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    進(jìn)境水產(chǎn)品中典型異尖線蟲恒溫實(shí)時(shí)熒光檢測(cè)法的建立與應(yīng)用

    2018-07-11 06:41:40柏建山趙尚志張森鄧艷黃燕瓊何淑華戴金石磊
    現(xiàn)代食品科技 2018年6期
    關(guān)鍵詞:熒光法恒溫線蟲

    柏建山,趙尚志,張森,鄧艷,黃燕瓊,何淑華,戴金,石磊

    (1.廣州機(jī)場(chǎng)出入境檢驗(yàn)檢疫局國(guó)家水產(chǎn)品檢測(cè)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,廣東廣州 510470)

    (2.暨南大學(xué)食品安全與營(yíng)養(yǎng)研究院,廣東廣州 510632)

    異尖線蟲病是人感染異尖線蟲的第三期幼蟲引起的疾病,主要是由于食入生的或未熟的海魚,如壽司和生魚片等[1]。感染的異尖線蟲可以鉆入消化道,或移行到其它組織,從而引起人的急腹癥癥狀:如劇烈腹痛、惡心、嘔吐、腹瀉等[1~4],還能導(dǎo)致人的過(guò)敏反應(yīng)[5~7]。引起異尖線蟲病的蟲種有6種[8],即簡(jiǎn)單異尖線蟲、典型異尖線蟲、抹香鯨異尖線蟲、擬地新線蟲、對(duì)盲囊線蟲和宮脂線蟲。典型異尖是廣大熱帶及副熱帶地區(qū)的優(yōu)勢(shì)蟲種,嚴(yán)重威脅了人類的健康[3,4,9],因此建立典型異尖線蟲快速準(zhǔn)確的檢測(cè)方法至關(guān)重要。

    異尖線蟲的傳統(tǒng)鑒別方法是利用其形態(tài)學(xué)特征,依據(jù)其頭端、消化道、尾部結(jié)構(gòu)特征來(lái)判斷[10]。但各個(gè)蟲種間形態(tài)相似,在不同的生長(zhǎng)階段,其形態(tài)、結(jié)構(gòu)存在很大差異,單純的依靠形態(tài)學(xué)方法很難鑒定到種間差異。

    近年來(lái),利用分子生物學(xué)方法鑒定蟲種的方法得到發(fā)展,如PCR技術(shù)。但PCR技術(shù)耗時(shí)較長(zhǎng)、需要在實(shí)驗(yàn)室內(nèi)進(jìn)行檢測(cè),這導(dǎo)致PCR技術(shù)很難在基層推廣;免疫學(xué)方法也因特異性較差而受到限制。

    環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增(LAMP)技術(shù)是一種體外的基因擴(kuò)增技術(shù)[11]。用4條特異性引物識(shí)別靶基因的6個(gè)區(qū)域,并加入兩條環(huán)引物加速反應(yīng),利用一種具有鏈置換功能的DNA聚合酶(Bst DNA polymerase)在恒溫條件(60~65 ℃)反應(yīng) 30~60 min,即可完成反應(yīng)。本研究將LAMP技術(shù)與實(shí)時(shí)熒光技術(shù)相結(jié)合,利用實(shí)時(shí)熒光技術(shù)可以將LAMP反應(yīng)可視化,進(jìn)行實(shí)時(shí)監(jiān)控,根據(jù)擴(kuò)增曲線判斷結(jié)果。與普通LAMP技術(shù)相比,反應(yīng)時(shí)間更短,反應(yīng)的靈敏度和特異性更高,操作更為簡(jiǎn)便,成本更加低廉,適合在基層推廣應(yīng)用。

    本研究根據(jù)典型異尖線蟲 ITS2區(qū)域設(shè)計(jì)特異性引物[12],建立了典型異尖線蟲的恒溫實(shí)時(shí)熒光快速檢測(cè)方法,并且進(jìn)行了靈敏度、特異性和穩(wěn)定性驗(yàn)證。

    1 材料與方法

    1.1 實(shí)驗(yàn)材料

    1.1.1 蟲體來(lái)源

    典型異尖線蟲由廣州機(jī)場(chǎng)檢驗(yàn)檢疫局國(guó)家水產(chǎn)品檢測(cè)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室在2015~2016年進(jìn)境海魚體中分離鑒定并保存。對(duì)比蟲體簡(jiǎn)單異尖線蟲(A. simplex)、短棘異尖線蟲(A.brevispiculata)、抹香鯨異尖線蟲(A.physeteris)、Anisakis nascettii、宮脂線蟲(Hysterothylacium Spp.)、對(duì)盲囊線蟲(Contracaccum Spp.)、顎口線蟲(Gnathostoma spp.)均由上述實(shí)驗(yàn)室分離鑒定并保存。

    1.1.2 主要試劑

    Bst DNA polymerase large fragment,美國(guó) New England Biolabs公司;甜菜堿(Betaine)、MgCl2,美國(guó)Sigma公司;SYBR Green Ⅰ熒光染料,Life Technologies公司;引物,上海英濰捷基貿(mào)易有限公司;DNA提取試劑盒、DNA膠回收試劑盒、18-T載體克隆試劑盒、DH5α菌株、質(zhì)粒提取試劑盒、Tap酶、Mg2+、dNTPs、PCR10×Buffer反應(yīng)液均購(gòu)自寶生物工程(大連)有限公司。

    1.2 方法

    1.2.1 蟲體基因組

    DNA提取,將蟲體從保存液中取出,置于1.5 mL離心管中,用蒸餾水反復(fù)浸泡清洗3次,每隔2 h換水1次,使用Takara公司的Universal Genomic DNA Extraction Kit Ver.5.0試劑盒,按照說(shuō)明書步驟提取異尖線蟲基因組DNA,微量紫外分光光度計(jì)檢測(cè)基因組DNA的濃度,置于-20 ℃冰箱保存?zhèn)溆谩?/p>

    1.2.2 引物設(shè)計(jì)與合成

    GenBank中獲得典型異尖線蟲 ITS2(AY826724)序列,根據(jù)ITS2的保守區(qū),利用在線設(shè)計(jì)軟件Primer Explorer version4(http://primerexplorer.jp/e)進(jìn)行LAMP引物設(shè)計(jì),共設(shè)計(jì)3套引物,將設(shè)計(jì)好的引物序列在NCBI網(wǎng)站進(jìn)行序列特異性比對(duì)。Oligo 7.0對(duì)引物之間的二聚體、發(fā)夾結(jié)構(gòu)、錯(cuò)配等情況進(jìn)行分析,引物由上海英濰捷基貿(mào)易有限公司合成。根據(jù)引物篩選試驗(yàn)結(jié)果,選取最優(yōu)引物,最終使用的引物為第二套引物(見表1)。

    表1 恒溫實(shí)時(shí)熒光法引物序列Table 1 Sequence of primers for the real-time LAMP

    1.2.3 質(zhì)粒構(gòu)建

    用LAMP引物的外引物F3、B3對(duì)典型異尖線蟲基因組 DNA進(jìn)行 PCR擴(kuò)增,使用 Takara公司的Agarose Gel DNA Extraction Kit Ver.4.0試劑盒,按照說(shuō)明書步驟進(jìn)行DNA片段的回收,使用Takara公司的pMDTM 18-T Vector Cloning Kit試劑盒,按照說(shuō)明書步驟進(jìn)行質(zhì)粒構(gòu)建,使用 Takara公司的 Plasmid Purification Kit Ver.4.0試劑盒,按照說(shuō)明書步驟進(jìn)行質(zhì)粒的提取。用NanoDrop2000微量紫外分光光度計(jì)檢測(cè)質(zhì)粒DNA的濃度,將質(zhì)粒置于-20 ℃冰箱保存。

    1.2.4 恒溫實(shí)時(shí)熒光法反應(yīng)體系的建立

    本研究采用 25 μL反應(yīng)體系,8 mM dNTP、10×ThermoPol反應(yīng)緩沖液、120 mM MgSO4水溶液、F3 0.2 μM、B3 0.2 μM、FIP 1.6 μM、BIP 1.6 μM、LF 0.8 μM、LB 0.8 μM、DNA聚合酶8 U、10×SYBR Green I 0.5 μL、待檢樣品2 μL,用超純水補(bǔ)齊到25 μL,最后在體系表面加密封油防止污染,將配制好的反應(yīng)管混勻后離心,以典型異尖線蟲DNA為陽(yáng)性對(duì)照,超純水為陰性對(duì)照,于LAMP恒溫?cái)U(kuò)增檢測(cè)儀(廣州雙螺旋基因技術(shù)有限公司)中63 ℃反應(yīng)45 min。

    結(jié)果判讀方法:若有“S”型擴(kuò)增曲線,則判斷為陽(yáng)性,若無(wú)“S”型擴(kuò)增曲線,則判斷為陰性。

    1.2.5 特異性試驗(yàn)

    用建立的恒溫實(shí)時(shí)熒光法對(duì)其它寄生蟲簡(jiǎn)單異尖線蟲(A. simplex)、短棘異尖線蟲(A. brevispiculata)、抹香鯨異尖線蟲(A. physeteris)、anisakis nascettii、宮脂線蟲(Hysterothylacium Spp.)、對(duì)盲囊線蟲(Contracaccum Spp.)、顎口線蟲(Ggnathostoma spp.)的DNA進(jìn)行擴(kuò)增。

    1.2.6 靈敏度試驗(yàn)

    將含目的基因片段的質(zhì)粒DNA以10倍的梯度稀釋到 1 ng/μL、100 pg/μL、10 pg/μL、1 pg/μL、100 fg/μL、10 fg/μL、1 fg/μL、100 ag/μL、10 ag/μL,取 10 pg/μL~10 ag/μL濃度的模板進(jìn)行恒溫實(shí)時(shí)熒光法擴(kuò)增。

    1.2.7 與PCR方法比較

    用外引物 F3、B3作為 PCR 引物對(duì) 10 pg/μL~1 fg/μL質(zhì)粒模板進(jìn)行PCR擴(kuò)增,體系為25 μL:2.5 μL 10×PCR buffer,2 mM Mg2+,0.8 mM dNTPs,0.4 μM F3 引物,0.4 μM B3引物,1.25 U Taq酶(Takara),2 μL DNA模板,用超純水補(bǔ)齊至25 μL。反應(yīng)程序?yàn)椋?5 ℃預(yù)變性5 min;95 ℃變性45 s、60 ℃退火延伸1 min,40個(gè)循環(huán)。反應(yīng)產(chǎn)物在1%瓊脂糖凝膠中進(jìn)行電泳20 min。

    1.2.8 實(shí)際樣品的檢測(cè)

    對(duì)廣州機(jī)場(chǎng)檢驗(yàn)檢疫局國(guó)家水產(chǎn)品檢測(cè)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室在2015年至2016年,5批次來(lái)自熱帶地區(qū)海魚體內(nèi)檢出的異尖線蟲進(jìn)行檢測(cè),共選取41條蟲體進(jìn)行恒溫實(shí)時(shí)熒光法檢測(cè),并與 PCR檢測(cè)方法進(jìn)行比較。PCR檢測(cè)方法依據(jù)中華人民共和國(guó)出入境檢驗(yàn)檢疫行業(yè)標(biāo)準(zhǔn) SC/T 7210-2011,使用上游引物 390(5’-ATCCGTGTTTCAAGACGGG-3’)和下游引物391(5’-AGCGGAGGAAAAGAAACTAA-3’)對(duì)蟲體DNA進(jìn)行擴(kuò)增,反應(yīng)體系參照1.1.5,反應(yīng)程序?yàn)椋?4 ℃預(yù)變性 5 min;94 ℃變性 30 s,55 ℃退火 30 s,72 ℃延伸1 min,35個(gè)循環(huán);72 ℃延伸8 min。反應(yīng)產(chǎn)物大小為800 bp左右,送測(cè)序公司測(cè)序,將測(cè)序結(jié)果在NCBI網(wǎng)站上進(jìn)行序列比對(duì)。

    2 結(jié)果與討論

    2.1 恒溫實(shí)時(shí)熒光法反應(yīng)條件的確定

    圖1 恒溫實(shí)時(shí)熒光法引物反應(yīng)效率的檢測(cè)Fig.1 Detection of the reaction efficiency of the real-time LAMP primers

    用3套特異性引物對(duì)典型異尖線蟲DNA進(jìn)行恒溫實(shí)時(shí)熒光法擴(kuò)增,篩選出最優(yōu)的特異性引物。結(jié)果顯示,3套引物均能擴(kuò)增,而第二套引物擴(kuò)增曲線最標(biāo)準(zhǔn),出峰時(shí)間最短(見圖1),所以選取第二套引物作為本研究的特異性引物。

    2.2 特異性試驗(yàn)

    圖2 典型異尖線蟲恒溫實(shí)時(shí)熒光法特異性試驗(yàn)Fig.2 Assessment of specificity of the real-time LAMP assay for A.typica

    特異性試驗(yàn)表明,對(duì)于短棘異尖線蟲(A.brevispiculata)、抹香鯨異尖線蟲(A. physeteris)、典型異尖線蟲(A. typica)、anisakis nascettii、宮脂線蟲(Hysterothylacium spp.)、對(duì)盲囊線蟲(Contracaccumspp.)、顎口線蟲(Ggnathostoma spp.)的DNA模板,未產(chǎn)生“S”型擴(kuò)增曲線,說(shuō)明沒(méi)有目的片段擴(kuò)增,對(duì)于典型異尖線蟲DNA模板,產(chǎn)生“S”型擴(kuò)增曲線,說(shuō)明目的片段能夠擴(kuò)增(見圖2),表明建立的典型異尖線蟲的恒溫實(shí)時(shí)熒光檢測(cè)方法具有嚴(yán)格的特異性。

    2.3 靈敏度試驗(yàn)

    圖3 典型異尖線蟲恒溫實(shí)時(shí)熒光法的靈敏度試驗(yàn)Fig.3 Assessment of sensitivity of the real-time LAMP for A.typica

    圖4 典型異尖線蟲恒溫實(shí)時(shí)熒光法與PCR方法的比較Fig.4 Comprision of the real-time LAMP for A.typica and theconventional PCR

    含目的基因片段的質(zhì)粒濃度為29 ng/μL,將其稀釋到 1 ng/μL、100 pg/μL、10 pg/μL、1 pg/μL、100 fg/μL、10 fg/μL、1 fg/μL、100 ag/μL、10 ag/μL,選取 10 pg/μL~10 ag/μL質(zhì)粒模板進(jìn)行恒溫實(shí)時(shí)熒光法擴(kuò)增,其檢測(cè)限為1 fg/μL(見圖3)。用PCR方法對(duì)相同濃度的質(zhì)粒模板進(jìn)行擴(kuò)增,其檢測(cè)限為100 fg/μL(見圖4),恒溫實(shí)時(shí)熒光法的靈敏度比PCR方法高出兩個(gè)數(shù)量級(jí)。表明建立的典型異尖線蟲恒溫實(shí)時(shí)熒光檢測(cè)方法具有很高的靈敏度。

    2.4 重復(fù)性和穩(wěn)定性試驗(yàn)

    圖5 典型異尖線蟲恒溫實(shí)時(shí)熒光法的穩(wěn)定性試驗(yàn)Fig.5 Assessment of stability of the real-time LAMP for A.typica

    用恒溫實(shí)時(shí)熒光法對(duì)最低檢測(cè)限1 fg/μL的質(zhì)粒模板進(jìn)行15次重復(fù)試驗(yàn),驗(yàn)證本研究的穩(wěn)定性和重復(fù)性。對(duì)1 fg/μL質(zhì)粒模板的15次平行試驗(yàn),均產(chǎn)生“S”型擴(kuò)增曲線,說(shuō)明全部擴(kuò)增,且出峰時(shí)間相差不大,擴(kuò)增曲線標(biāo)準(zhǔn),重復(fù)性良好,陰性對(duì)照無(wú)擴(kuò)增,假陽(yáng)性率為0(見圖5)。表明建立的典型異尖線蟲的恒溫實(shí)時(shí)熒光檢測(cè)方法具有良好的重復(fù)性和穩(wěn)定性。

    2.5 實(shí)際樣品的檢測(cè)

    用恒溫實(shí)時(shí)熒光法對(duì)5批次來(lái)自熱帶地區(qū)的進(jìn)境實(shí)際樣品進(jìn)行檢測(cè),并與PCR檢測(cè)方法進(jìn)行比較。恒溫實(shí)時(shí)熒光法檢測(cè)結(jié)果與PCR檢測(cè)結(jié)果完全一致,假陽(yáng)性率為0(見表2)。說(shuō)明本研究建立的LAMP檢測(cè)方法適用于典型異尖線蟲實(shí)際樣本的檢測(cè)。

    表2 實(shí)際樣品中恒溫實(shí)時(shí)熒光法和PCR方法檢測(cè)典型異尖線蟲的結(jié)果Table 2 Detection results for detrction A.typica by real-time LAMP method and PCR method in samples

    3 結(jié)論

    3.1 自1960年van Thiel在荷蘭發(fā)現(xiàn)并報(bào)道了異尖線蟲病例后,國(guó)際上感染并報(bào)道的異尖線蟲病例越來(lái)越多。至今,全世界已有超過(guò)3萬(wàn)異尖線蟲病例,所以異尖線蟲日益受到各界的重視,我國(guó)已將異尖線蟲列為二類禁止入境的寄生蟲。我國(guó)在2013年報(bào)道了首例異尖線蟲病病例[13],隨著人口流動(dòng)、文化傳播以及國(guó)際貿(mào)易的全球化,特別是人們生食魚肉變得越來(lái)越普遍,異尖線蟲病的發(fā)生率也在不斷增加,由異尖線蟲或其過(guò)敏物質(zhì)引起的過(guò)敏反應(yīng)也在不斷增加[14]。在所有的致病種中,典型異尖線蟲廣泛存在于熱帶及副熱帶地區(qū),是很多海域的優(yōu)勢(shì)蟲種[3,4,9,15,16],廣州機(jī)場(chǎng)出入境檢驗(yàn)檢疫局國(guó)家水產(chǎn)品檢測(cè)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室對(duì)來(lái)自孟加拉、越南和澳大利亞等國(guó)家的海魚進(jìn)行檢測(cè),發(fā)現(xiàn)了大量的典型異尖線蟲,并且肌肉中的感染率很高,嚴(yán)重威脅了人類的健康。

    3.2 為了能夠更好的檢測(cè)典型異尖線蟲,有效控制其傳播和感染,快速、靈敏和準(zhǔn)確的檢測(cè)方法是必不可少的。LAMP方法已經(jīng)應(yīng)用于檢測(cè)食源性病原的多個(gè)領(lǐng)域,如:細(xì)菌、病毒、真菌、原蟲[17,18],但在蠕蟲檢測(cè)上的應(yīng)用還很少,影響了蠕蟲病病原檢測(cè)技術(shù)的發(fā)展。以往,LAMP檢測(cè)方法的結(jié)果判定有凝膠電泳法、顯色法、濁度法。凝膠電泳法需要開蓋才能完成,可能產(chǎn)生氣溶膠污染,而造成假陽(yáng)性;顯色法是最經(jīng)濟(jì)的方法,不需要在反應(yīng)過(guò)程中收集信號(hào),只需恒溫水浴鍋即可完成反應(yīng),但顯色法需要反應(yīng)結(jié)束后開蓋加入顯色液,也容易造成擴(kuò)增產(chǎn)物的氣溶膠污染;濁度法包括焦磷酸鎂沉淀觀察法和實(shí)時(shí)濁度法,不需要添加額外的試劑,不需要開蓋,但焦磷酸鎂沉淀觀察法存在人為判斷的主觀性,實(shí)時(shí)濁度法也因渾濁顆粒不均一和反應(yīng)液存在不透明顆粒等因素導(dǎo)致較低的靈敏度。為了克服上述方法的不足,恒溫實(shí)時(shí)熒光法不斷被發(fā)開并應(yīng)用于實(shí)際的樣品檢測(cè)中,它是一種新型的可視化方法,將LAMP技術(shù)與實(shí)時(shí)熒光檢測(cè)技術(shù)有機(jī)的結(jié)合,可以對(duì)擴(kuò)增過(guò)程進(jìn)行及時(shí)判讀,在保證高敏感性的同時(shí),使檢測(cè)結(jié)果數(shù)據(jù)化、形象化,不同于終點(diǎn)判讀方法,可以在反應(yīng)過(guò)程中對(duì)出峰時(shí)間、擴(kuò)增曲線以及擴(kuò)增效率進(jìn)行實(shí)時(shí)監(jiān)控,使反應(yīng)時(shí)間更短,在一定程度上避免了假陽(yáng)性的存在。

    3.3 本研究根據(jù)典型異尖線蟲的ITS2特異性基因,建立了典型異尖線蟲的恒溫實(shí)時(shí)熒光檢測(cè)法,該方法具有靈敏度高、特異性好、方便和快速等優(yōu)點(diǎn),靈敏度可達(dá)1 fg/μL,反應(yīng)時(shí)間短,45 min內(nèi)便可完成反應(yīng),而傳統(tǒng)的PCR方法至少需要2~3 h。在澳大利亞等國(guó)家進(jìn)境水產(chǎn)品中應(yīng)用該方法進(jìn)行檢測(cè),結(jié)果表明該檢測(cè)方法具有廣泛的實(shí)用性和良好的應(yīng)用前景,特別適合于在基層和各進(jìn)行推廣和應(yīng)用。

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