黃艷玲,張澤生,閆爽
(1.天津科技大學(xué),天津300457;2.天津現(xiàn)代職業(yè)技術(shù)學(xué)院,天津300350;3.天津廣播電視大學(xué),天津300350)
面對當(dāng)前嚴(yán)峻的食品安全問題,食源性致病菌的快速分析與鑒別已經(jīng)成為多學(xué)科研究的熱點(diǎn)[1]。由于傳統(tǒng)微生物分析的耗時(shí)費(fèi)力的不足,許多新技術(shù)已經(jīng)應(yīng)用到微生物的分析與鑒別。首先,基于質(zhì)譜技術(shù)分析方法使微生物快速分析成為可能,特別是基質(zhì)輔助激光解吸電離飛行時(shí)間質(zhì)譜(matrix-assisted laser desorption/ionization time of flight mass spectrometry,MALDI-TOF MS),其使用方法簡單、快速、精確和低成本,現(xiàn)已成為微生物分類鑒別的重要工具[2]。當(dāng)前,利用MALDI-TOF MS分析微生物主要有兩種方法分別是數(shù)據(jù)庫法與生物信息學(xué)法[3]。數(shù)據(jù)庫鑒別法就是把待檢測微生物與數(shù)據(jù)庫中標(biāo)準(zhǔn)菌質(zhì)譜圖進(jìn)行比對,滿足閾值后來確定待測菌的種屬[4]。生物信息學(xué)法就是利用標(biāo)準(zhǔn)蛋白數(shù)據(jù)庫對微生物蛋白標(biāo)志物進(jìn)行比對,從而對微生物進(jìn)行分類鑒別。該方法中利用完整核糖體蛋白標(biāo)志物鑒別微生物已被廣泛報(bào)道。Tanigawa[5]利用核糖體蛋白通過搜索核糖體蛋白鑒別數(shù)據(jù)庫對25個(gè)乳酸乳球菌菌株進(jìn)行鑒別。
另外,為了提高M(jìn)ALDI-TOF MS檢測效率,功能性納米材料已經(jīng)被廣泛應(yīng)用于微生物的富集與鑒別,功能性納米材料的富集可提高質(zhì)譜檢測的檢測限與檢測效率。這些納米材料主要是通過在納米Fe3O4微粒表面固定靶向作用分析對微生物進(jìn)行選擇性富集,主要包括抗體[6-8]、核酸適配體[9]、生物蛋白[10]、糖類物質(zhì)[11]。從而促進(jìn)微生物的分離鑒別。由于大腸桿菌O157:H7是一株重要的食源性致病菌,本文通過開發(fā)一種簡單、成本低的NH2-Fe3O4磁性顆粒,對大腸桿菌O157:H7進(jìn)行快速富集,然后利用MALDI-TOF MS對其進(jìn)行快速檢測,再利用核糖體蛋白庫對大腸桿菌O157:H7進(jìn)行鑒別。
FeCl·36H2O、FeSO·47H2O、Na2HPO·412H2O、NaH2PO·42H2O、N,N-二甲基甲酰胺(DMF)、甲苯、氨水:天津市光復(fù)精細(xì)化工研究所;四乙氧基硅烷(TEOS)、γ-氨丙基三乙氧基硅烷(APTES):武漢大學(xué)有機(jī)硅新材料股份有限公司;TSB培養(yǎng)基和瓊脂粉:北京奧博星生物制品有限公司;α-腈基-4-羥基苯丙烯酸(CHCA):Bruker Daltonics;三氟乙酸(TFA:色譜純):J.T.Baker;乙腈(ACN:色譜純):J.T.Baker。
超聲清洗器:寧波新芝生物公司;MALDI TOF MS/MS:spectrometer,Autoflex III Bruker Daltonics;Milli-Q水純化系統(tǒng):Millipore,Milford,MA;振蕩培養(yǎng)箱:上海博迅實(shí)業(yè)有限公司;磁性分離器:DYNAL?invitrogen;紫外-可見吸收分光光度計(jì):北京普析通用儀器有限責(zé)任公司;掃描電子顯微鏡(scanning electron microscope S4800 SEM):日立(中國)有限公司;LDJ 9600-1振動樣品磁強(qiáng)度計(jì):深圳市泰立儀器儀表有限公司。
1.2.1 NH2-Fe3O4磁性顆粒的合成
NH2-Fe3O4磁性顆粒的合成按照Fan[12]報(bào)道的方法。
1.2.2 NH2-Fe3O4磁性顆粒的表征
掃描電鏡圖像(SEM)表征NH2-Fe3O4磁性顆粒形貌特征。紅外光譜譜圖的采集是通過傅里葉變換紅外光譜儀采用壓片法對NH2-Fe3O4磁性顆粒的官能團(tuán)進(jìn)行分析。NH2-Fe3O4磁性顆粒的磁性是在室溫條件下通過LDJ 9600-1振動樣品磁強(qiáng)度計(jì)對材料的磁性進(jìn)行表征。
1.2.3 大腸桿菌O157:H7的富集
在37℃下,大腸桿菌O157:H7接種于25 mL滅菌TSB培養(yǎng)基中,搖床120 r/min培養(yǎng)16 h后,1 mL細(xì)菌菌懸液離心(12 000 r/min)5min,倒出上清,并用磷酸鹽(phosphate buffer saline,PBS)緩沖液清洗兩次,然后,利用紫外-可見吸收分光光度計(jì)600 nm波長調(diào)整到所需的濃度,另外,利用活菌計(jì)數(shù)法對其進(jìn)行計(jì)數(shù)。
用PBS緩沖液配制NH2-Fe3O4磁性顆粒懸濁液(10 mg/mL),不同體積NH2-Fe3O4磁性顆粒懸濁液加入到菌液中,渦旋振蕩,然后磁性分離,并用紫外-可見吸收分光光度計(jì)600 nm波長測量溶液OD值。
1.2.4 大腸桿菌O157:H7分析與鑒別
NH2-Fe3O4磁性顆粒吸附完畢,倒出上清后,加入50 μL氨水,在超聲清洗器中振蕩3min,磁性分離,去除NH2-Fe3O4磁性顆粒,上清12 000 r/min離心,然后分別加入10 μL 0.1%TFA與ACN后,渦旋振蕩,取1 μL溶液用于MALDI MS線性模式進(jìn)行分析。
利用 Flexanalysis軟件 (version 3.0;Bruker Dal tonics)對質(zhì)譜數(shù)據(jù)進(jìn)行基線校正、平滑和標(biāo)峰。然后利用 Tagident搜索工具(http://web.expasy.org/tagident/)對質(zhì)譜峰進(jìn)行數(shù)據(jù)庫檢索 (UniProtKB/Swiss-Prot和UniProtKB/TrEMBL)確定蛋白。然后,利用得到的核糖體蛋白搜索微生物快速鑒別數(shù)據(jù)庫(rapid microorganism identification database;http://rmidb.org)確定大腸桿菌歸屬。
從超市中購買的碳酸飲料,加入活菌計(jì)數(shù)完畢的不同濃度的大腸桿菌O157:H7的菌懸液,然后利用NH2-Fe3O4磁性顆粒富集,MALDI MS檢測,并利用數(shù)據(jù)庫進(jìn)行菌株鑒別。
NH2-Fe3O4磁性顆粒合成完畢后,分別利用掃描電鏡、磁滯回線與紅外光譜對磁性顆粒的形貌、磁性能力與官能團(tuán)進(jìn)行分析見圖1。從電鏡圖上可以看出(圖1),NH2-Fe3O4磁性顆粒成球形,其直徑800 nm左右,其粒徑較大,為了便于超聲從菌體表面去除,以利于菌體檢測。另外,在磁滯回線圖上(圖2),其磁化值分別為50emu/g,這非常便于磁球從溶液中分離。同時(shí),從紅外譜圖上(圖3),可以看到在620 cm-1和453 cm-1吸收峰對應(yīng)為Fe-O鍵的振動吸收和1 630 cm-1處NH的彎曲振動,由紅外光譜圖可知,NH2-Fe3O4磁性顆粒被成功合成。
圖1 NH2-Fe3O4顆粒掃描電鏡Fig.1 Scanning electron microscopy of NH2-Fe3O4particles
圖2 NH2-Fe3O4顆粒磁滯回線Fig.2 Hysteresis loop of NH2-Fe3O4particles
圖3 NH2-Fe3O4顆粒紅外譜圖Fig.3 Infrared spectrum of NH2-Fe3O4particles
圖4 NH2-Fe3O4磁性顆粒富集的優(yōu)化Fig.4 Enrichment optimization of NH2-Fe3O4magnetic particle
由于細(xì)菌PBS緩沖液條件下帶負(fù)電荷,而NH2-Fe3O4磁性顆粒的等電點(diǎn)為3,而使磁球帶正電荷,因此磁球會很快吸附到菌體表面,在外加磁場的作用下,菌體會脫離水溶液,而得到富集。磁球富集條件的優(yōu)化見圖4。
從圖4可以看出,當(dāng)富集時(shí)間到達(dá)70 s時(shí),菌體幾乎100%得到富集。而磁球濃度為0.5 mg/mL時(shí),磁球富集的效果最佳。因此,利用NH2-Fe3O4磁性顆粒富集大腸桿菌簡單、快速,而且合成的成本很低。
通過NH2-Fe3O4磁性顆粒富集,使MALDI/TOF MS對低濃度細(xì)菌進(jìn)行檢測,不同細(xì)菌濃度的質(zhì)譜圖見圖5,NH2-Fe3O4磁性顆粒富集效果的對比見圖6。
圖5 不同細(xì)菌濃度的質(zhì)譜圖Fig.5 Mass spectra of different bacterial concentrations
圖6 NH2-Fe3O4磁性顆粒富集效果的對比Fig.6 Comparison of enrichment effects of NH2-Fe3O4magnetic particles
從圖5可以看出,通過對大腸桿菌O157:H7一系列的稀釋,富集后,當(dāng)細(xì)菌濃度為3.5×102CFU/mL時(shí)(圖5A),幾乎沒有質(zhì)譜信號,而當(dāng)細(xì)菌濃度達(dá)到3.5×103CFU/mL時(shí)(圖5B),有清晰的質(zhì)譜信號,而主要的質(zhì)譜峰與細(xì)菌濃度在3.5×104CFU/mL時(shí)幾乎無異(圖5C),同時(shí)這些質(zhì)譜的信噪比超過5,因此MALDI/TOF MS對大腸桿菌O157:H7的檢測限達(dá)到3.5×103CFU/mL。
另外,通過對比未富集的大腸桿菌O157:H7的質(zhì)譜圖可以看出(圖6),在細(xì)菌濃度為3.5×104CFU/mL時(shí),未富集的質(zhì)譜在大于5 000 m/z以上,未有質(zhì)譜峰出現(xiàn),而富集后,質(zhì)譜峰數(shù)量大大增加,因此,通過NH2-Fe3O4磁性顆粒的富集,可以大大提高M(jìn)ALDI/TOF MS的檢測能力。
本文采用的模擬實(shí)際樣本為超市購買的碳酸飲料,通過添加不同濃度的大腸桿菌O157:H7,然后利用NH2-Fe3O4磁性顆粒富集及MALDI/TOF MS對大腸桿菌O157:H7進(jìn)行檢測,由于實(shí)際樣本中成分比較復(fù)雜,飲料中的陽離子會壓制質(zhì)譜信號,通過一系列不同菌濃的檢測,發(fā)現(xiàn)細(xì)菌濃度在8×103CFU/mL得到的譜圖可以用于菌株的鑒別,細(xì)菌濃度在8×103CFU/mL,MAL DI/TOF MS對大腸桿菌O157:H7的質(zhì)譜圖見圖7。
圖7 MALDI/TOF MS對實(shí)際樣本中大腸桿菌O157:H7檢測Fig.7 Detection of Escherichia coli O157:H7 in real samples using MALDI/TOF MS
為了利用質(zhì)譜對大腸桿菌O157:H7進(jìn)行鑒別,對質(zhì)譜圖進(jìn)行處理包括基線校正、平滑,選取信噪比大于5的14個(gè)質(zhì)譜峰作為菌株鑒別的依據(jù),這些質(zhì)譜峰通過搜索UniProtKB/Swiss-Prot和UniProtKB/TrEMBL的蛋白數(shù)據(jù)庫,最終確定14個(gè)質(zhì)譜峰蛋白歸屬,每個(gè)質(zhì)譜峰的蛋白搜索結(jié)果見表1。
表1 大腸桿菌O157:H7蛋白Swiss-Prot/TrEMBL數(shù)據(jù)庫搜索結(jié)果Table 1 Search results of Escherichia coli O157:H7 protein in Swiss-Prot/TrEMBL database
這其中共有4個(gè)核糖體蛋白被發(fā)現(xiàn),分別是核糖體大亞基的L32、L33、L34、L36 4種蛋白,由于核糖體蛋白具有保守性,通過輸入4種核糖體蛋白的質(zhì)譜峰,搜索核糖體蛋白數(shù)據(jù)庫可以對菌株進(jìn)行鑒別,其鑒別結(jié)果為大腸桿菌O157:H7。
本文合成了NH2-Fe3O4磁性顆粒,并利用掃描電鏡、磁滯回線和紅外光譜對其進(jìn)行表征,表征結(jié)果證明NH2-Fe3O4磁性顆粒被成功合成,并具有很強(qiáng)的磁性。然后優(yōu)化了NH2-Fe3O4磁性顆粒富集大腸桿菌O157:H7富集條件。并通過富集,得到MALDI/TOF MS對大腸桿菌O157:H7的檢測限為3.5×103CFU/mL。最后,通過模擬實(shí)際樣本對該方法進(jìn)行驗(yàn)證,發(fā)現(xiàn)該方法對碳酸飲料中的大腸桿菌O157:H7的檢測限為8.0×104CFU/mL,并利用蛋白數(shù)據(jù)庫通過4種核糖體蛋白的搜索,證明該菌為大腸桿菌O157:H7。因此,試驗(yàn)數(shù)據(jù)證明該方法簡單、快速、成本低,可以用于細(xì)菌的分析鑒別。
[1]Hotta Y,Sato J,Sato H,et al.Classification of the genus Bacillus based on MALDI-TOF MS analysis of ribosomal proteins coded in S10 and spc operons[J].Journal of agricultural and food chemistry,2011,59(10):5222-5230
[2]Rezzonico F,Vogel G,Duffy B,et al.Application of whole-cell matrix-assisted laser desorption ionization-time of flight mass spectrometry for rapid identification and clustering analysis of Pantoea species[J].Applied and environmental microbiology,2010,76(13):4497-4509
[3]Sandrin T R,Goldstein J E,Schumaker S.MALDI TOF MS profiling of bacteria at the strain level:a review[J].Mass spectrometry reviews,2013,32(3):188-217
[4]Arnold R J,Reilly J P.Fingerprint matching of E.coli strains with matrix-assisted laser desorption/ionization time-of-flight mass spectrometry of whole cells using a modified correlation approach[J].RapidCommunicationsinMassSpectrometry,1998,12(10):630-636
[5]Tanigawa K,Kawabata H,Watanabe K.Identification and typing of Lactococcus lactis by matrix-assisted laser desorption ionizationtime of flight mass spectrometry[J].Applied and environmental microbiology,2010,76(12):4055-4062
[6]Zhao X-J,Hilliard L R,Tan W-H,et al.A rapid bioassay for single bacterial cell quantitation using bioconjugated nanoparticles[J].Proc.Natl.Acad.Sci.U S A,2004,101:15027-15032
[7]Ryan S,Kell A J,Tanha J,et al.Single-domain antibody-nanoparticles:promising architectures for increased staphylococcus aureus detection specificity and sensitivity[J].Bioconjugate Chem,2009,20:1966-1974
[8]HoK-C,Tsai P-J,Lin Y-S,et al.Using biofunctionalized nanoparticles to probe pathogenic bacteria[J].Anal Chem,2004,76:7162-7168
[9]Torres-ChavollaE,Alocilja E C.Aptasensors for detection of microbialandviralpathogens[J].BiosensBioelectron,2009,24:3175-3182
[10]Liu J-C,Tsai P-J,LeeY C,et al.Affinity capture of uropathogenic escherichia coli using pigeon ovalbumin-bound Fe3O4@Al2O3magnetic nanoparticles[J].Anal Chem,2008,80:5425-5432
[11]El-Boubbou K,Gruden C,Huang X-F.Magnetic glyco-nanoparticles:a unique tool for rapid pathogen detection,decontamination,andstraindifferentiation[J].JAmChemSoc,2007,129:13392-13393
[12]Fan G,Ren Y,Jiang W,et al.Effective catalytic hydrodechlorination of 4-chlorophenol over a Rh immobilized on amine-functionalized magnetite nanoparticles in aqueous phase[J].Catalysis Communications,2014,52:22-25