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    響應(yīng)面優(yōu)化臍橙皮中果膠的提取工藝及理化性質(zhì)分析

    2018-02-28 02:11:35沈銳謝青松趙壯志稅春玲李磊
    食品研究與開發(fā) 2018年4期
    關(guān)鍵詞:液料臍橙果膠

    沈銳,謝青松,趙壯志,稅春玲,李磊

    (1.重慶市永川食品藥品檢驗(yàn)所,重慶402160;2.重慶醫(yī)科大學(xué)附屬永川醫(yī)院,重慶402160)

    天然果膠類物質(zhì)主要以原果膠、果膠、果膠酸3種狀態(tài)廣泛存在于植物的果實(shí)、根、莖、葉中,它們伴隨纖維素而存在,構(gòu)成細(xì)胞中間層粘結(jié)物,使植物組織細(xì)胞緊緊黏結(jié)在一起[1]。原果膠不溶于水,但可在酸、堿、鹽、酶的作用下,可加水分解轉(zhuǎn)變成水溶性果膠[2]。不同的果蔬含果膠物質(zhì)的量不同,果膠在穩(wěn)定性、增稠、乳化和膠凝方面性質(zhì)良好[3]。中國西南重慶地區(qū)盛產(chǎn)臍橙,每年大量的臍橙皮廢棄,少部分轉(zhuǎn)化為低效用的農(nóng)業(yè)肥料,總體來說造成大量的浪費(fèi)。從臍橙皮中提取的果膠是高酯化度的果膠,在食品工業(yè)中作為添加劑常用來制作果醬、果凍等食品。

    而在國內(nèi)果膠作為用途廣泛的添加劑需求量正在以每年5%~10%的速度快速增長。全世界果膠的年需求量約4萬噸,其中美國6 500 t,俄羅斯2 700 t,日本2 300 t。據(jù)不完全統(tǒng)計(jì)我國每年約消耗5 000 t,其中從外國進(jìn)口約占80%,同世界平均水平相比仍呈高速增長趨勢[4-5]。果膠主要生產(chǎn)國有丹麥、英國、美國、以色列、法國等,亞洲國家產(chǎn)量極少,特別是消費(fèi)量約占世界產(chǎn)量10%的日本因無生產(chǎn)廠家,完全依靠進(jìn)口[6]。在我國巨大的果膠缺口,使國產(chǎn)果膠成了國內(nèi)眾多企業(yè)的期盼,因此大力開發(fā)果膠生產(chǎn)新工藝,利用我國豐富的果膠資源,生產(chǎn)出優(yōu)質(zhì)果膠,滿足國內(nèi)外市場需求已顯得極為迫切。目前果膠質(zhì)量差、產(chǎn)量低卻是我國果膠產(chǎn)業(yè)的現(xiàn)狀,要改變果膠依賴進(jìn)口就需要更加先進(jìn)的生產(chǎn)工藝。本文是就在臍橙皮中提取果膠工藝的探討。雖然目前有關(guān)臍橙果膠提取工藝優(yōu)化的文章已有不少,但關(guān)于細(xì)化到響應(yīng)面研究還比較少,當(dāng)然目前關(guān)于兩種優(yōu)化方法的選擇存在分歧,對比研究正交設(shè)計(jì)和響應(yīng)面法試驗(yàn)對臍橙皮中果膠提取,發(fā)現(xiàn)兩種試驗(yàn)設(shè)計(jì)方法各有優(yōu)點(diǎn),正交設(shè)計(jì)的試驗(yàn)次數(shù)相對較少,且方法簡便,響應(yīng)面法對數(shù)據(jù)的統(tǒng)計(jì)分析優(yōu)于正交試驗(yàn)。由此可見兩種方法各有優(yōu)勢,在實(shí)際應(yīng)用時(shí)不能一概而論,為了避免在試驗(yàn)中選擇優(yōu)化方法的隨意性和盲目性,尋找出最優(yōu)的提取條件,本文將正交設(shè)計(jì)和響應(yīng)面法分別用于臍橙皮中果膠提取工藝的優(yōu)化,探討兩種方法對臍橙皮中果膠提取工藝優(yōu)化的差別,以便為試驗(yàn)優(yōu)化設(shè)計(jì)提供合理的指導(dǎo),本文給出了正交和響應(yīng)面的分析比較,為其他工藝研究給出了參考依據(jù)。

    1 材料和方法

    1.1 材料和設(shè)備

    臍橙:重慶奉節(jié)臍橙;無水乙醇、鹽酸、硫酸、氫氧化鈉等均為分析純:成都科龍?jiān)噭?/p>

    GRX-9076A電熱恒溫鼓風(fēng)干燥箱、SHZ-B恒溫水浴鍋:上海龍躍儀器設(shè)備公司;TE216-L精密天平:賽多利斯;PHS-3C酸度計(jì):上海佑科;MDJ-A01Y1食品粉碎機(jī):上海小熊;TG16-WS離心機(jī):湖南湘儀;LT-15-11-330馬弗爐:德國納博熱;T50自動(dòng)電位滴定儀:瑞士梅特勒-托利多;FE20酸度計(jì):梅特勒(上海)公司;ICE3000原子吸收分光光度計(jì):美國賽默飛世爾;K-350水蒸氣蒸餾儀:瑞士步琦。

    1.2 方法

    1.2.1 果膠提取流程

    取臍橙外皮,煮沸滅酶,再用去離子水漂洗3次至漂洗液無色,然后置于55℃烘箱中烘干,將烘干后的產(chǎn)品置食品粉碎機(jī)中粉碎過60目篩,得到果皮備用。調(diào)節(jié)pH值,用鹽酸調(diào)節(jié)pH值在0.4~2.0范圍。恒溫浸提,浸提時(shí)間控制在40 min~120 min,溫度控制在65℃~85℃。用離心機(jī)進(jìn)行固液分離,速度在3 000 r/min,時(shí)間15 min,收集上清液。待轉(zhuǎn)移出上清液后,在不斷攪拌下加入1.5倍體積的無水乙醇。將果膠醇沉溶液置于25℃室溫中靜置1 h,離心分離,收集離心沉淀。無水乙醇2~3洗滌,于55℃條件下干燥至恒重。

    1.2.2 果膠提取率計(jì)算

    臍橙皮果膠提取率的測定采用重量法,果膠提取計(jì)算公式

    式中:p為果膠提取率,%;m為提取得到的果膠得質(zhì)量,g;W為樣品臍橙皮的質(zhì)量,g。

    1.2.3 單因素試驗(yàn)設(shè)計(jì)

    1.2.3.1 液料比對果膠得率的影響

    準(zhǔn)備備用的果皮粉5.0 g,分別以液料比10∶1、15 ∶1、20 ∶1、25 ∶1、30 ∶1(mL/g)的量,加鹽酸使提取液pH值為0.8,離心醇沉提取,浸提溫度75℃,提取時(shí)間80 min,乙醇濃度60%,沉淀時(shí)間60 min。然后經(jīng)過離心、洗滌、干燥計(jì)算果膠得率,確定適宜液料比。

    1.2.3.2 pH值對果膠得率的影響

    準(zhǔn)備備用的果皮粉5.0 g,加去離子水使液料比為20∶1(mL/g),加鹽酸調(diào)節(jié)提取液pH值分別為0.4、0.8、1.2、1.6、2.0,離心醇沉提取,浸提溫度 75 ℃,提取時(shí)間80 min,乙醇終濃度60%,沉淀時(shí)間60 min。然后經(jīng)過離心、洗滌、烘干至質(zhì)量恒定,計(jì)算果膠得率,確定適宜pH值。

    1.2.3.3 浸提溫度對果膠得率的影響

    準(zhǔn)備備用的果皮粉5.0 g,加去離子水使液料比為20 ∶1(mL/g),加鹽酸調(diào)節(jié)提取液 pH 值為 0.8,離心醇沉提取,浸提溫度分別為 65、70、75、80、85 ℃,提取時(shí)間80 min,乙醇終濃度60%,沉淀時(shí)間60 min。然后經(jīng)過離心、洗滌、烘干至質(zhì)量恒定,計(jì)算果膠得率,確定適宜浸提溫度。

    1.2.3.4 提取時(shí)間對果膠提取率的影響

    準(zhǔn)備備用的果皮粉5.0 g,加去離子水使液料比為20 ∶1(mL/g),加鹽酸調(diào)節(jié)提取液 pH 值為 0.8,離心醇沉提取,浸提溫度為75℃,提取時(shí)間分別為40、60、80、100、120 min,乙醇終濃度 60%,沉淀時(shí)間 60 min。然后經(jīng)過離心、洗滌、烘干至質(zhì)量恒定,計(jì)算果膠得率,確定適宜提取時(shí)間。

    1.2.4 正交試驗(yàn)

    在單因素試驗(yàn)分析基礎(chǔ)上,以果膠得率作為評價(jià)指標(biāo),進(jìn)行四因素三水平的正交試驗(yàn),優(yōu)化果膠提取工藝,正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)見表1。

    表1 正交試驗(yàn)因素水平表Table 1 Factors and levels of orthogonal test

    1.2.5 響應(yīng)面試驗(yàn)

    在單因素試驗(yàn)分析基礎(chǔ)上,以果膠得率作為評價(jià)指標(biāo),采用Box-Behnken設(shè)計(jì)四因素三水平的響應(yīng)面試驗(yàn),優(yōu)化果膠提取工藝,響應(yīng)面試驗(yàn)設(shè)計(jì)見表2。

    表2 響應(yīng)面分析因素水平表Table 2 Factors and levels of response surface methodology

    2 結(jié)果與分析

    2.1 單因素試驗(yàn)結(jié)果

    2.1.1 液料比對臍橙果皮果膠提取率的影響

    液料比對果膠提取率的影響見圖1。

    圖1 液料比對果膠提取率的影響Fig.1 Effects of the solid-liquid ratio on extraction yield of pectin

    由圖1可知,隨著液料比的增大,果膠提取率在增加,當(dāng)液料比20∶1(mL/g)以后,果膠率達(dá)到頂點(diǎn),之后緩緩下降。這可能是當(dāng)液料比太小的時(shí)候,不能完全溶解物料和提取物,而當(dāng)體積太大,在后續(xù)的濃縮工藝帶損耗,因此,液料比選擇20∶1(mL/g)為宜。

    2.1.2 pH值對果膠提取率的影響

    pH值對果膠提取率的影響見圖2。

    圖2 pH值對果膠提取率的影響Fig.2 Effects of pH on extraction yield of pectin

    由圖2可知,隨著pH值過低時(shí),溶液極性較強(qiáng),對果膠分子甙鍵和酯鍵斷裂,果膠發(fā)生解聚。隨pH值上升,酸性條件下,果膠轉(zhuǎn)化為水溶性果膠,果膠提取率在上升,但是pH值進(jìn)一步上升,果膠轉(zhuǎn)化為果膠酸,穩(wěn)定性下降,得率降低。綜合以上,選擇pH值為0.8。

    2.1.3 浸提溫度對果膠提取率的影響

    浸提溫度對果膠提取率的影響見圖3。

    圖3 浸提溫度對果膠提取率的影響Fig.3 Effects of extraction temperature on extraction yield of pectin

    由圖3可知,隨著浸提熱處理中,果膠會(huì)發(fā)生脫甲基和β消除兩種非酶反應(yīng),原果膠水解成可溶果膠,但是隨著溫度的升高,β消除反應(yīng)速率不斷升高,果膠降解,果膠得率下降。綜合以上,選擇浸提溫度為80℃[7-8]。

    2.1.4 提取時(shí)間對果膠提取率的影響

    提取時(shí)間對果膠提取率的影響見圖4。

    圖4 提取時(shí)間對果膠提取率的影響Fig.4 Effects of extraction time on extraction yield of pectin

    由圖4可知,隨著提取時(shí)間的增大,果膠質(zhì)得到充分的水解,溶解為水溶性果膠,但是隨著時(shí)間過長,在酸性條件下,果膠發(fā)生降解,提取率也隨之降低。綜合以上,選擇提取時(shí)間為100 min[9]。

    2.2 正交試驗(yàn)結(jié)果

    為確定果膠提取最佳工藝參數(shù),在單因素的試驗(yàn)結(jié)果基礎(chǔ)上,選取四因素三水平L9(34)設(shè)計(jì)正交試驗(yàn)表,正交試驗(yàn)方案和結(jié)果見表2,以果膠的得率作為評價(jià)指標(biāo),對試驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行分析,確定臍橙果膠最佳工藝條件。分別用正交試驗(yàn)最佳工藝條件進(jìn)行6組試驗(yàn),果膠的提取率平均提取率為22.31%[10-11]。

    由極差R分析可知,各因素影響主次順序?yàn)锳>B>D>C最佳工藝組合為A1B2C2D2,即臍橙皮果膠提取工藝的最佳條件為為:液料比 20 ∶1(mL/g)、pH0.8、提取時(shí)間100 min、溫度80℃。從正交結(jié)果可知,液料比對結(jié)果影響較大。

    表3 正交試驗(yàn)結(jié)果Table 3 Experimental design and result of orthogonal method

    2.3 響應(yīng)面試驗(yàn)結(jié)果

    2.3.1 響應(yīng)面試驗(yàn)結(jié)果

    響應(yīng)面試驗(yàn)結(jié)果見表4,用Design-Expert 8.0.6對表中數(shù)據(jù)進(jìn)行分析,得到回歸模型方程(2),方差分析見表5[12]。

    表4 響應(yīng)面法的試驗(yàn)設(shè)計(jì)與結(jié)果Table 4 Experiment design and results of response surface method analysis

    續(xù)表4 響應(yīng)面法的試驗(yàn)設(shè)計(jì)與結(jié)果Continue table 4 Experiment design and results of response surface method analysis

    表5 回歸模型方差分析表Table 5 Variance analysis of regression model

    回歸模型方程:果膠提取率/%=22.25-3.90A+1.73B+0.15C+1.04D+3.83AB-0.083AC-0.85AD-4.74BC-1.44BD-1.96CD-3.26A2-4.66B2-3.38C2-5.10D2(2)

    由表中可知,失擬項(xiàng) F=5.54,P=0.056 7>0.05,差異不顯著,模型擬合較好;模型 F=106.36,P<0.000 1,達(dá)到極顯著,回歸方差模型高度顯著的,說明試驗(yàn)誤差小,可以用此模型對果膠工藝進(jìn)行分析和預(yù)測。影響方程的因素中C和AC差異不顯著,AD差異顯著,其余各因素及各因素交互作用的P值均小于0.01,差異均為極顯著[13]。根據(jù)各因素F值的大小可知,各因素主效應(yīng)關(guān)系為:A(液料比)>B(pH 值)>D(提取溫度)>C(提取時(shí)間),與上面的單因素分析和正交分析結(jié)論吻合。

    2.3.2 交互作用分析

    各因素交互作用對果膠提取率影響的響應(yīng)曲面圖見圖5。

    圖5 各因素交互作用對果膠提取率影響的響應(yīng)曲面圖Fig.5 Three-dimension response surface plot of the combined effects of each factor on the extraction rate of pectin

    響應(yīng)面等高線圖直接展示了每個(gè)因素對預(yù)測值的影響,以及各因變量之間的相互作用。橢圓說明兩個(gè)因變量之間有顯著的相互影響,而圓形則正好相反。圖5直觀的反應(yīng)了4個(gè)因素之間的交互關(guān)系,從響應(yīng)面的最高點(diǎn)可以看出,在所選范圍存在極值。從響應(yīng)面曲面坡度的大小和等高線可以看出因素間交互作用的強(qiáng)弱和因素對響應(yīng)值的影響程度。將其中任意兩個(gè)因素固定在零水平,另外兩個(gè)因素對響應(yīng)值的影響。以圖5(a)可例,固定提取時(shí)間和提取溫度,當(dāng)液料比處于低水平的時(shí)候,果膠提取率隨溶液pH值的增大先增大后下降,當(dāng)液料比處于高水平的時(shí)候,果膠提取率隨溶液pH值的增大先緩緩增大后緩緩下降,當(dāng)處于溶液pH值低水平的時(shí)候,果膠提取率隨液料比的增大而下降,當(dāng)溶液pH處于高水平的時(shí)候,果膠提取率隨液料比的增大先增大后下降。由此類推可知圖 5 中(a)(c)(d)(e)(f)兩因素影響作用,等高線為橢圓知 AB、AD、BC、BD、CD 兩兩交互作用顯著,而(b)圖等高線接近于圓形,說明AD交互作用不顯著,與方差分析具有一致性[12]。

    2.3.3 最佳工藝及驗(yàn)證試驗(yàn)

    根據(jù)所得到的模型,運(yùn)用Design-Expert 8.0.6軟件對模型進(jìn)行分析,預(yù)測出酸提取法最佳工藝條件為:液料比21.27∶1(mL/g),溶液pH0.714,提取時(shí)間102.68 min,提取溫度80.84℃,考慮到實(shí)際操作的便利,將最佳工藝條件調(diào)整為:液料比 21∶1(mL/g),溶液pH0.7,提取時(shí)間102 min,提取溫度81℃。在最佳工藝條件下進(jìn)行6次平行試驗(yàn),果膠提取率平均值為23.52%,與理論預(yù)測值基本吻合。說明了回歸方程的預(yù)測值與實(shí)驗(yàn)值之間具有較好的擬合度,相比較之下,響應(yīng)面分析比正交分析和單因素分析有明顯優(yōu)勢,不容易忽略最優(yōu)參數(shù)。

    3 正交試驗(yàn)和響應(yīng)面試驗(yàn)優(yōu)化效果比較

    通過兩種方法用于優(yōu)化臍橙皮中果膠提取的結(jié)果可以看出,正交試驗(yàn)法是從全面試驗(yàn)中挑選出部分有代表性的點(diǎn)進(jìn)行實(shí)驗(yàn)并進(jìn)行極差分析,以獲得最優(yōu)的因素組合,它是一種快速經(jīng)濟(jì)的試驗(yàn)設(shè)計(jì)方法,具有簡單易行的特點(diǎn),但是不可能像全面試驗(yàn)一樣對各因素效應(yīng)、交互作用進(jìn)行一一分析,當(dāng)有交互作用存在時(shí),可能出現(xiàn)交互作用混雜,因此它不能在整個(gè)區(qū)域上找到因素和響應(yīng)值之間的一個(gè)明確的函數(shù)表達(dá)式(即回歸方程),也就無法找到整個(gè)區(qū)域上因素的最佳組合和響應(yīng)值的最優(yōu)值。而響應(yīng)面法則是給出兩個(gè)極值,通過爬坡試驗(yàn)等獲得其范圍內(nèi)最優(yōu)的條件組合,并且能夠反映各因素之間的交互作用,與正交試驗(yàn)法相比更加精確和直觀。響應(yīng)面法雖然試驗(yàn)次數(shù)較多,但能夠在整個(gè)區(qū)域上進(jìn)行連續(xù)的分析,找出最合適的條件,試驗(yàn)精度較高[14]。

    4 臍橙皮果膠理化性質(zhì)

    根據(jù)國家強(qiáng)制標(biāo)準(zhǔn)GB 25533-2010《食品添加劑果膠》中涉及的方法對提取的樣品進(jìn)行檢驗(yàn),結(jié)果見表6,可以看到該品各項(xiàng)指標(biāo)高于果膠標(biāo)準(zhǔn),特別是總半乳糖醛酸含量為69.8%,證明果膠純度較好[10,15-16]。

    表6 果膠制品質(zhì)量特征Table 6 Quality characteristics of pectin products

    5 其他樣品果膠提取率

    其他樣品果膠提取率見圖6。

    圖6 其他樣品果膠提取率Fig.6 Extraction rate of pectin in other samples

    如圖6所示,現(xiàn)階段我國生產(chǎn)果膠原料中產(chǎn)量較高的是橙皮、火龍果皮、檸檬皮及其果渣,但是橙皮的優(yōu)勢是產(chǎn)量比火龍果和檸檬大很多,價(jià)格低廉,原料來源簡單容易,是發(fā)展果膠提取工業(yè)很有優(yōu)勢的原料。

    6 結(jié)論

    以臍橙皮為果膠提取原料,采用以酸提取為基礎(chǔ)結(jié)合加熱提取,最后乙醇沉淀的方法提取果膠,通過單因素、正交、響應(yīng)面綜合分析,得到臍橙果膠得最佳工藝條件為,液料比 21 ∶1(mL/g),溶液 pH0.7,提取時(shí)間102 min,提取溫度81℃,乙醇最終濃度60%,沉淀時(shí)間60 min,其提取率為23.52%。與相對于其他提取方法來說,該提取方法簡單,能耗小,設(shè)備簡單,適合鄉(xiāng)鎮(zhèn)在發(fā)展臍橙皮廢料制果膠產(chǎn)業(yè)中使用,為臍橙皮的廢物利用提供了很好的參考[16-17]。

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