黃國林,滕翠芳,羅燕妹,覃貴慧,駱敏,陽潔
(廣西醫(yī)科大學藥學院,南寧530021)
我國是全球肝癌發(fā)病率最高的國家之一,我國的肝癌發(fā)病人數(shù)約占全球的55%。70%~90%的原發(fā)性肝癌為肝細胞肝癌(HCC)。手術切除是HCC首選治療方法,術后高轉移率和高復發(fā)率是導致HCC患者死亡的主要原因[1]。目前HCC轉移和復發(fā)的機制尚未完全明確。Ras相關的C3肉毒素底物1(Rac1)是Rho樣小GTP酶家族中的一員,在調(diào)控腫瘤細胞的生長、侵襲、轉移等方面具有重要作用[2]。最新研究[3, 4]發(fā)現(xiàn),Rac1與HCC的侵襲、轉移及不良預后密切相關。轉化生長因子β1(TGF-β1)在乳腺癌、大腸癌等多種腫瘤的發(fā)生發(fā)展過程中具有雙重作用,既可作為腫瘤促進因子也可作為腫瘤抑制因子[5]。目前Rac1與TGF-β1在HCC發(fā)生、發(fā)展中的作用機制仍不明確。我們觀察了HCC組織中Rac1、TGF-β1的表達變化,并分析其與臨床病理特征及預后的關系?,F(xiàn)將結果報告如下。
1.1 臨床資料 選擇2010年11月~ 2013年4月間廣西醫(yī)科大學第一附屬醫(yī)院收治的HCC患者73例,其中男64例、女9例;年齡14 ~ 73歲,中位年齡46歲;據(jù)TNM分類標準分為Ⅰ級30例、Ⅱ級15例、Ⅲ級28例;25例存在HCC轉移。均行HCC切除術,術中保留HCC組織及相應的癌旁組織(距離癌灶>2 cm處的肝組織),術后病理顯示73例份癌旁組織中18例為肝硬化、55例為正常肝組織,全部標本經(jīng)4%多聚甲醛固定、脫水、常規(guī)石蠟包埋后作4 mm連續(xù)切片。
1.2 試劑 兔抗人Rac1多克隆抗體購自美國Signalway Antibody(SAB)公司;鼠抗人TGF-β1單克隆抗體購自美國Santa Cruz Biotechnology 公司;HRP鼠兔通用型二抗購自上海長島生物技術有限公司;DAB顯色試劑盒購自福州邁新生物技術開發(fā)有限公司。
1.3 HCC癌組織及癌旁正常組織Rac1、TGF-β1檢測 采用免疫組化法檢測HCC癌組織、癌旁正常組織Rac1、TGF-β1??筊ac1多克隆抗體及抗TGF-β1單克隆抗體均按1:100稀釋。陽性對照為已知陽性切片,陰性對照以PBS代替一抗。切片常規(guī)脫蠟至水,以檸檬酸液(pH 6.0)作為修復液,用高壓鍋熱壓修復抗原3 min, 過氧化氫(質(zhì)量分數(shù)為3%)處理10 min消除內(nèi)源性過氧化物酶,PBS沖洗后加一抗于37 ℃孵育1.5 h,PBS沖洗后加二抗于37 ℃孵育30 min,加DAB工作液顯色后用蘇木素染色1 min、鹽酸酒精脫水透明、晾干封片后在光鏡下觀察。每張切片在光鏡下取10個具有代表性的視野,每張切片均由兩位病理醫(yī)師獨立觀察。判斷標準:Rac1和TGF-β1陽性染色均為在細胞質(zhì)中有黃色顆粒沉著。根據(jù)細胞質(zhì)的染色程度以及染色細胞的百分率來進行評分[6, 7]:基本不著色者計0分,淡黃色者計1分,黃色計2分,棕黃色或棕褐色計3分;Rac1染色細胞百分率<5%計0分,5%~25%計1分,25%~50%計2分,50%~75%計3分,>75%計4分;TGF-β1染色細胞百分率0%計0分,<10%計1分,10%~50%計2分,>50%計3分。將每張切片染色程度得分與染色細胞率得分相乘即為最終分數(shù),分數(shù)≤3視為低表達,>3視為高表達。計算Rac1、TGF-β1的陽性表達率(陽性表達例數(shù)/總例數(shù))。
1.4 統(tǒng)計學方法 采用SPSS16.0統(tǒng)計軟件進行分析。應用GraphPad Prism 6軟件進行作圖,所得半定量資料用χ2檢驗,兩兩之間相關分析用Spearman 相關性分析檢驗,用Kaplan-Meier生存曲線分析Rac1和TGF-β1共同高表達與HCC預后的相關性并用log-rank法進行檢驗,P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
HCC組織、癌旁正常組織Rac1的陽性表達率分別為37.0%(27/73)、20.5%(15/73),二者比較,P<0.05;HCC組織、癌旁正常組織TGF-β1的陽性表達率分別為61.6%(45/73)、28.8%(21/73),二者比較,P<0.05。
Rac1、TGF-β1表達與HCC臨床病理參數(shù)的關系見表1。Rac1或TGF-β1的表達與HCC患者年齡、性別、Edmondson-Steiner分級、肝硬化、腫瘤囊狀浸潤、腫瘤結節(jié)、血管侵襲及乙肝表面抗原等臨床病理特征均無關(P>0.05)。HCC組織TGF-β1的表達與腫瘤直徑、血清甲胎蛋白表達、門靜脈癌栓、TNM分期、淋巴結轉移有關(P均<0.05)Rac1與TGF-β1在HCC中的表達呈正相關(r=0.313,P<0.01),與單獨高表達Rac1或TGF-β1相比,Rac1與TGF-β1的共同高表達與HCC 的TNM分期及轉移有關(χ2=12.244,P<0.01;χ2=8.318,P<0.01)。
表1 Rac1和TGF-β1表達與 HCC患者臨床病理參數(shù)的關系(例)
本研究對35例HCC患者進行隨訪。kaplan-Meier生存曲線分析結果顯示,單獨高表達Rac1或TGF-β1的患者與單獨低表達Rac1或TGF-β1的患者的中位生存期無統(tǒng)計學差異(P均>0.05);共同高表達Rac1與TGF-β1的患者較共同低表達Rac1與TGF-β1的患者中位生存期短(χ2=6.225,P<0.05),另外, Rac1與TGF-β1共同高表達的患者和單獨高表達Rac1或TGF-β1的患者的中位生存期無統(tǒng)計學差異(P均>0.05)。
Rho樣小GTP酶家族中的Rac1與HCC的發(fā)展密切相關。負性調(diào)節(jié)Rac1活性及其表達,可誘導HCC細胞凋亡,顯著抑制HCC生長與轉移[8],并且HCC細胞核中過表達的Rac1與HCC患者的不良預后相關[3]。反之,異常高表達Rac1能夠促進HCC細胞的侵襲和遷移[9]。本研究發(fā)現(xiàn),Rac1主要表達于HCC組織的細胞漿,且其表達顯著高于癌旁組織,提示胞質(zhì)中高表達的Rac1可能與HCC的發(fā)生發(fā)展密切相關。同時,我們將Rac1表達與患者臨床病理資料進行統(tǒng)計分析后發(fā)現(xiàn),Rac1在晚期、有轉移的HCC組織中的表達明顯高于早期、無轉移的HCC組織。這些結果表明,HCC胞質(zhì)中高表達的Rac1與HCC TNM分期以及轉移呈正相關。
TGF-β1是TGF-β家族中分布最廣泛且含量最豐富的亞型,研究[10]發(fā)現(xiàn),TGF-β1在HCC的發(fā)生發(fā)展過程中具有促瘤和抑瘤的雙重作用,在腫瘤早期TGF-β1可作為一個腫瘤抑制因子,起到抑制腫瘤進展的效果,而在腫瘤晚期,TGF-β1則具有促進腫瘤進展的作用。另外有研究[11]發(fā)現(xiàn),TGF-β1在HCC組織的表達明顯高于正常肝組織,聯(lián)合TGF-β1和ELF檢測可有效地進行HCC的預后評估。此外,有研究[12]表明,TGF-β1促進HCC進展的機制為促進腫瘤EMT,從而促進腫瘤細胞的侵襲和轉移。
TGF-β1與Rac1兩者表達呈正相關;與單獨高表達Rac1或TGF-β1相比,Rac1與TGF-β1共同高表達與HCC 的TNM分期及轉移呈正相關。Rac1與TGF-β1共同高表達的患者比共同低表達的患者其復發(fā)時間更短。這些結果表明,HCC胞質(zhì)中共同高表達的Rac1和TGF-β1與HCC的惡性進展及不良預后呈正相關。但目前,Rac1與TGF-β1在HCC中共同高表達的機制尚不清楚。Rac1可間接上調(diào)腫瘤細胞的TGF-β1表達。Rac1激活Smad2信號通路從而上調(diào)TGF-β1介導的促腫瘤細胞轉移作用,促進胰腺導管癌細胞的生長和轉移[13]。另一方面,TGF-β1也可間接誘導或激活腫瘤細胞的Rac1表達。Binker 等[14]發(fā)現(xiàn),在人胰腺癌細胞中,TGF-β1可直接激活Rac1/ROS/NF-κB信號通路從而誘導Rac1的表達。Hubchak 等[15]研究發(fā)現(xiàn),在人腎系膜細胞中,Rac1可以通過PI3K/Akt信號通路激活TGF-β1,并且用TGF-β1處理人腎系膜細胞5 min后可直接激活Rac1。外加TGF-β1刺激人肝星狀細胞LX-2可以促進Rac1的表達,同時外加SMA則可以抑制這一作用[16]。提示Rac1與TGF-β1之間存在互相調(diào)控的關系。據(jù)此我們推測,Rac1與TGF-β1可能通過Smad2[13]、ROS/NF-κB[14]、PI3K/Akt[15]等一些信號通路而互相激活,從而共同參與HCC惡性進展。但兩者之間具體的分子調(diào)控機制及與HCC進展之間的關系,還需進一步深入研究。
綜上所述,HCC組織中Rac1、TGF-β1均呈高表達。Rac1、TGF-β1共同高表達與HCC的進展及不良預后有關。。
參考文獻:
[1] Torre LA, Bray F, Siegel RL, et al. Global cancer statistics, 2012 [J]. CA Cancer J Clin, 2015,65(2):87-108.
[2] Yang WH, Lan HY, Huang CH, et al. RAC1 activation mediates Twist1-induced cancer cell migration [J]. Nat Cell Biol, 2012, 14(4): 366-374.
[3] Wu L, Cai C, Wang X, et al. MicroRNA-142-3p, a new regulator of RAC1, suppresses the migration and invasion of hepatocellular carcinoma cells [J]. FEBS Lett, 2011,585(9):1322-1330.
[4] Yang W, Lv S, Liu X, et al. Up-regulation of Tiam1 and Rac1 correlates with poor prognosis in hepatocellular carcinoma [J]. Jpn J Clin Oncol, 2010,40(11):1053-1059.
[5] Katsuno Y, Lamouille S, Derynck R. TGF-beta signaling and epithelial-mesenchymal transition in cancer progression [J]. Curr Opin Oncol, 2013,25(1):76-84.
[6] Zhan H, Liang H, Liu X, et al. Expression of Rac1, HIF-1alpha, and VEGF in gastric carcinoma: correlation with angiogenesis and prognosis [J]. Onkologie, 2013,36(3):102-107.
[7] Wang N, Jiang R, Yang JY, et al. Expression of TGF-beta1, SNAI1 and MMP-9 is associated with lymph node metastasis in papillary thyroid carcinoma [J]. J Mol Histol, 2014,45(4):391-399.
[8] Zhang Z, Liang X, Gao L, et al. TIPE1 induces apoptosis by negatively regulating Rac1 activation in hepatocellular carcinoma cells [J]. Oncogene, 2015,34(20):2566-2574.
[9] Li J, Zhang S, Hu Q, et al. The NKD1/Rac1 feedback loop regulates the invasion and migration ability of hepatocarcinoma cells [J]. Sci Rep, 2016, 6:26971.
[10] Meulmeester E, Ten Dijke P. The dynamic roles of TGF‐β in cancer [J]. The Jour Path, 2011,223(2):206-219.
[11] Ji F, Fu SJ, Shen SL, et al. The prognostic value of combined TGF-beta1 and ELF in hepatocellular carcinoma [J]. BMC Cancer, 2015, 15(1):116.
[12] Mima K, Okabe H, Ishimoto T, et al. CD44s regulates the TGF-beta-mediated mesenchymal phenotype and is associated with poor prognosis in patients with hepatocellular carcinoma [J]. Cancer Res, 2012,72(13):3414-3423.
[13] Ungefroren H, Groth S, Sebens S, et al. Differential roles of Smad2 and Smad3 in the regulation of TGF-beta1-mediated growth inhibition and cell migration in pancreatic ductal adenocarcinoma cells: control by Rac1 [J]. Mol Cancer, 2011,10(1):67.
[14] Binker MG, Binker-Cosen AA, Gaisano HY, et al. TGF-beta1 increases invasiveness of SW1990 cells through Rac1/ROS/NF-kappaB/IL-6/MMP-2 [J]. Biochem Biophys Res Commun, 2011,405(1):140-145.
[15] Zhang F, Zhuge YZ, Li YJ, et al. S-adenosylmethionine inhibits the activated phenotype of human hepatic stellate cells via Rac1 and matrix metalloproteinases [J]. Int Immunopharmacol, 2014,19(2):193-200.