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    苦水玫瑰快繁技術(shù)體系研究

    2018-10-09 08:52:56吳雁斌高彥萍梁宏杰呂和平
    甘肅農(nóng)業(yè)科技 2018年9期
    關(guān)鍵詞:苦水叢生培苗

    張 武 ,吳雁斌 ,高彥萍 ,梁宏杰 ,呂和平

    [1.甘肅省農(nóng)業(yè)科學(xué)院馬鈴薯研究所,甘肅 蘭州 730070;2.甘肅省馬鈴薯脫毒種薯(種苗)病毒檢測及安全性評價工程中心,甘肅 蘭州 730070]

    食用玫瑰花(Edible roses)為薔薇科薔薇屬植物,屬常綠落葉灌木,花季為每年的5—6月,色彩豐富,芳香馥郁[1],原產(chǎn)中國,具有理氣解郁、柔肝醒脾、活血化瘀等功效,是食品、食用香精等產(chǎn)品的重要原料[2]??嗨倒澹≧.sertata×R.rugosa)已有近200年的栽培歷史,盛產(chǎn)于甘肅省永登縣苦水鎮(zhèn),由于當(dāng)?shù)靥厥獾耐临|(zhì)、水和氣候等自然因素,苦水玫瑰香型獨特、含油量高達0.039%[3]。其花蕾小,干制后為深紫色,花瓣可入藥、釀酒及用作食品添加劑,具有較高的經(jīng)濟價值和廣闊的開發(fā)前景。傳統(tǒng)栽培技術(shù)的繁殖方法多采用先扦插生根、后嫁接培養(yǎng)的分步嫁接繁殖法,苗木繁育周期長、工序繁雜[4],難以滿足市場對苗木的需求。組織培養(yǎng)大量快繁技術(shù)是目前最先進的植物快繁技術(shù)。玫瑰組織培養(yǎng)快繁技術(shù)的關(guān)鍵是叢生芽的誘導(dǎo)、增殖與生根、組培苗的煉苗與移栽。據(jù)相關(guān)研究報道,食用玫瑰試管苗生根較為困難,且生根率低、發(fā)根周期長[5],是制約優(yōu)良品種擴大栽培形成產(chǎn)業(yè)化的關(guān)鍵因素。為了建立玫瑰無毒試管苗高效快速繁殖技術(shù)體系,滿足生產(chǎn)中的苗木需求,我們對苦水玫瑰的組培苗誘導(dǎo)、增殖、繼代與生根和煉苗移栽等技術(shù)進行了研究,以期為甘肅苦水玫瑰脫毒苗工廠化生產(chǎn)提供基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 試驗材料

    甘肅苦水玫瑰植株采自甘肅永登縣苦水鎮(zhèn)苦水街村玫瑰生態(tài)園。

    1.2 試驗方法

    1.2.1 外植體篩選 6月份從永登縣苦水鎮(zhèn)露地栽培的苦水玫瑰植株上選取半木質(zhì)化帶芽枝段,剪切整理成帶1~2個葉芽的莖段,用流水沖洗材料2 h,然后在超凈工作臺上用70%CH2(OH)5清洗0.5~1.0 min,無菌水清洗3次,10 g/kg的HgCl2溶液清洗4~5 min,最后用無菌水清洗6次。在MS培養(yǎng)基上進行初代培養(yǎng),依據(jù)發(fā)芽率大小確定適宜的外植體。

    1.2.2 增殖誘導(dǎo) 增殖誘導(dǎo)培養(yǎng)基設(shè)置7個處理,即 WPM+6-BA(0.6、0.9、1.2、1.5、1.8、2.1、2.4 mg/L)+IAA 0.2 mg/L。以MS培養(yǎng)基上的莖段發(fā)的芽為外植體,轉(zhuǎn)接于增殖培養(yǎng)基上,附加蔗糖20 g/L、瓊脂12 g/L,pH為5.8,培養(yǎng)條件為溫度(25±2)℃,光照強度2 000~2 500 lx,光照時間12 h/d,30 d后觀察生長增殖情況。每個處理接種10瓶,每瓶接種5個外植體,3次重復(fù)。同時考察外植體繼代的次數(shù)(1、2、3、4、5、6次)對增殖誘導(dǎo)的影響,繼代30 d后統(tǒng)計其增殖倍數(shù),培養(yǎng)條件同上,每個處理接種10瓶,每瓶接種5個外植體,3次重復(fù)。

    1.2.3 組培苗瓶內(nèi)生根 瓶內(nèi)生根培養(yǎng)基共9個處理,即 WPM+IBA(0.1、0.2、0.5 mg/L)+NAA(0.1、0.3、0.5 mg/L)。經(jīng)誘導(dǎo)增殖獲得的試管芽長到高3 cm左右時,將其轉(zhuǎn)移至瓶內(nèi)生根培養(yǎng)基上,暗培養(yǎng)7 d,再進行光照培養(yǎng),培養(yǎng)出完整的小植株,統(tǒng)計根長,生根系數(shù),生根率(用游標(biāo)卡尺測量每條根長,然后取平均數(shù),生根系數(shù)=總根數(shù)/總外植體數(shù),生根率=已生根外植體數(shù)/總外植體數(shù)),其他培養(yǎng)條件同上。每個處理接種10瓶,每瓶接種5個外植體,3次重復(fù)。

    1.2.4 煉苗與移栽 組培苗對外界環(huán)境的適應(yīng)需要一個漸進的過程。移栽前將玫瑰試管苗在光照培養(yǎng)室中培養(yǎng)14 d,然后打開瓶蓋在溫室高濕環(huán)境遮陰練苗5~7 d,幼苗從瓶內(nèi)取出后,將根部培養(yǎng)基清洗干凈,植入育苗床或育苗盤,盡量減少根部損傷。基質(zhì)采用60%腐殖質(zhì)、30%田園土和10%蛭石的混合物,移栽后的小拱棚遮陰保濕15 d,移栽過程中每隔7 d澆水1次。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 叢生芽增殖與誘導(dǎo)

    從表1知,6-BA在0.6~1.5 mg/L時,隨著濃度的增加,苦水玫瑰的叢生芽增殖倍數(shù)呈逐步上升趨勢。6-BA濃度達到1.5 mg/L時,叢生芽的增殖倍數(shù)達到最大值,為3.56。當(dāng)6-BA濃度超過1.5 mg/L時,其叢生芽的增殖倍數(shù)隨著濃度的升高呈下降趨勢。6-BA濃度達2.4 mg/L時,叢生芽生長速度較緩慢。低濃度的6-BA其增殖倍數(shù)雖可達到1.52,但叢生芽的生長狀況較差,且有死亡現(xiàn)象。

    表1 6-BA濃度對苦水玫瑰叢生芽增殖與誘導(dǎo)的影響

    2.2 繼代次數(shù)對叢生芽增殖與誘導(dǎo)的影響

    從表2可以看出,隨著繼代次數(shù)的增加,苦水玫瑰叢生芽增殖呈現(xiàn)出較好的增長趨勢。繼代1次時,增殖倍數(shù)最低,為3.82,且生長狀況中等,新生芽平均株高為31.78 mm;繼代2次,叢生芽增殖倍數(shù)急劇增加,為4.30,新生芽平均株高為37.36 mm,生長勢強;繼代4次后,芽增殖倍數(shù)達到5.43,且芽體顏色和芽的質(zhì)量均較佳,但新生芽較繼代3次的平均株高38.90 mm有所下降,為37.42 mm;隨后繼代5次、6次的叢生芽增殖倍數(shù)和繼代4次相近,趨于穩(wěn)定,為5.43 mm和5.37 mm,但是新生芽的平均高呈現(xiàn)下降趨勢。

    表2 繼代次數(shù)對苦水玫瑰叢生芽增殖誘導(dǎo)的影響

    2.3 試管苗的瓶內(nèi)生根

    試驗表明,隨著IBA和NAA濃度的增加,生根時間隨之減少,為40~60 d。從表3可以看出,以WPM為基本培養(yǎng)時,隨著IBA濃度的增加,苦水玫瑰試管苗的根長出現(xiàn)先升高后下降的趨勢。當(dāng)IBA濃度為0.1 mg/L、NAA濃度為0.3 mg/L時生根率最高,為82.68%,根長為31.22 mm。在WPM培養(yǎng)基中,隨著IBA濃度的增加,其生根率呈現(xiàn)先增加,而后緩慢降低的趨勢,NAA濃度為0.5 mg/L、IBA濃度為0.15 mg/L時生根率可達到69.54%,根長為20.36 mm。

    表3 培養(yǎng)基附加不同濃度植物生長調(diào)節(jié)劑對苦水玫瑰試管芽瓶內(nèi)生根的影響

    2.4 不同栽培方式對移栽成活率的影響

    試驗用60%腐殖質(zhì)、30%田園土和10%蛭石做基質(zhì),在育苗盤和苗床2種栽培條件下,設(shè)置30%遮蔭、50%遮蔭和70%遮蔭3種處理方式。結(jié)果發(fā)現(xiàn)不同遮蔭率對苦水玫瑰組培苗的移栽成活率有顯著影響,苗床栽培的成活率優(yōu)于育苗盤栽培(表4)。在30%遮蔭率的情況下,苦水玫瑰組培苗的移栽成活率最低,其中育苗盤栽培為48%,苗床栽培為55%。在遮蔭率為50%的環(huán)境中,苦水玫瑰組培苗的成活率最高,其中育苗盤栽培為76%,苗床栽培為91%;當(dāng)遮蔭率為70%時,苦水玫瑰組培苗的成活率降低,育苗盤栽培為64%、苗床栽培為78%。不同栽培方式對苦水玫瑰組培苗定植苗幼苗地上部生長的影響較大,其中苗床栽培的幼苗株高的增長指標(biāo)高于育苗盤栽培12~19 mm。上述結(jié)果表明,苗床栽培的永登苦水玫瑰組培苗在50%遮陰率條件下成活率最高,且植株生長量最佳。

    表4 試管苗不同栽培方式對苦水玫瑰移栽成活率的影響

    3 小結(jié)與討論

    試驗表明,WPM+6-BA 1.5 mg/L為苦水玫瑰組培苗誘導(dǎo)增殖培養(yǎng)的最佳培養(yǎng)基,繼代3次以上增殖效果良好。WPM+IBA 0.10 mg/L+NAA 0.3 mg/L有利于永登苦水玫瑰組培苗瓶內(nèi)生根。在復(fù)合基質(zhì),在50%遮蔭、苗床栽培條件下,苦水玫瑰組培苗的移栽成活率達91%。

    玫瑰組織培養(yǎng)快繁技術(shù)的研究報道較多,但其工廠化育苗生產(chǎn)技術(shù)仍然存在許多技術(shù)關(guān)鍵亟待解決。玫瑰增殖培養(yǎng)叢生芽的發(fā)生源主要為腋芽和不定芽[6-8],目前還沒有任何關(guān)于食用玫瑰組織培養(yǎng)方面公開發(fā)表的文獻[9],而有關(guān)苦水玫瑰的相關(guān)報道更少。主要是因為目前食用玫瑰采用傳統(tǒng)的嫁接、扦插繁殖方式[10]。

    玫瑰組培苗叢生芽增殖系數(shù)低、生根率低、生根周期長、移栽成活率低是制約玫瑰工廠化育苗最主要的因素。試管苗根原基的形成需要外源生長素的誘導(dǎo),但根原基的伸長和生長則可以在沒有外源生長素的情況下實現(xiàn)[11]。關(guān)于玫瑰瓶內(nèi)生根的研究報道較多[12],常用培養(yǎng)基為MS,使用的植物生長調(diào)節(jié)劑主要是6-BA和NAA。

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