhuǎn)移3次)。
8)加入500 μL SEWS-M到SPINTMFilter中,以14 000 r/min離心1 min;將SPINTMFilter下面收集管中的液體輕輕倒掉,再以14 000 r/min離心2 min,去除基質(zhì)中的SEWS-M。
9)將SPINTMFilter放到一個(gè)新的收集管中,在室溫下風(fēng)干SPINTMFilter 5 min。
10)加入50 μL DES,用移液槍槍頭在濾膜上輕輕攪動(dòng),使濾膜上的沉淀物重懸,從而使DNA有效洗提;以14 000 r/min離心1 min,使DNA轉(zhuǎn)移到收集管中。
11)處理好的樣品置于-20 ℃保藏、備用。
1.3.3酒醅DNA濃度及純度檢驗(yàn)
采用核酸蛋白檢測(cè)儀檢測(cè)酒醅樣品DNA濃度及純度。
通過(guò)對(duì)酒醅樣品進(jìn)行核酸蛋白檢測(cè),得到酒醅樣品的DNA濃度和純度,結(jié)果見(jiàn)表1。由表1可以看出,從酒醅中提取的DNA質(zhì)量濃度均在13 μg/mL以上,其OD260/280值在1.5~2.1。檢測(cè)所得曲線線性較好,適宜于PCR擴(kuò)增及后期的高通量測(cè)序。
表1 酒醅樣品濃度及純度
用Alpha Diversity分析酒醅樣品內(nèi)的群落多樣性。對(duì)不同樣品在不同一致性閾值水平(默認(rèn)提供97%、95%兩個(gè)閾值)下的Alpha Diversity分析的指數(shù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)[14]。其中,97%水平下聚類成為一個(gè)OTU的序列被認(rèn)為可能是源自于同一個(gè)種的序列;95%水平下聚類成為一個(gè)OTU的序列被認(rèn)為可能是源自于同一個(gè)屬的序列[15]。Shannon、Simpson、Chao1和ACE是反應(yīng)樣品豐富度和多樣性的重要指標(biāo),微生物群落多樣性與Shannon成正比,Shannon越大,微生物群落多樣越豐富,結(jié)果見(jiàn)表2。由表2可以看出,細(xì)菌群落檢測(cè)覆蓋率均在99.4%以上,基本可以反映出酒醅樣品中全部的原核微生物多樣性及結(jié)構(gòu)。從樣品種類來(lái)看,1號(hào)窖池酒醅中的原核微生物多樣性要高于2號(hào)窖池酒醅中的原核微生物。
表2 酒醅樣品中原核微生物群落多樣性指數(shù)
圖1 細(xì)菌的操作分類單元維恩圖Fig.1 Venn diagram of operational taxonomic units of bacteria
為了研究酒醅中物種的組成多樣性信息,用Uparse軟件對(duì)所有酒醅樣品的全部Effective Tags 序列聚類,提供以97%的一致性將序列聚類成為OTUs結(jié)果[16]。按所有酒醅樣品間序列最小值對(duì)OTUs聚類結(jié)果進(jìn)行標(biāo)準(zhǔn)化處理后,根據(jù)OTUs聚類分析結(jié)果和研究需求,分析不同酒醅樣品之間的OTUs的共有、特有信息,并繪制韋恩圖,展示結(jié)果見(jiàn)圖1。
由圖1(a)可以看出,1號(hào)、2號(hào)窖池酒醅中分別含有細(xì)菌種類1 304、1 036個(gè)。1號(hào)和2號(hào)窖池酒醅中含有相同種類細(xì)菌914個(gè),可以看出,1號(hào)窖池和2號(hào)窖池酒醅中的原核微生物種類相似度較高。
由圖1(b)可以看出,1號(hào)窖池第1天上、中、下層酒醅中分別含有細(xì)菌種類827、816、790個(gè),上、中、下三層酒醅中含有相同種類的細(xì)菌489個(gè)。由圖1(c)可以看出,2號(hào)窖池第1天上、中、下層酒醅中分別含有細(xì)菌種類585、572、663個(gè),上、中、下三層酒醅中含有相同種類的細(xì)菌363個(gè)。由圖1(d)可以看出,1號(hào)窖池第46天上、中、下層酒醅中分別含有細(xì)菌種類160、212、269個(gè),上、中、下三層酒醅中含有相同種類的細(xì)菌110個(gè)。由圖1(e)可以看出,2號(hào)窖池第46天上、中、下層酒醅中分別含有細(xì)菌種類129、117、107個(gè),含有相同種類的細(xì)菌59個(gè)。由此可以看出,同一個(gè)窖池中原核微生物種類相似度很高,1號(hào)窖池中原核微生物的種類要高于2號(hào)窖池;同時(shí),隨著發(fā)酵的進(jìn)行,窖內(nèi)各種營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)被逐漸消耗,酒醅酸度增大,酒精含量升高,窖內(nèi)環(huán)境變得更加惡劣,不適于微生物的生長(zhǎng),致使2個(gè)窖池酒醅中的細(xì)菌種類不斷減少。
酒醅中不同微生物群落分布和種類差異對(duì)產(chǎn)酒品質(zhì)具有重要的影響。Uparse構(gòu)建OTUs時(shí)會(huì)選取代表性序列,將這些代表性序列集合用RDP Classifier與GreenGene數(shù)據(jù)庫(kù)進(jìn)行物種注釋分析(設(shè)定閾值為0.8~1)[17-18]。根據(jù)物種注釋,統(tǒng)計(jì)每個(gè)樣品在各分類水平上的序列數(shù)目,根據(jù)物種注釋結(jié)果,選取在門分類水平上最大相對(duì)豐度排名前十的門,生成的物種相對(duì)豐度分布柱形圖見(jiàn)圖2。
由圖2可以看出,1號(hào)窖池和2號(hào)窖池酒醅中的原核微生物菌群種類相似,同時(shí)菌群種類變化趨勢(shì)相同。1號(hào)窖池和2號(hào)窖池酒醅中的優(yōu)勢(shì)菌門為厚壁菌門(Firmicutes)、藍(lán)細(xì)菌門(Cyanobacteria)、變形菌門(Proteobacteria)、放線菌門(Actinobacteria)和芽單胞菌門(Gemmatimonadetes)。優(yōu)勢(shì)菌門的數(shù)量由多到少排列順序?yàn)椋篎irmicutes、Proteobacteria、Actinobacteria、Cyanobacteria、Gemmatimonadetes。發(fā)酵前期菌群種類較多,這是由于窖內(nèi)營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)豐富,同時(shí)氧氣含量較高,酒醅酸度較低,所以一些好氧細(xì)菌,例如Actinobacteria豐度較大。但是隨著發(fā)酵的進(jìn)行和窖內(nèi)微環(huán)境的改變,優(yōu)勢(shì)菌種越來(lái)越占有優(yōu)勢(shì),致使其他菌群的數(shù)量逐漸減少。隨著發(fā)酵的進(jìn)行,F(xiàn)irmicutes的豐度越來(lái)越大,分析原因主要是由于窖內(nèi)各種營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)的逐漸消耗,且酒醅酸度和酒精含量逐漸加大,窖內(nèi)微生態(tài)環(huán)境變得更加惡劣,從而不適于大量微生物的生長(zhǎng),造成窖內(nèi)微生物死亡,僅有少量適應(yīng)酸性厭氧環(huán)境的微生物生長(zhǎng)。很多厚壁菌可以產(chǎn)生內(nèi)生孢子,它可以抵抗極端環(huán)境,所以在發(fā)酵中后期厚壁菌門的豐度最大。
圖2 在門分類水平上酒醅樣品細(xì)菌菌群所占比例Fig.2 Relative proportions of bacterial flora of fermented grains samples at phylum level
根據(jù)所有酒醅樣品在屬水平的物種注釋及豐度信息,選取豐度排名前35的屬及其在每個(gè)酒醅樣品中的豐度信息繪制熱圖,并從分類信息和樣品間差異兩個(gè)層面進(jìn)行聚類,便于結(jié)果展示和信息發(fā)現(xiàn),從而找出酒醅樣品中聚集較多的物種,結(jié)果展示見(jiàn)圖3。
圖中的每一個(gè)小方格代表所對(duì)應(yīng)酒醅樣品中(橫坐標(biāo))菌(縱坐標(biāo))的相對(duì)豐度,方格紅色越紅說(shuō)明該菌的相對(duì)豐度越高。圖3 在屬分類水平上酒醅樣品細(xì)菌菌群構(gòu)成的熱圖Fig.3 Heatmap of bacterial flora of fermented grains samples at genus level
由圖3可以看出,酒醅樣品中原核微生物可分為Actinobacteria、Bacteroidetes、Cyanobacteria、Deinococcus-Thermus、Euryarchaeota、Firmicutes、Proteobacteria,共7個(gè)門。1號(hào)窖池上層細(xì)菌中,大腸桿菌志賀菌屬(Escherichia-shigella)、嗜冷桿菌屬(Psychrobacter)、芽孢八疊球菌屬(Sporosarcina)、芽孢桿菌屬(Bacillus)、谷氨酸桿菌屬(Glutamicibacter)、甲烷細(xì)菌屬(Methanobacterium)相對(duì)豐度較高。1號(hào)窖池中層細(xì)菌中,谷氨酸桿菌屬(Glutamicibacter)相對(duì)豐度較高。2號(hào)窖池中層細(xì)菌中,Malikia、脫氯單胞菌屬(Dechloromonas)、棲熱菌屬(Thermus)、硫化細(xì)菌屬(Vulcaniibacterium)、鏈球菌屬(Streptococcus)相對(duì)豐度較高。2號(hào)窖池下層細(xì)菌中,擬諾卡氏菌屬(Nocardiopsis)、雷氏菌屬(Ralstonia)相對(duì)豐度較高。1號(hào)窖池第7天的酒醅樣品中,類芽孢桿菌屬(Macellibacteroides)、擬桿菌屬(Bacteroides)、森氏梭狀芽孢桿菌屬1(Clostridiumsensustricto1)相對(duì)豐度較高。1號(hào)窖池第13天的酒醅樣品中,瘤胃桿菌屬(Rummeliibacillus)和醋酸桿菌屬(Acetobacter)相對(duì)豐度較高。1號(hào)窖池第46天下層酒醅樣品中,普雷沃氏菌屬9(Prevotella9)相對(duì)豐度較高。在發(fā)酵前期,相對(duì)豐度較高的菌屬較多,隨著發(fā)酵的進(jìn)行,相對(duì)豐度較高的菌屬數(shù)量越來(lái)越少。
本實(shí)驗(yàn)通過(guò)對(duì)酒醅樣品進(jìn)行高通量測(cè)序,得到結(jié)果:
1)通過(guò)對(duì)酒醅中原核微生物群落多樣性指數(shù)分析可以得到,1號(hào)窖池酒醅中的原核微生物多樣性要高于2號(hào)窖池酒醅中的原核微生物。
2)為了研究酒醅中物種的組成多樣性信息,對(duì)酒醅樣品進(jìn)行OTU分析,可以得出隨著發(fā)酵的進(jìn)行2個(gè)窖池酒醅中的細(xì)菌種類在不斷減少。1號(hào)窖池酒醅和2號(hào)窖池酒醅的原核微生物種類相似度較高。在同一窖池中,不同的空間位置,原核微生物種類相似度很高。
3)在門水平上酒醅中原核微生物群落結(jié)構(gòu)分析,可以得到1號(hào)窖池和2號(hào)窖池酒醅中的原核微生物菌群種類相似,同時(shí)菌群種類變化趨勢(shì)相同。優(yōu)勢(shì)菌門的數(shù)量由多到少排列順序?yàn)椋篎irmicutes、Proteobacteria、Actinobacteria、Cyanobacteria、Gemmatimonadetes。隨著發(fā)酵的進(jìn)行和窖內(nèi)微環(huán)境的改變,窖內(nèi)的菌群種類逐漸減少,不適于大量微生物的生長(zhǎng),而厚壁菌產(chǎn)生的內(nèi)生孢子可以抵抗極端環(huán)境,所以在發(fā)酵中后期厚壁菌門的豐度最大。
4)在屬水平上酒醅中原核微生物群落結(jié)構(gòu)分析,可以得到1號(hào)窖池酒醅中Escherichia-shigella,Psychrobacter,Sporosarcina,Bacillus,Glutamicibacter,Methanobacterium,Macellibacteroides,Bacteroides,Clostridiumsensustricto1,Rummeliibacillus,Acetobacter,Prevotella9相對(duì)豐度較高。2號(hào)窖池酒醅中Malikia,Dechloromonas,Thermus,Vulcaniibacterium,Streptococcus,Nocardiopsis,Ralstonia相對(duì)豐度較高。隨著發(fā)酵的進(jìn)行,相對(duì)豐度較高的菌屬數(shù)量越來(lái)越少。