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    多花黃精實(shí)生苗組培快繁技術(shù)研究

    2018-03-02 08:13:27饒寶蓉謝東奇陳泳和周先治鄒榮春陳敏建劉忠輝

    饒寶蓉,謝東奇,陳泳和,周先治,鄒榮春,陳敏建,劉忠輝

    0 引言

    多花黃精(Polygonatum cyrtonema)屬百合科(Liliaceae)黃精屬(Polygonatum)的多年生草本植物。多花黃精具有養(yǎng)陰補(bǔ)氣、潤肺、益腎、健脾等功效,常用于脾胃虛弱、體倦乏力、口干食少、肺虛燥咳、精血不足、內(nèi)熱消渴[1]。目前,多花黃精的繁殖方式主要是種子繁殖[2-3]和根狀莖繁殖[1]。 但這兩種方法繁殖速度慢,大大限制了多花黃精的種植面積。因此,多花黃精種苗的問題成為了人工大面積種植的瓶頸?,F(xiàn)有的多花黃精栽培基地也迫切需要對多花黃精品種進(jìn)行提純復(fù)壯,以培育出高產(chǎn)的、抗病脫毒的種苗[4]。由此,對多花黃精組培快繁技術(shù)的研究迫在眉睫。

    目前有關(guān)多花黃精組織培養(yǎng)的研究剛剛起步,成果較少,對規(guī)?;a(chǎn)尚不足以起到指導(dǎo)作用,因此,我們開展了多花黃精實(shí)生苗組織培養(yǎng)快速繁殖技術(shù)研究,以期初步建立高效、適宜、成熟的多花黃精實(shí)生苗快繁培養(yǎng)體系,代替?zhèn)鹘y(tǒng)的栽培技術(shù)來滿足市場對多花黃精不斷增長的需求,為工廠化、規(guī)?;亩嗷S精育苗提供技術(shù)依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 試驗(yàn)材料

    本試驗(yàn)所用多花黃精種子取自南平市光澤縣承天藥業(yè)多花黃精規(guī)范化生產(chǎn)基地,于2015~2017年在南平市華科生物科技有限公司與南平市農(nóng)業(yè)科學(xué)研究所中進(jìn)行試驗(yàn)。

    1.2 試驗(yàn)方法

    1.2.1 無菌苗的獲得

    1.2.1.1 種子的預(yù)處理試驗(yàn) 從多花黃精規(guī)范化生產(chǎn)基地取得的多花黃精種子,分別進(jìn)行4種預(yù)處理,L1:種子種皮處理(用沙子磨去),后變溫浸種(將黃精種子浸在1000 mg/kg GA3中,先放置在25℃恒溫催芽箱內(nèi)浸種24 h后,再放置于0~4℃冷藏箱內(nèi)浸種 24 h);L2:種子種皮不處理,直接變溫浸種;L3:種子種皮處理,未浸種,直接從冷庫中取出;L4:種子種皮不處理,未浸種,直接從冷庫中取出。將處理好的種子無菌播種到培養(yǎng)基中,每瓶10粒,各個(gè)處理10瓶,放到25℃培養(yǎng)室中,觀察其發(fā)芽率。

    1.2.1.2 滅菌方式的確定 選擇最佳的種子預(yù)處理方式對種子進(jìn)行處理,用流水沖洗干凈,在超凈工作臺(tái)上用75%的酒精消毒30 s,然后用無菌水沖洗3次,放在無菌瓶中用2%NaClO滅菌,時(shí)間分別為0、7、15 min;用無菌水沖洗3次,再用0.1% 的 HgCl2消毒7、14、21 min后,用無菌水沖洗6次,用濾紙吸干外表水分,放入無菌盤子上,將種子播在無菌誘導(dǎo)培養(yǎng)基表面。每瓶3粒,各個(gè)處理接種50瓶,50粒一個(gè)重復(fù),重復(fù)3次,約10 d后,觀察種子的感染情況,并繼續(xù)觀察發(fā)芽情況。

    1.2.2 培養(yǎng)基的制備與培養(yǎng)條件 均以包含30多種元素的MS為基本培養(yǎng)基,再根據(jù)試驗(yàn)?zāi)康模ㄕT導(dǎo)、增殖、生根)添加不同濃度的6-BA(6-芐基腺嘌呤)、GA3(赤霉素)、2,4-D[5](2,4-二氯苯氧乙酸)和 NAA[6-7](萘乙酸)等激素,附加蔗糖 25 g/L(生根培養(yǎng)基20 g/L)、卡拉膠7 g/L,最后調(diào)節(jié)pH 值至5.8(用 1 mol/L NaOH 或 1 mol/L HC1 調(diào)節(jié) pH 值)。 罐裝于培養(yǎng)瓶后,進(jìn)行滅菌,滅菌條件為:121℃、131 kPa,滅菌20 min。培養(yǎng)基制備好之后,置于無菌操作室中,放置72 h,并將紫外燈打開將無菌操作室進(jìn)行滅菌。材料接種后,在光照度1500~2500 lx光照下培養(yǎng),光照時(shí)間 11 h/d,培養(yǎng)室溫度保持在(25±1)℃。

    1.2.3 黃精種子誘導(dǎo)、芽增殖與生根培養(yǎng)基的激素濃度篩選方法 選擇最佳的種子預(yù)處理方式對種子進(jìn)行處理,后選擇最佳的消毒滅菌方法,將消毒好的種子放入不同激素組合的誘導(dǎo)培養(yǎng)基中,每瓶6粒,每個(gè)處理接種30瓶,60粒為一個(gè)重復(fù),重復(fù)3次,60 d后統(tǒng)計(jì)誘導(dǎo)結(jié)果。選取生長健壯、大小一致、沒有污染的多花黃精小芽種球切塊成0.3~0.5 cm大小,轉(zhuǎn)移到不同激素組合的增殖培養(yǎng)基中,每瓶6個(gè)芽,每個(gè)處理接種30瓶,60個(gè)芽為一個(gè)重復(fù),重復(fù)3次,30 d后統(tǒng)計(jì)增殖情況。選取生長健壯、大小一致、沒有污染的多花黃精小芽,轉(zhuǎn)移到不同激素組合的生根培養(yǎng)基中,每瓶6個(gè)芽,每個(gè)處理接種30瓶,60個(gè)芽為一個(gè)重復(fù),重復(fù)3次,30 d后統(tǒng)計(jì)生根情況。

    1.2.4 煉苗移栽 將較好的多花黃精生根瓶苗移入大棚溫室中培養(yǎng)5 d,打開瓶蓋煉苗3 d后,從瓶中取出試管苗,洗去根部培養(yǎng)基,選擇帶有3條以上根的健康小苗,移栽到基質(zhì)(泥炭土∶沙子=2∶1)中,每周澆一次營養(yǎng)液,2個(gè)月后統(tǒng)計(jì)存活率。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 不同預(yù)處理方式對種子發(fā)芽率的影響

    經(jīng)不同方式預(yù)處理后,種子發(fā)芽時(shí)間及發(fā)芽率的統(tǒng)計(jì)結(jié)果見表1。由表1可知,不同預(yù)處理方法對種子的發(fā)芽有一定的影響,L3、L4明顯比L1、L2發(fā)芽時(shí)間早、發(fā)芽率高,長勢也明顯優(yōu)于進(jìn)行變溫處理的種子;同是直接從冷庫中取出的種子,L3較L4發(fā)芽時(shí)間早、發(fā)芽率高。從葉片長勢上看,種皮未經(jīng)沙磨處理的略好,可能是由于沙磨處理對種皮造成一定損傷,對后期發(fā)芽生長產(chǎn)生了一定的影響。綜合發(fā)芽時(shí)間、發(fā)芽率及芽生長狀況,將黃精種子直接從冷庫中取出后磨去種皮(L3處理)是發(fā)芽率較高并能縮短發(fā)芽時(shí)間的種子預(yù)處理方式。

    表1 不同種子預(yù)處理方式對發(fā)芽率的影響

    2.2 不同的滅菌方式對種子污染率與發(fā)芽率的影響

    從表2可以看出,兩種滅菌劑(NaClO與HgCl2)的使用以及滅菌時(shí)間的差異,對種子的污染率及發(fā)芽率都有一定的影響。其中,單獨(dú)使用HgCl2(A1~A3)的效果沒有HgCl2與NaClO結(jié)合使用(A4~A9)的效果好;當(dāng) 2%NaClO滅菌時(shí)間相同時(shí),隨著 0.1%HgCl2滅菌時(shí)間增長,污染率呈現(xiàn)越來越低的趨勢;當(dāng)0.1%HgCl2滅菌時(shí)間相同時(shí),隨著2%NaClO滅菌時(shí)間增長,污染率呈現(xiàn)越來越低的趨勢;當(dāng)2%NaClO滅菌時(shí)間相同時(shí),隨著0.1%HgCl2滅菌時(shí)間增長,種子的發(fā)芽率卻出現(xiàn)先升高后降低的趨勢;當(dāng)0.1%HgCl2滅菌時(shí)間相同時(shí),隨著2%NaClO滅菌時(shí)間增長,種子的發(fā)芽率卻出現(xiàn)升高的趨勢,即種子的發(fā)芽率隨著0.1%HgCl2滅菌時(shí)間的加長而先升高后降低,說明HgCl2滅菌時(shí)間過長對種子的發(fā)芽有一定的影響,會(huì)對種子的胚產(chǎn)生一定的破壞;但隨著2%Na-ClO滅菌時(shí)間增長,種子的發(fā)芽率出現(xiàn)升高的趨勢。因此,最適的滅菌方式是A8(2%NaClO 15 min+0.1%HgCl214 min),污染率低且發(fā)芽率高。

    表2 不同的滅菌方式對種子污染率與發(fā)芽率的影響

    2.3 不同激素配比的芽分化誘導(dǎo)培養(yǎng)基對黃精不定芽誘導(dǎo)的影響

    試驗(yàn)中獲得的無菌苗及初生成的球莖接種于芽分化誘導(dǎo)培養(yǎng)基中,培養(yǎng)30 d后,芽分化結(jié)果如表3。從表3可知,B1、B2處理的發(fā)芽率較低;誘導(dǎo)出的芽長得最好的是B3配方的培養(yǎng)基(MS+6-BA 1 mg/L+GA30.2 mg/L),誘導(dǎo)率達(dá) 80%以上;B5配方的培養(yǎng)基雖然芽的數(shù)量較多,誘導(dǎo)率較高,球莖較大,但是球莖出現(xiàn)異形。因此,從6種誘導(dǎo)培養(yǎng)基配方中選出較好的 4種配方(B3、B4、B5、B6)對其進(jìn)行增殖效果的比較。

    表3 不同激素配比的芽分化誘導(dǎo)培養(yǎng)基對不定芽誘導(dǎo)的影響

    2.4 不同激素配比的增殖培養(yǎng)基對黃精苗長勢的影響

    如表4 所示,B3配方(MS+6-BA 1 mg/L+GA30.2 mg/L+2,4-D 0 mg/L+ NAA 0 mg/L)的苗長勢不錯(cuò),葉子大且鮮綠,球莖大,增殖率較高,增殖系數(shù)3.15(以種球上的芽為單位,即增殖系數(shù)=出芽數(shù)/原有芽數(shù));B4配方的葉子長勢不錯(cuò),但是無種球,增殖率一般,增殖系數(shù)為1.8;B5配方組培苗球莖異常大,葉子少,球莖有點(diǎn)畸形;在B6配方上長得較差,只有零星幾片葉子,出芽率低,增殖系數(shù)低。

    表4 不同激素配比的增殖培養(yǎng)基對黃精苗長勢的影響

    2.5 不同激素配比的生根培養(yǎng)基對黃精組培苗生根 的影響

    從表5可知,6-BA對生根有抑制的作用,當(dāng)6-BA濃度達(dá)0.3 mg/L時(shí)明顯抑制了根的生長,其后生根率為0,但是其對葉子和球莖的生長有明顯的促進(jìn)作用;而NAA對生根有較好的促進(jìn)作用,濃度較低時(shí)更利于生根,高濃度時(shí)也會(huì)出現(xiàn)抑制的現(xiàn)象。綜合13 種配方的培養(yǎng)效果,H1配方(MS+6-BA 0 mg/L+NAA 0.3 mg/L)較為理想,生根率達(dá) 85%,球莖大小中等,葉子長勢較好。但在該配方培養(yǎng)過程中仍然有少數(shù)葉子發(fā)黃,因此后期還要繼續(xù)深入試驗(yàn),找到一個(gè)葉子既不發(fā)黃,又有利于生根的平衡點(diǎn)。

    表5 不同激素配比的生根培養(yǎng)基對黃精組培苗生根的影響

    2.6 移栽煉苗

    移栽200株健康小苗,2個(gè)月后統(tǒng)計(jì),存活株為183株,存活率達(dá)到90%以上(圖1~圖2)。

    圖1 準(zhǔn)備移栽的小苗

    圖2 移栽后的苗

    3 討論與小結(jié)

    本試驗(yàn)結(jié)果表明:種子發(fā)芽的最佳預(yù)處理方式是將黃精種子直接從冷庫中取出,經(jīng)種皮磨去處理,可提高發(fā)芽率,縮短發(fā)芽時(shí)間;最適的消毒滅菌處理方式是用2%NaClO消毒15 min,再用0.1%HgCl2消毒14 min,污染率較低,發(fā)芽率高,效果最好;誘導(dǎo)及增殖的最適宜培養(yǎng)基是一致的,即MS+6-BA 1.0 mg/L+GA30.2 mg/L,其誘導(dǎo)出的芽、葉片長勢良好,葉片大且鮮綠,球莖大,增殖率較高,增殖系數(shù)達(dá)到3以上;理想的生根培養(yǎng)基為MS+NAA 0.3 mg/L,生根率高達(dá)85%,葉子長勢較好,黃色葉子較少,球莖大小中等。還需進(jìn)一步研究黃精組培苗的落地和栽培試驗(yàn),對于黃精組培苗能否應(yīng)用于生產(chǎn),將在后續(xù)的試驗(yàn)中作進(jìn)一步探討。

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