鄒宛樺 秦文 徐悅?cè)?秦再秀 劉佳 金作林
牙周膜干細(xì)胞(periodontal ligament stem cells,PDLSCs)是牙周組織再生領(lǐng)域最重要的種子細(xì)胞之一[1-2],其對力有高度敏感性,適宜的機(jī)械刺激可促進(jìn)其增殖、成骨等生物學(xué)功能[3]。本課題組前期研究發(fā)現(xiàn)[4],牙周病的炎癥微環(huán)境會(huì)影響PDLSCs對力學(xué)刺激的應(yīng)答反應(yīng):12%的靜態(tài)牽張力(SMS)是促進(jìn)健康來源PDLSCs(H-PDLSCs)成骨分化的最佳力值,但炎癥來源的PDLSCs(P-PDLSCs)對該力值的耐受性下降,表現(xiàn)為促成骨作用的顯著降低,其相關(guān)機(jī)制尚未見報(bào)道。
長鏈非編碼RNA(long non-coding RNA,lncRNA)是一類轉(zhuǎn)錄本長度大于200 nt的非編碼RNA,其通過對基因表達(dá)的調(diào)控影響機(jī)體生長、發(fā)育等重要生命活動(dòng)以及炎癥、腫瘤等疾病的發(fā)展和轉(zhuǎn)歸[5-6]。linc-01135是一條定位于Chr1:58785151-58899712,長度為994 nt的基因間lncRNA。我們前期的lncRNA基因芯片檢測結(jié)果顯示,linc-01135在P-PDLSCs中的表達(dá)較H-PDLSCs明顯下調(diào)。本研究將進(jìn)一步驗(yàn)證linc-01135在HPDLSCs和P-PDLSCs中的表達(dá)情況,并探討其對12%SMS作用下P-PDLSCs成骨分化能力的影響。
α-MEM培養(yǎng)基、1 000 U/ml青霉素、1 000 U/ml鏈霉素(Gibco,美國);胰蛋白酶、β-甘油磷酸鈉、地塞米松、抗壞血酸(Sigma,美國);胎牛血清(四季青,浙江天杭生物科技公司);慢病毒(上海吉?jiǎng)P基因);茜素紅、Trizol Regent(Life Technologies,美國);PrimeScriptTMRT-PCR kit逆轉(zhuǎn)錄試劑盒、Syber Green熒光定量PCR試劑盒(Takara,日本);Bioflex 6孔板、FX-4000T Tension Plus System(Flexcell,美國);Real-Time PCR儀(Biosytems 7500,美國)。
1.2.1 H-PDLSCs和 P-PDLSCs的分離、培養(yǎng)及鑒定
1.2.1.1 H-PDLSCs和 P-PDLSCs的分離、培養(yǎng) 收集因正畸治療需要拔除的健康牙齒及牙周炎的牙齒,PBS沖洗至牙根潔凈,刮取根中1/3的牙周膜組織,加入3 mg/ml I型膠原酶,37℃消化1 h。等體積含10% 胎牛血清(FBS)的 α-MEM終止消化,800 r/min,離心5 min,棄上清液。加入α-MEM培養(yǎng)基(含10%FBS、100 U/ml青霉素,100 U/ml鏈霉素)后接種于6孔板,置于恒溫37℃、5%CO2孵箱中培養(yǎng)。待細(xì)胞匯合達(dá)80%時(shí)采用低密度培養(yǎng)法篩選純化細(xì)胞。
1.2.1.2 H-PDLSCs和 P-PDLSCs間充質(zhì)干細(xì)胞表面標(biāo)記物檢測 取第3代細(xì)胞,以5×105個(gè)/200μl密度轉(zhuǎn)移至1.5 ml EP管中,PBS沖洗2次,分別加入2μl鼠抗人CD29、CD105、CD45、CD34抗體,4℃避光孵育1 h,PBS沖洗3次,流式細(xì)胞儀檢測細(xì)胞表面標(biāo)志物的表達(dá)情況。
1.2.2 靜態(tài)牽張力加載系統(tǒng)的構(gòu)建 取第3代細(xì)胞,以3×105個(gè)/孔密度接種于Bioflex 6孔板,同步化處理后置于FX-4000T牽張力加載系統(tǒng)上SMS加載(力值 12%,頻率0.1 Hz,12 h)。
1.2.3 慢病毒轉(zhuǎn)染 取第3代P-PDLSCs,接種密度為4×104個(gè)/ml。根據(jù)慢病毒轉(zhuǎn)染說明書進(jìn)行轉(zhuǎn)染,轉(zhuǎn)染后72 h熒光顯微鏡下觀察轉(zhuǎn)染情況,待轉(zhuǎn)染后細(xì)胞匯合達(dá)80%進(jìn)行12%SMS加載。
1.2.4 RT-PCR 收樣后用 Trizol一步法抽提總RNA,RNA質(zhì)檢合格后采用PrimeScriptTMRT-PCR kit試劑盒逆轉(zhuǎn)錄合成cDNA,以actin為內(nèi)參檢測相關(guān)基因表達(dá)水平。
1.2.5 成骨分化能力檢測 將需成骨誘導(dǎo)的樣品培養(yǎng)基更換為成骨誘導(dǎo)液(含10%FBS的α-MEM,地塞米松10 mol/L,維生素 C 50μg/ml,β-磷酸甘油 10 mmol/L),培養(yǎng)21 d后進(jìn)行茜素紅染色,60%異丙醇室溫固定5 min,ddH2O水化處理細(xì)胞2 min,染色1 min,ddH2O沖洗2次,大體及鏡下觀察礦化結(jié)節(jié)形成情況并進(jìn)行定量分析。
用SPSS 16.0統(tǒng)計(jì)軟件對數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,2組間比較用兩獨(dú)立樣本t檢驗(yàn),各組間比較采用Oneway ANOVA檢驗(yàn),結(jié)果以±s表示,檢驗(yàn)水準(zhǔn)α=0.05。
流式細(xì)胞儀檢測結(jié)果顯示,H-PDLSCs和 PPDLSCs均強(qiáng)陽性表達(dá)間充質(zhì)干細(xì)胞表面標(biāo)記物CD29,CD105,陰性表達(dá)造血系統(tǒng)來源細(xì)胞表面標(biāo)記物CD45,CD34,表明所分離培養(yǎng)的細(xì)胞為間充質(zhì)來源干細(xì)胞(圖 1)。
RT-PCR結(jié)果顯示,H-PDLSCs在12%SMS加載后成骨基因RUNX2、ALP的表達(dá)上升,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01),P-PDLSCs中成骨基因的表達(dá)上升不明顯(圖2A)。茜素紅染色所示趨勢與PCR結(jié)果一致(圖 2B、2C)。
RT-PCR檢測結(jié)果顯示P-PDLSCs中 linc-01135的表達(dá)量較 H-PDSLCs下降約 2.32倍(0.431±0.078,P<0.05)(圖 3A)。成骨誘導(dǎo) 1、3、7、14 d中l(wèi)inc-01135表達(dá)量與成骨基因RUNX2表達(dá)量呈相關(guān)關(guān)系(圖3B)。
熒光視野下觀察P-PDLSCs已成功轉(zhuǎn)染慢病毒(圖4A、4B)。RT-PCR結(jié)果顯示P-PDLSCs轉(zhuǎn)染linc-01135慢病毒后,表達(dá)量上調(diào)約3.87倍(3.869 46±0.258 12,P<0.001),轉(zhuǎn)染 linc-01135-RNAi慢病毒后,表達(dá)量降低約2.74倍(0.364 51±0.084 78,P<0.01),表明轉(zhuǎn)染有效(圖 4C)。
圖1 流式細(xì)胞儀檢測H-PDLSCs和P-PDLSCs表面標(biāo)記物表達(dá)情況Fig 1 Mesenchymal stem cell phenotype examination by flow cytometric analysis
圖2 12%SMS對H-PDLSCs和P-PDLSCs成骨分化能力的影響Fig 2 The evaluation of osteogenesis differentiation capability of H-PDLSCs and P-PDLSCs after 12%SMS loading
圖3 linc-01135在H-PDLSCs和P-PDLSCs中表達(dá)情況與成骨基因RUNX2相關(guān)性分析Fig 3 The expression level of linc-01135 and the correlation with RUNX2 in H-PDLSCs and P-PDLSCs
圖4 轉(zhuǎn)染效率檢測Fig 4 Transfection efficiency examination
圖5 上調(diào)及下調(diào)linc-01135表達(dá)對P-PDLSCs在12%SMS作用下成骨分化能力的影響Fig 5 The evaluation of osteogenesis differentiation capability of P-PDLSCs after 12%SMS loading with up-regulation and down-regulation of linc-01135
RT-PCR結(jié)果顯示,上調(diào)linc-01135的表達(dá)后進(jìn)行12%SMS加載,RUNX2、ALP、OPG的表達(dá)較對照組明顯上升;下調(diào)linc-01135的表達(dá)后進(jìn)行12%SMS加載,RUNX2、ALP、OPG的表達(dá)較對照組下降,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P<0.001)(圖5A)。茜素紅染色所示趨勢與PCR結(jié)果一致(圖5B、5C)。
牙周膜干細(xì)胞是牙周組織中的間充質(zhì)干細(xì)胞,其對牙周組織的功能維持和修復(fù)再生有重要作用[1]。在炎癥微環(huán)境中,大量炎性因子的產(chǎn)生會(huì)降低PDLSCs的增殖和遷移能力,并影響其對機(jī)械刺激的應(yīng)答反應(yīng)[7-8]。目前,表觀遺傳學(xué)是干細(xì)胞生物學(xué)功能研究領(lǐng)域的熱點(diǎn)[9-10]。作為表觀遺傳的重要調(diào)控分子,lncRNA對干細(xì)胞分化的調(diào)控作用正逐漸受到關(guān)注,但目前僅有少數(shù)的lncRNA在PDLSCs成骨分化過程中的作用機(jī)制被闡明[11-12],而 lncRNA在 PDLSCs對機(jī)械應(yīng)力介導(dǎo)的成骨分化中的調(diào)控作用迄今尚無相關(guān)報(bào)道。
在臨床正畸治療中我們發(fā)現(xiàn),牙周炎患者對正常正畸力的反應(yīng)較緩慢,而輕力能更快的實(shí)現(xiàn)其牙齒移動(dòng)。課題組前期研究已證實(shí)12%SMS是促進(jìn) HPDLSCs成骨分化的最佳力值,但該力值對P-PDLSCs的促成骨作用較弱,在部分樣本中出現(xiàn)抑制作用。本研究結(jié)果中,P-PDLSC在12%SMS加載后成骨基因的表達(dá)較前期研究高可能與本研究所選取樣本年齡以及細(xì)胞代數(shù)均較前期研究小有關(guān),成骨基因的基線表達(dá)水平較高,在對機(jī)械刺激的應(yīng)答上也較衰老樣本積極,該變化趨勢與Zhang等[13]的報(bào)道一致。但在本研究中12%SMS對P-PDLSCs的促成骨效應(yīng)與H-PDLSCs相比顯著降低,也說明了炎癥微環(huán)境減弱了PDLSCs對力學(xué)刺激的應(yīng)答反應(yīng),在正常力值的刺激下PPDLSCs無法表現(xiàn)出與H-PDLSCs相似的牙周改建效果。為研究其中的調(diào)控機(jī)制,我們通過構(gòu)建lncRNA基因芯片并對在H-PDLSCs和 P-PDLSCs中差異表達(dá)的lncRNA進(jìn)行篩選后發(fā)現(xiàn),linc-01135在P-PDLSCs中的表達(dá)較H-PDLSCs明顯下調(diào),同時(shí)在成骨誘導(dǎo)后其表達(dá)量與成骨基因表達(dá)呈相關(guān)關(guān)系,其很有可能參與了對P-PDLSCs的成骨分化調(diào)控。本研究通過慢病毒上調(diào)及下調(diào)linc-01135的表達(dá),觀察到linc-01135對P-PDLSCs在12%SMS作用下的成骨分化有積極的調(diào)控作用,有效上調(diào)其表達(dá)后P-PDLSCs在12%SMS加載后的成骨分化能力明顯提高,可能為改善炎癥條件下牙周組織對正畸力介導(dǎo)的組織改建提供新的思路。
隨著對lncRNA調(diào)控機(jī)制研究的逐步深入,目前已證實(shí)基因間lncRNA可作為競爭性內(nèi)源RNA,與核心轉(zhuǎn)錄因子和microRNA一起構(gòu)成調(diào)控網(wǎng)絡(luò)[14]。通過對linc-01135進(jìn)行ceRNA分析發(fā)現(xiàn),其存在與miR-17-5p、miR-106b-5p等參與成骨基因調(diào)控的microRNA的結(jié)合位點(diǎn),其可能通過招募染色質(zhì)修飾復(fù)合物來影響其鄰近區(qū)域相關(guān)成骨基因啟動(dòng)子來實(shí)現(xiàn)表觀遺傳干預(yù)作用,也有可能發(fā)揮“microRNA sponge”功能調(diào)控目標(biāo)microRNA在靶mRNA上的分布[15],但其具體調(diào)控機(jī)制仍有待進(jìn)一步研究。
lncRNA的發(fā)現(xiàn)對闡明炎癥和疾病發(fā)展與轉(zhuǎn)歸中的科學(xué)現(xiàn)象提供了新的思路,探索lncRNA對 PPDLSCs在機(jī)械應(yīng)力刺激應(yīng)答中的調(diào)控機(jī)制,可為改善牙周炎患者的組織修復(fù)能力及正畸牙齒移動(dòng)效率提供潛在的干預(yù)靶點(diǎn)。
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