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    健骨顆粒對鈦顆粒誘導的骨溶解模型大鼠OPG/RANKL/RANK mRNA的調(diào)控作用

    2018-07-04 07:13:28林麗瓊肖莉莉馮爾宥王武煉張怡元
    福建中醫(yī)藥 2018年3期
    關(guān)鍵詞:顱骨植骨骨細胞

    林麗瓊,林 煜,肖莉莉,馮爾宥,王武煉,張怡元

    (廈門大學附屬福州第二醫(yī)院,福建 福州 350007)

    人工關(guān)節(jié)置換術(shù)是治療終末期關(guān)節(jié)疾病成功有效的方法,假體周圍骨溶解是引起人工關(guān)節(jié)假體無菌性松動、關(guān)節(jié)置換術(shù)中晚期失敗的最主要原因[1]。假體磨損表面釋放顆粒誘發(fā)炎性反應,促進破骨細胞活化成熟,引起假體周圍骨溶解吸收[2]。目前無法完全避免假體材料產(chǎn)生磨損顆粒,缺乏有效的預防手段,因此尋找防治假體周圍骨溶解的藥物是降低假體松動發(fā)生率的研究難點及熱點。OPG/RANKL/RANK系統(tǒng)是參與骨溶解的核心信號通路[3],成骨細胞表面分泌核因子-κB受體活化因子配體(receptor activator of NF-кB ligand,RANKL)可與破骨細胞或破骨前體細胞表面的核因子-κB受體活化因子(receptor activator of NF-кB,RANK)結(jié)合,促進破骨細胞的分化成熟,并抑制其凋亡;成骨細胞分泌骨保護素(osteoprotegerin,OPG)可競爭性結(jié)合RANKL,阻止RANKL與RANK的結(jié)合,從而阻斷骨溶解信號通路,起骨保護作用。前期研究表明,健骨顆粒含藥血清可抑制體外成骨樣細胞RANKL mRNA表達,促進OPG mRNA表達,競爭性結(jié)合RANKL,抑制骨吸收信號的傳遞,抑制破骨細胞的生成、活性,從而抑制骨吸收[4-5]。本實驗通過研究健骨顆粒對鈦顆粒誘導的骨溶解模型大鼠OPG/RANKL/RANK系統(tǒng)相關(guān)因子的影響,以期為其防治人工關(guān)節(jié)無菌性松動提供實驗基礎(chǔ)。

    1 實驗材料

    1.1 實驗動物 清潔級3月齡雄性SD大鼠40只,體質(zhì)量(290±20)g,由福建醫(yī)科大學實驗動物中心提供,許可證號:SCXK(閩)2012-0001,飼養(yǎng)于福建省中醫(yī)藥研究院比較醫(yī)學中心,合格證號:醫(yī)動學第23-016號,實驗動物自由飲水進食。

    1.2 實驗藥物 健骨顆粒由煅狗骨、淫羊藿、黨參、山茱萸、淮山藥等藥物組成,原藥材購自福建省藥材公司,由福建省中醫(yī)藥研究院試車間加工制備,每克健骨顆粒含生藥2.9 g。

    1.3 實驗試劑 鈦顆粒(瑞士普魯斯外科植入物有限公司);水合氯醛、多聚甲醛(國藥集團化學試劑有限公司);HE染液(北京索萊寶科技有限公司);TRIzol(美國 invitrogen 公司);PrimeScriptTMRT reagent Kit with gDNA Eraser(日本 Takara 公司);SYBRTMPremix Ex TaqTM(日本Takara公司)。

    1.4 實驗儀器 TS-12U生物組織脫水機、BM-VⅡ石蠟包埋機(孝感亞光醫(yī)用電子技術(shù)有限公司);RM2235石蠟切片機、DM4000B正置顯微鏡(德國Leica公司);Infinite M200酶標儀(瑞士Tecan公司);2 000超微量分光光度計(美國 Nanodrop公司);S1000PCR擴增儀(美國BIO-RAD公司);7 500 Fast熒光定量PCR儀(美國ABI公司)。

    2 實驗方法

    2.1 鈦顆粒混懸液制備 磨損顆粒采用鈦顆粒,平均直徑小于10 μm。將鈦顆粒置于180℃烤箱6 h,70%乙醇浸泡48 h,PBS洗滌,梯度離心,無水乙醇浸泡24 h,沉淀鈦顆粒,去除無水乙醇后自然干燥,精密天平分裝成30 mg/包,高壓蒸汽滅菌30 min,60℃恒溫箱烘干后,4℃保存?zhèn)溆?。鈦顆粒通過內(nèi)毒素檢測試劑盒檢測鈦微粒內(nèi)毒素<0.25 Eu/mL。臨用前加入生理鹽水配置成10 mg/mL的鈦顆?;鞈乙?。

    2.2 動物分組及模型制備 大鼠適應性喂養(yǎng)1周,完全隨機法選取10只取其顱骨作為植骨的供體,隨機選取30只分為對照組、模型組、健骨顆粒組各10只。大鼠脫頸椎處死,沿顱正中線剪開皮膚,分離顱骨,將顱骨修成4 mm×3 mm大小,完整保留顱骨表面骨膜,置于無菌生理鹽水中備用。

    參照文獻[6]制備植骨氣囊骨溶解模型,以大鼠背部正中線距尾根部10 cm為中心,電動剃毛刀剃毛,背部備皮消毒,每天皮下注射無菌空氣,每次1 mL,連續(xù)5天,形成氣囊,建立氣囊模型;大鼠禁食不禁水,稱重,10%水合氯醛按0.3 mL/100 g劑量腹腔注射麻醉,碘伏消毒,鋪無菌單,沿氣囊邊緣作切口,將顱骨片植入氣囊中心,每只大鼠植入1片顱骨片,縫合切口,建立氣囊植骨模型。對照組大鼠氣囊內(nèi)注射0.5 mL生理鹽水,模型組、健骨顆粒組氣囊內(nèi)注射0.5 mL鈦顆粒懸液,建立骨溶解病理模型。

    2.3 藥物干預 術(shù)后24 h進行藥物干預,大鼠灌胃劑量按實驗動物體表面積換算,健骨顆粒組按2 g/(kg·d)予健骨顆?;鞈乙汗辔?,對照組和模型組予等量生理鹽水灌胃,連續(xù)灌胃2周。實驗大鼠均在相同條件下自由攝食、飲水。灌胃結(jié)束后取材,取出完整氣囊,將樣本一切為二,一份置于4%多聚甲醛中固定備用;一份過液氮置于-80℃超低溫冰箱保存?zhèn)溆谩?/p>

    2.4 觀察指標及方法

    2.4.1 HE染色 將樣本置于4%多聚甲醛中室溫下固定24 h后,10%乙二胺四乙酸二鈉脫鈣4周;水洗,經(jīng)梯度乙醇脫水、二甲苯透明、浸蠟,石蠟包埋;以顱骨矢狀面為切面,6 μm厚度連續(xù)切片,切片脫蠟至水,Ehrlich蘇木素染色40 min,水洗返藍,伊紅染色1 min,脫水透明,中性樹膠封片,光鏡下觀察囊壁炎癥反應及植骨邊緣溶解情況。200倍鏡下隨機選取4個視野,采用Image Pro Plus 6.0圖像分析軟件計算陽性細胞數(shù)量,取均值作為細胞密度。2.4.2 IL-1β、TNF-α含量檢測 取出液氮中樣本,研磨成粉,加入PBS混勻,3000 r/min離心10 min,取上清液,嚴格按照ELISA試劑盒說明書操作,酶標儀測定吸光度,繪制標準曲線,計算樣本IL-1β、TNF-α含量。

    2.4.3 OPG、RANKL mRNA表達檢測 采用Realtime PCR法檢測,預冷研體,-80℃中取出樣本,加液氮研磨為粉狀,采用TRIzol提取總RNA,超微量分光光度計測A260/A280比值,按逆轉(zhuǎn)錄試劑盒逆轉(zhuǎn)錄合成cDNA,-20℃保存?zhèn)溆?。采用ABI 7500 Fast進行熒光實時定量PCR,引物由Takara公司合成,β-actin:上游 5′AGGCTGTGTTGTCCCTGTA 3′,下游 5′ATGTCACGCACGATTTCC 3′,產(chǎn)物長度 193 bp;OPG:上游 5′CGAAAGCACCCTGTAGGAA 3′,下游5′TGTCCACCAGAACACTCAGC 3′,產(chǎn)物長度 145 bp;RANKL:上游5′TGGAGAGCGAAGACACAGA3′,下游 5′CAGACTGACTTTATGGGAACC 3′,產(chǎn)物長度250 bp。 反應體系:(2×)SYBR Premix Ex Taq 10 μL,(50×)ROX Reference Dye Ⅱ 0.4 μL,(10 μM)PCR Forward Primer 0.4 μL, (10 μM)PCR Reverse Primer 0.4 μL,cDNA 模板 2 μL,滅菌水 6.8 μL。 反應條件:95 ℃,30 s預變性;95 ℃ 5 s,58 ℃ 10 s,72℃ 15 s,共 40個循環(huán)。β-actin為內(nèi)參基因,測定目標基因Ct值,以對照組相對表達量為1,2-ΔΔCt計算目的基因相對表達量。

    2.5 統(tǒng)計學方法 采用SPSS 20.0統(tǒng)計軟件進行數(shù)據(jù)分析。計量資料符合正態(tài)分布以(x±s)表示,采用單因素方差分析;非正態(tài)分布采用非參數(shù)檢驗。

    3 結(jié) 果

    3.1 HE染色 HE染色顯示對照組(圖1A)植入顱骨片較完整,骨片表面未見明顯骨吸收,囊壁組織與骨片貼合欠佳,囊壁組織炎性反應輕,以成纖維細胞為主,可見少量的炎癥細胞;模型組(圖1B)骨片表面可見明顯骨吸收,植骨溶解凹陷,囊壁組織與骨片貼合較緊,囊壁增厚,可見明顯炎癥細胞浸潤;健骨顆粒組(圖1C)骨片表面可見骨吸收陷窩,植骨溶解程度、囊壁厚度、炎癥細胞浸潤較模型組低。

    3.2 3組干預后IL-1β、TNF-α含量比較 見表1。

    3.3 3組干預后 OPG、RANKL mRNA表達比較見表2。

    4 討 論

    人工關(guān)節(jié)置換術(shù)后假體磨損顆粒誘發(fā)炎性反應,單核巨噬細胞增多。單核巨噬細胞可作為破骨細胞前體分化為破骨細胞,炎癥細胞浸潤釋放多種炎癥因子, 如 IL-1β、IL-6、TNF-α、M-CSF、PGE2等[7-8],是強大的骨吸收誘導劑,可增加破骨細胞的活性。破骨細胞是體內(nèi)唯一具有骨吸收、骨溶解作用的細胞,其數(shù)量的增加和活性的增強引起假體周圍骨溶解,使假體與骨之間空隙增大,造成假體松動。

    圖1 植骨囊壁的HE染色圖(×50)

    表2 3 組干預后 IL-1β、TNF-α 含量比較(x±s)pg/mL

    表3 3組干預后OPG、RANKL mRNA表達比較(x±s)

    健骨顆粒以“腎主骨,生髓”“補先后天”理論為指導,選取煅狗骨、淫羊藿、山茱萸、黨參、淮山藥等組方而成,旨在補腎健脾、強筋壯骨。藥理研究表明:煅狗骨可促進骨基質(zhì)、新骨形成[9];淫羊藿苷可抑制RAW264.7向破骨細胞分化及骨吸收活性[10],淫羊藿苷、淫羊藿黃酮類促進骨髓間充質(zhì)干細胞向成骨細胞增殖分化[11-12];山茱萸總苷可增加骨小梁活性成骨細胞表達,促進骨髓基質(zhì)干細胞增殖,提高去勢大鼠骨小梁面積[13-14];黨參炔苷可促進雌性大鼠卵巢顆粒細胞增殖分泌雌二醇[15]。OPG/RANKL/RANK系統(tǒng)是參與骨溶解的核心信號通路,假體旁界膜中存在一個完整的OPG/RANKL/RANK系統(tǒng),磨損顆粒促使OPG/RANKL比值失衡,從而使假體周圍骨動態(tài)失衡,骨吸收活性增強。

    本研究中,通過鈦顆粒誘導大鼠建立骨溶解模型,采用載體實驗探討健骨顆粒對鈦顆粒誘導的骨溶解模型大鼠OPG/RANKL/RANK系統(tǒng)相關(guān)因子的影響,研究結(jié)果顯示:鈦顆??纱碳ぶ补菤饽抑車M織的炎癥細胞浸潤、新生血管增生和滲出,炎性反應明顯,引起破骨細胞分化成熟,植入顱骨片邊緣骨溶解顯著,與臨床人工關(guān)節(jié)無菌性松動相似,是關(guān)節(jié)置換術(shù)中晚期失敗的主要原因。健骨顆粒可降低血清炎癥因子表達水平,減少植骨氣囊的炎癥細胞浸潤,一定程度上減輕炎性反應程度,并調(diào)控OPG/RANKL比值,抑制破骨細胞活性,減少顱骨片邊緣骨吸收陷窩,提示健骨顆粒對于假體周圍骨溶解有潛在防治作用。

    綜上所述,健骨顆??捎行Ы档脱装Y反應程度,調(diào)控OPG/RANKL比值,抑制破骨細胞活性,可能是其防治人工假體松動的作用機制之一,為其臨床用藥提供實驗基礎(chǔ)。

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