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    基于甾體皂苷的襄麥冬塊根抑制性差減雜交文庫的構建

    2018-03-21 06:26:07余海忠王海燕趙慧君孫永林
    西南農(nóng)業(yè)學報 2018年2期
    關鍵詞:甾體泳道采收期

    余海忠,王海燕,趙慧君,孫永林

    (湖北文理學院化學工程與食品科學學院,湖北 襄陽 441053)

    【研究意義】襄麥冬Liriopespicatavar.proliferaY. T. Ma,百合科山麥冬屬植物,是《中華人民共和國藥典》收錄的山麥冬基原植物之一,其塊根與川麥冬、杭麥冬一樣,中藥處方均作麥冬同等入藥[1]。甾體皂苷是襄麥冬的主要活性成分之一,具有降血糖、增強免疫、抗腫瘤、防治心血管疾病、調節(jié)免疫力等多種活性[2-4]。但是,由于受到諸如種植面積、氣候條件、生長周期等因素影響,尤其是較低的含量水平,襄麥冬甾體皂苷的可持續(xù)利用受到了一定的制約?!颈狙芯壳腥朦c】研究表明,皂苷類成分的含量及組成,不僅隨植物遺傳背景、組織類型、生長年齡、生理狀況、環(huán)境因子的改變而發(fā)生顯著變化,而且還取決于皂苷合成酶及其表達水平[5]。由于襄麥冬甾體皂苷的含量變化,具有明顯的生長發(fā)育階段特性[6],提示與其相關的合成酶,在塊根生長發(fā)育階段進行了差異性表達,這為實驗室進行差異基因的篩選提供了理論可能?!厩叭搜芯窟M展】在尋找與某一性狀相關的基因時,抑制消減雜交(SSH)技術被認為是一種較為適合的常規(guī)技術,可在轉錄水平上發(fā)現(xiàn)兩樣品間差異表達的基因[7]。利用該技術,國內學者開展了一些與產(chǎn)苷調控基因篩選相關的基礎工作。和鳳美[8]構建了三七1年和3年生根cDNA的抑制消減文庫,用于尋找三七皂苷調控基因。羅志勇[9-10]通過SSH文庫鑒定出6個克隆(基因)在人參植物根生長發(fā)育階段差異表達。唐其[11]構建了羅漢果果實在不同生育時期皂苷生物合成相關基因的差減cDNA文庫,為提高羅漢果甜苷V的質量和產(chǎn)量奠定了基礎。王士杰[12]以茉莉酸甲酯誘導組與對照組人參發(fā)根為材料構建SSH文庫,獲得了誘導下的差異表達基因。【擬解決的關鍵問題】本實驗以始見期和采收期塊根為材料,構建襄麥冬不同生育期塊根的抑制性差減雜交文庫,以期能篩出一些參與甾體皂苷合成的酶或蛋白,為實現(xiàn)體外調控提高甾體皂苷含量提供理論支持。

    1 材料與方法

    1.1 襄麥冬塊根

    塊根樣品分2次采集,第1次是2012年9月7日(始見期),第2次是2013年3月12日(采收期),均采自湖北襄陽歐廟襄麥冬GAP生產(chǎn)基地,整株帶土移栽于盆中迅速帶回實驗室,自來水和ddH2O大量沖洗后,塊根用滅菌濾紙蘸干,快速切下后用液氮速凍,置-80 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>

    1.2 試劑和耗材

    PCR-Select cDNA Subtraction Kit、Advantage 2 Polymerase Mix,購自Clontech公司;QIAquick PCR Purification Kit,購自Qiagen公司;Taq酶、標準分子量、pMDl9-T載體購自TaKaRa公司;大腸桿菌(Escherichiacoli) DH5α購自上海生工;CTAB、LiCl、SSTE、DEPC、瓊脂糖、胰蛋白胨、酵母粉、NaCl、NaOH、氨芐青霉素、Tris飽和酚、氯仿、乙醇、異戊醇、異丙醇等,購自國藥(上海)集團公司;各型號tip、離心管等,購置Axygen公司。

    1.3 主要設備

    SIGMA 3K15冷凍離心機,ABI 9700 PCR儀,Bio-Rad Power Pac HCTM電泳儀,Bio-Rad GelDoc XR凝膠成像儀,HZ-9211K恒溫振蕩器,GHP-9050隔水培養(yǎng)箱,SW-CJ-1FD超凈工作臺,DK-8D三孔電熱恒溫水槽,New Bruns-wick scientific U41086超低溫冰箱,Thermo Nano Drop 2000紫外分光光度計。

    1.4 SSH文庫構建

    采用CTAB法和QIAquick PCR Purification Kit,完成襄麥冬塊根總RNA的提取與純化,經(jīng)質量檢測后,總RNA用于下一步的實驗。RNA的反轉錄及雙鏈DNA的合成參照SMART PCR cDNA Synthesis Kit進行。以襄麥冬始見期塊根cDNA為參照樣品,以采收期塊根cDNA為檢測樣品,按照ClontechTMPCR-Select cDNA Subtraction Kit說明,進行抑制差減雜交操作。SSH產(chǎn)物純化后,與pMD19-T載體連接過夜,轉化E.coliDH5α感受態(tài)細胞,采用藍白斑篩選陽性克隆,隨機挑取24個白色克隆進行Nested PCR以進一步鑒定陽性克隆。實驗中用到的引物和接頭序列見表1。

    表1 引物和接頭序列Table 1 The sequences of primers and adaptor

    表2 襄麥冬塊根總RNA的分光光度檢測結果Table 2 The results of pectrophotometric detection of total RNA from L. spicata var. prolifera

    1.5 EST序列分析

    從文庫中隨機選取400個陽性克隆,經(jīng)活化培養(yǎng)后提取質粒DNA,送上海生工測序。對EST序列進行Blast分析,利用Interproscan、COG、GO、KEGG等數(shù)據(jù)庫進行功能注釋和歸類。

    2 結果與分析

    2.1 總RNA質量檢測

    襄麥冬塊根總RNA經(jīng)紫外分光光度計檢測,得到始見期塊根的總RNA樣品OD260/OD280為2.1,采收期塊根的為2.2(表2),表明RNA的純度較高,可用于后續(xù)反轉錄的模板。

    由圖1可知,28S和18S rRNA條帶清晰、無彌散,表明提取的總RNA完整、無降解。同時,28S大約是18S條帶亮度的2倍,表明二者大致2倍的密度關系。此外,28S rRNA條帶上方無其它條帶出現(xiàn),表明RNA制備過程中無DNA污染。

    SJQ:始見期樣品,CSQ:采收期樣品;M:標準分子量SJQ:Sample from the beginning growth stage tuber; CSQ:Sample from the harvest stage tuber; M:DNA size markers圖1 襄麥冬塊根總RNA電泳圖Fig.1 The total RNA electrophoretogram of L. spicata var. prolifera

    2.2 SMART反轉錄

    利用SMART(Switching Mechanism At 5 end of the RNA Transcript)技術合成cDNA,擴增循環(huán)數(shù)過低,cDNA表達豐度也過低,循環(huán)數(shù)過高,則會有非特異擴增,造成假陽性[13]。因此很有必要對合成的循環(huán)數(shù)進行優(yōu)化。如圖2所示,始見期樣品在第21個循環(huán)時顯示擴增效率降低,故采用18個循環(huán)進行cDNA擴增;而采收期樣品在第18個循環(huán)時顯示低擴增效率,所以采用21個循環(huán)進行cDNA擴增。

    2.3 酶切效率的檢測

    RsaI酶能將雙鏈cDNA 酶切成較小的cDNA片段,以降低雜交過程中形成的復雜二級結構對雜交的阻礙作用,既能提高不同基因的檢出率,又可防止長cDNA片段對消減雜交的干擾。取上述始見期和采收期塊根雙鏈cDNA片段,分別進行RsaI酶酶切,電泳檢測酶切結果。由圖3可知,酶切前,電泳條帶呈明顯的彌散狀,片段大小主要集中在500~3000 bp。而酶切后,雙鏈cDNA分布范圍明顯下移,片段被切成100~1000 bp多個小片段cDNA,這表明RsaⅠ已將較長的雙鏈cDNA消化成小片段,酶切比較充分,酶切效率較好,達到了實驗預期,確保了后續(xù)實驗操作的準確性。

    SJQ:始見期樣品,CSQ:采收期樣品;泳道1,4:15個循環(huán),泳道2,5:18個循環(huán),泳道3,6:21個循環(huán);M:標準分子量SJQ:Sample from the beginning growth stage tuber; CSQ:Sample from the harvest stage tuber. Lane 1 and 4, lane 2 and 5, lane 3 and 6 represent 15, 18, 21 cycles respectively. M:DNA size markers圖2 PCR循環(huán)數(shù)優(yōu)化Fig.2 The optimization experiment of PCR cycle parameter

    SJQ:始見期樣品,CSQ:采收期樣品;泳道1,3:酶切前的片段,泳道2,4:酶切后片段;M:標準分子量SJQ:Sample from the beginning growth stage tuber; CSQ:Sample from the harvest stage tuber; Lane 1 and 3:Before Rsa I digestion; Lane 2 and 4:After Rsa I digestion; M:DNA size markers圖3 Rsa I 酶切雙鏈cDNA效率檢測Fig.3 Analysis of Rsa I digestion

    2.4 接頭連接效率的檢測

    ds cDNA與接頭的連接效率是決定抑制性消減雜交成敗的關鍵步驟之一,連接效率高才能保證后面的雜交效率高,理論上,用2個特異引物和由1個特異引物與1個通用引物擴增目標片段的產(chǎn)物量相同,即產(chǎn)物亮度一致,接頭連接效率達100 %。由圖4可以看出,由Primer l和18S rRNA 3’ primer擴增得到片段的亮度,是由18S rRNA 3’及5’primer擴增片段亮度的50 %,說明連接效率大于25 %。

    2.5 差減效率的檢測

    進行2輪雜交和兩輪PCR以后,差異表達的基因得到了富集,由圖5可以看出,差減以后去除了共有的序列,富集了差異表達的基因,因此條帶亮度有所降低。同時,差減以后cDNA片段整體向下偏移(泳道1和泳道3),說明富集的差異表達片段集中在小片段范圍內,長度主要集中在250~1000 bp。此外,差減以后,條帶有些區(qū)域的亮度較集中,可能是由于相似長度的差異片段得到了最大程度的富集,符合cDNA文庫的構建要求。

    泳道1,3:以18S rRNA兩端為引物的PCR產(chǎn)物,泳道2,4:以Primer 1和18S-rRNA 3’端為引物的PCR產(chǎn)物;泳道1和2是以加接頭1的樣品為模板,泳道3和4是以加接頭2的樣品為模板;M:標準分子量Lane 1 and 3:PCR products using the primer 1 and 18S rRNA 3' primer; Lane 2 and 4:PCR products using the 18S rRNA 5' and 3' primers; Lane 1 and 2:PCR products using adaptor 1-ligated as template; Lane 3 and 4:PCR products using adaptor 2-ligated as template. M:DNA size markers圖4 接頭連接效率檢測Fig.4 Analysis of the ligation efficiency

    SJQ:始見期樣品,CSQ:采收期樣品;泳道1,3:以差減后產(chǎn)物為模板擴增的片段,泳道2,4:以差減前產(chǎn)物為模板擴增的片段;M:標準分子量SJQ:Sample from the beginning growth stage tuber; CSQ:Sample from the harvest stage tuber; Lane 1 and 3, PCR was performed using subtracted product as template. Lane 2 and 4:PCR was performed using unsubtracted product as template. M:DNA size markers圖5 差減效率驗證Fig.5 Analysis of subtraction efficiency

    2.6 差減文庫的PCR驗證

    經(jīng)SSH消減并富集得到的cDNA片段,轉化大腸桿菌DH5a感受態(tài)細胞,篩選藍白班,分別隨機挑取24個白色克隆,進行巢式PCR檢測。由6圖可知,大多數(shù)插入片段長度約在250~900 bp,符合建庫要求。

    SJQ:始見期文庫,CSQ:采收期文庫;泳道1~24:以隨機挑選的白色克隆為模板的PCR擴增片段SJQ:Sample from the beginning growth stage tuber; CSQ:Sample from the harvest stage tuber; Lane 1-24, RCR products using the randomly selected clones as template圖6 差減文庫中插入片段檢測Fig.6 The cDNA inserts verified by PCR

    表3 樣本基因與公共數(shù)據(jù)基因對比結果統(tǒng)計Table 3 BLAST result of ESTs with the database of NR,SWISS-PROT, TREMBL, CDD and PFAM

    2.7 基因的生物信息學分析

    2.7.1 基因的同源性注釋 基因的同源性注釋,采用BLST方法,將樣本基因分別與SWISS-PROT、CDD、PFAM、NR和TREMBL公共數(shù)據(jù)庫進行比對,取相似度>30 %,且e<1e-5的注釋為有效注釋,合并基因得到的所有注釋詳細信息。BLAST結果顯示:能注釋上NR、SWISS-PROT、TREMBL、CDD、PFAM數(shù)據(jù)庫的樣本基因,分別有65.26 %、34.42 %、63.96 %、26.30 %、14.94 %,具體注釋上不同數(shù)據(jù)庫的基因數(shù)量分布見表3。

    2.7.2 基因的COG/KOG功能分類預測 對SSH文庫的Unigene分別進行COG與KOG功能分類預測(圖7),結果發(fā)現(xiàn)有23個Unigene能被注釋上12種COG分類中,包括:核苷酸運輸和代謝(Nucleotide transport and metabolism)、翻譯后修飾(Posttranslational modification)、蛋白質周轉與陪伴(protein turnover, chaperones)、信號轉導機制(Signal transduction mechanisms)、轉錄(Transcription)、細胞骨架(Cytoskeleton)、次生代謝產(chǎn)物生物合成、運輸和分解代謝(Secondary metabolites biosynthesis, transport and catabolism)等類群。其中,脂質運輸和代謝(Lipid transport and metabolism)類群包含的基因最多,占比為17.39 %;同時,KOG功能分類預測也發(fā)現(xiàn),有103個Unigene能被注釋到核苷酸運輸和代謝(Nucleotide transport and metabolism)、碳水化合物運輸和代謝(Carbohydrate transport and metabolism)、轉錄(Transcription)、細胞骨架(Cytoskeleton)、次生代謝產(chǎn)物生物合成、運輸與分解代謝(Secondary metabolites biosynthesis, transport and catabolism)等19個KOG分類中。其中,25個基因歸屬信號轉導機制(Signal transduction mechanisms)類群,占24.27 %。

    A:COG;B:KOG圖7 ESTs序列COG與KOG功能預測分析結果Fig.7 COG and KOG functional analysis of EST sequences from SSH library

    表4 基因的KEGG注釋結果統(tǒng)計Table 4 KEGG analysis result of ESTs from SSH library

    2.7.3 基因的KEGG注釋 利用KAAS對基因注釋進行預測,可獲得基因對應的KO號,再由KO號可將基因對應到相關的KEGG pathway上,由此,便可得基因與KEGG中酶注釋的關系以及映射到pathway上的相關信息。經(jīng)KEGG分析,從本實驗構建的SSH文庫中,篩選出81個預測基因,它們能注釋到48個不同的EC號,參與到92個通路的代謝中(表4)。其中,ZB281822基因,對應酶編號為EC:2.3.1.9,能映射到13個pathway中,涉及萜類化合物骨架合成(ko00900)、脂肪酸代謝(ko00071)、酮體的合成與降解(ko00072)、纈氨酸,亮氨酸和異亮氨酸降解(ko00280)、賴氨酸降解(ko00310)、苯甲酸降解(ko00362)、色氨酸代謝(ko00380)、丙酮酸代謝(ko00620)、乙醛酸和二羧酸代謝 (ko00630)、丙酸代謝(ko00640)、丁酸甲酯代謝(ko00650)、固氮通路(ko00720)、雙組分系統(tǒng)(ko02020)等通路。

    2.7.4 基因的GO分類 利用Gene Ontology對構建的SSH文庫EST序列進行功能注釋,發(fā)現(xiàn)在生物過程(biological process)分類中,基因序列主要聚集于biological process、metabiolic process、cellular process、celluar metabolic process和primary metabolic process,基因個數(shù)均超過90個,其中Biological process達到338個;在細胞組成(cellular component)分類中,序列主要聚集于cell、cell part和intracellular;而在分子功能(Molecular Function)分類中,數(shù)量排在前三的基因序列依次為catalytic activity、binding、transferase activity。圖8顯示的是Levle2水平下的GO注釋分類結果,其中catalytic activity的基因數(shù)量最多,達到124個。

    甾體皂苷的生物合成,其前半部分與三萜皂苷生物合成一樣,共享甲羥戊酸代謝途徑,得到產(chǎn)物2,3-氧化鯊烯,經(jīng)環(huán)阿屯醇合成酶(cycloartenol synthase,CAS)的作用形成環(huán)阿屯醇,然后再經(jīng)氧化、脫羧、還原等反應得到膽固醇,最后經(jīng)甾體的糖基轉移酶(Steroidal Glycosyltransferase, SGT)和β-糖苷酶(26-O-beta-glucosidase)的作用下形成各種甾體皂苷[14]。對甾體皂苷合成酶的研究,早期主要集中在甾體皂苷元部分,如3-羥基-3-甲基戊二酰CoA還原酶(HMGR)、鯊烯合成酶(SQS)、環(huán)阿屯醇合成酶(CAS)等[15-17],后來研究發(fā)現(xiàn)糖鏈結構對其生理活性影響也比較大,隨后也逐漸加強了對諸如糖基轉移酶[18]、糖苷酶[19]等糖酶的研究。

    本實驗通過對EST序列進行生物信息學分析,從SSH文庫中篩選了一些與皂苷合成相關的酶或蛋白基因片段,它們分屬淀粉和蔗糖代謝、二萜類化合物的生物合成、類固醇生物合成、倍半萜類和三萜生物合成、萜類化合物骨架生物合成、糖酵解等代謝途徑,如β-呋喃果糖苷酶、環(huán)阿屯醇合酶、鯊烯單加氧酶、sterol 14-demethylase、UDP-glucosyl transferase 73C等,部分序列見表5。

    圖8 Level 2水平下的GO注釋分類gene數(shù)量分布Fig.8 Level 2 functional classification of sequenced cDNAs by Gene Ontology

    表5 SSH文庫中部分與皂苷合成相關的ESTs生物信息學分析Table 5 Bioinformatics analysis for a few ESTs related saponin synthesis from the SSH cDNA library

    3 結 論

    采用抑制性差減雜交技術,本實驗室構建了襄麥冬參與甾體皂苷代謝調控基因的SSH文庫:始見期塊根消減文庫和采收期塊根消減文庫,有效基因序列308條,長度主要分布在250~1000 bp左右,片段平均長度586.99 bp;文庫樣本序列注釋上NR、SWISS-PROT、TREMBL、CDD、PFAM庫的基因分別有65.26 %、34.42 %、63.96 %、26.30 %、14.94 %;樣本中分別有23和103個Unigene可注釋上12個COG分類與19個KOG分類中;樣本中有81個預測基因,可以注釋到48種酶與映射到92個代謝通路上;樣本基因功能在Biological Process分類中聚集于cellular process和metabiolic process,在Cellular Component主要聚集于cell、cell part和intracellular,在Molecular Function分類中主要聚集于catalytic activity、binding和transferase activity。該文庫的構建,非常有助于探索和揭示甾體皂苷生物合成途徑的分子基礎。

    4 討 論

    抑制消減雜交是建立在抑制性PCR基礎上的一種高效的差減雜交技術,可使高豐度與低豐度mRNA達到均衡,起到富集稀少mRNA的作用,有利于篩選低拷貝差異表達基因[20],可一次檢出上百個差異表達基因。盡管目前已經(jīng)出現(xiàn)了基于第二、三代測序技術的組學研究,但是筆者認為,SSH成本低、速度快的技術特點,非常適合樣品差異表達基因的初步篩選和探索,可作為組學大規(guī)模篩選研究的有益補充。

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