賈雨薇,王 婧,王 彪,李國棟,陳 騰,陳艷炯
(西安交通大學(xué)醫(yī)學(xué)部:1. 基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院病原生物學(xué)與免疫學(xué)系;2. 法醫(yī)學(xué)院,陜西西安 710061)
甲基苯丙胺(methamphetamine, METH)是一種高成癮性精神興奮藥物。METH濫用目前已成為困擾世界的一大社會問題,同時METH也是我國濫用最廣泛的毒品之一。METH可以破壞機(jī)體免疫防御系統(tǒng),降低身體免疫力,增加人群感染率,并引起流行性疾病的傳播[1-3]。大量研究發(fā)現(xiàn)METH可以促進(jìn)HIV感染以及肝細(xì)胞內(nèi)丙肝病毒的復(fù)制[4-5];METH還可以降低白細(xì)胞的增殖以及免疫球蛋白的產(chǎn)生[6-7],影響巨噬細(xì)胞和樹突狀細(xì)胞的功能[8-11]。近年來,大量動物實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)METH從血液再分布到機(jī)體各組織的比率是不同的,METH在各個臟器中的累積率依次為腎臟>脾臟>大腦>肝臟>心臟>血清[12],而脾臟是外周免疫應(yīng)答的主要場所。研究表明,METH可以使外周炎性細(xì)胞因子和趨化因子增加,這些改變與METH濫用引起的免疫功能障礙、神經(jīng)元損傷和持續(xù)性認(rèn)知障礙有關(guān)[13]。因此,揭示METH暴露是如何作用于人體外周免疫系統(tǒng)尤其是脾臟以及其作用機(jī)制可以對METH誘導(dǎo)的免疫損傷提供新的治療思路。
脂多糖(lipopolysaccharide, LPS)即內(nèi)毒素,作為革蘭氏陰性菌細(xì)胞壁成分,能夠通過結(jié)合CD4/TLR4/MD2受體復(fù)合物促進(jìn)巨噬細(xì)胞等多種細(xì)胞分泌細(xì)胞因子,從而引起強(qiáng)烈的免疫反應(yīng)。在研究METH對免疫系統(tǒng)的影響中,LPS常被用做免疫刺激劑[14-16]。
本課題組前期研究發(fā)現(xiàn)METH作用能夠調(diào)節(jié)免疫系統(tǒng),表現(xiàn)為大劑量METH急性處理小鼠后短時間內(nèi)可顯著增加LPS誘導(dǎo)的脾臟IL-6和IL-10的表達(dá),但對TNF-α表達(dá)無影響[17];此外,METH還可以抑制LPS誘導(dǎo)的小鼠腸道黏膜肥大細(xì)胞活化,同時抑制小鼠肺臟、胸腺和BMMCs中肥大細(xì)胞源性細(xì)胞因子的表達(dá)[18]?;谝陨瞎ぷ骰A(chǔ),本研究進(jìn)一步探究逐漸遞增劑量METH暴露對外周免疫系統(tǒng)的作用。因此,本實(shí)驗(yàn)利用C57BL/6小鼠,建立模擬人類藥物成癮的模型,觀察慢性逐漸遞增劑量METH處理后LPS誘導(dǎo)的小鼠血清及脾臟中IL-1β、IL-6和TGF-β的表達(dá)變化情況,為揭示METH作用對免疫系統(tǒng)的影響奠定基礎(chǔ)。
1.1 實(shí)驗(yàn)動物 C57BL/6小鼠(北京維通利華),雄性,體質(zhì)量(16±2)g,32只,隨機(jī)分籠,每籠4只,室溫(22±3)℃,12~12 h晝夜循環(huán),非直接光照條件下生活,自由進(jìn)食進(jìn)水。動物飼養(yǎng)及動物實(shí)驗(yàn)過程嚴(yán)格按照西安交通大學(xué)動物管理機(jī)構(gòu)委員會準(zhǔn)則施行。
1.2 實(shí)驗(yàn)藥品和試劑配制 METH粉劑(中國生物制品檢定所),溶于生理鹽水,完全溶解后用濾菌器(過濾孔徑0.22 μm)過濾。LPS(大腸桿菌血清型O26:B6,Sigma)溶于生理鹽水,完全溶解后用濾菌器(過濾孔徑0.22 μm)過濾。蛋白酶抑制劑片劑和磷酸化酶抑制劑片劑各1片使用前溶解于10 mL RIPA組織細(xì)胞快速裂解液(陜西先鋒生物科技有限公司)中。IL-1β、IL-6和TGF-β ELISA試劑盒(美國Ebioscience公司)。
1.3 用藥方案 將實(shí)驗(yàn)小鼠隨機(jī)分為4組,即:生理鹽水+生理鹽水組(S+S)、生理鹽水+脂多糖組(S+L)、METH+生理鹽水組(M+S)、METH+脂多糖組(M+L)。模擬人類藥物成癮暴露方式,分段式漸進(jìn)性遞增劑量隔天給予小鼠i.p. METH(第1周0.5 mg/kg、第2周1.0 mg/kg、第3周2.0 mg/kg、第4周4.0 mg/kg)或生理鹽水(10.0 mL/kg)[19],在最后一劑METH之后24 h給小鼠i.p. LPS(0.33 mg/kg)或生理鹽水(10.0 mL/kg)[20]。LPS后2 h眼球采血,采集的血液標(biāo)本4 ℃冰箱過夜,待其完全凝固后,在2 000 r/min條件下離心30 min并收獲血清;并收集小鼠脾臟凍存于-80 ℃冰箱,待處理。
1.4 脾臟組織裂解處理 將待處理的小鼠脾臟從-80 ℃冰箱取出,向每個脾臟中加入事先配好的RIPA裂解液600 μL,將脾臟組織完全淹沒。利用超聲細(xì)胞裂解儀將組織打碎(4 min,40 Hz),使組織呈勻漿狀態(tài)。將勻漿在冰上靜置1 h左右,以進(jìn)一步裂解。之后利用低溫高速離心機(jī),在4 ℃ 2 000 r/min條件下離心15 min。待離心結(jié)束后,迅速將上清液轉(zhuǎn)移到無菌無酶的EP管中,放入-80 ℃冰箱,用于脾臟細(xì)胞因子檢測。
1.5 細(xì)胞因子檢測 取出凍存于-80 ℃冰箱的血清和脾臟勻漿樣本于室溫緩慢復(fù)融后,參照ELISA試劑盒說明書,檢測IL-1β、IL-6和TGF-β的表達(dá)變化。
2.1 METH對LPS誘導(dǎo)小鼠血清IL-1β、IL-6和TGF-β表達(dá)的影響 與S+S對照組相比,METH單獨(dú)作用(M+S)時對血清中IL-6的表達(dá)沒有影響,但使TGF-β的表達(dá)水平顯著下降(F=46.235;P<0.001);當(dāng)給予了LPS后,與S+L對照組相比,METH作用(M+L)顯著升高了小鼠血清中IL-6的含量(F=61.963;P<0.001),然而對TGF-β的表達(dá)水平?jīng)]有影響(圖1)。由于血清中IL-1β的表達(dá)量過低,結(jié)果未展示。
圖1 METH對LPS誘導(dǎo)小鼠血清IL-6和TGF-β表達(dá)的影響
Fig.1 Effects of METH injection on LPS-induced IL-6 and TGF-β expressions in the serum of mice
A:M+L組與S+L組相比,###P<0.001;B:M+S組與S+S組相比,***P<0.001;各組小鼠n=8。
2.2 METH對LPS誘導(dǎo)小鼠脾臟IL-1β、IL-6和TGF-β表達(dá)的影響 與S+S對照組相比,METH單獨(dú)作用(M+S)時對脾臟中IL-1β、IL-6和TGF-β細(xì)胞因子的表達(dá)沒有影響;然而,在LPS的作用下,與S+L對照組相比,METH作用(M+L)顯著升高了IL-6的含量(F=46.851;P<0.001),降低了小鼠脾臟中的TGF-β的含量(F=20.751;P<0.001),卻對IL-1β的表達(dá)沒有影響(圖2)。
圖2 METH對LPS誘導(dǎo)小鼠脾臟IL-1β、IL-6和TGF-β表達(dá)的影響
Fig.2 Effects of METH injection on LPS-induced IL-1β, IL-6 and TGF-β expressions in the spleen of mice
A:各組間比較無顯著性差異;B:M+L組與S+L組相比,###P<0.001;C:M+L組與S+L組相比,###P<0.001;各組小鼠n=8。
以往研究表明,METH在循環(huán)水平調(diào)控細(xì)胞因子的機(jī)制較為復(fù)雜[13,15,21],它是由多器官系統(tǒng)共同作用的結(jié)果。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果發(fā)現(xiàn),METH單獨(dú)作用時對血清中IL-6的表達(dá)沒有影響,但卻使TGF-β的含量顯著下降(P<0.001)。TGF-β是一種多功能性生長因子,它主要在炎癥調(diào)節(jié)、組織修復(fù)、腫瘤侵襲和神經(jīng)系統(tǒng)等方面發(fā)揮作用,并且參與調(diào)節(jié)細(xì)胞的生長、分化和免疫反應(yīng)[22-23]。因此在METH作用后,血清中TGF-β的含量下降,表明長期METH暴露可能損害組織損傷的修復(fù),給機(jī)體造成了負(fù)面影響。給予LPS刺激后,METH使小鼠血清中IL-6細(xì)胞因子的表達(dá)水平較單獨(dú)METH暴露后顯著升高(P<0.001),卻對TGF-β的表達(dá)沒有影響,表明METH對LPS誘導(dǎo)小鼠血清IL-6產(chǎn)生有明顯的促進(jìn)作用。IL-6作為前炎性細(xì)胞因子,在炎癥反應(yīng)過程中起著重要的作用,它能夠刺激參與免疫反應(yīng)的細(xì)胞增殖、分化并提高其功能。有研究表明,在炎癥、感染和患有某些腫瘤等情況下,血清中IL-6的含量會有不同程度上升[24]。因此,METH可能增強(qiáng)了LPS誘導(dǎo)對小鼠免疫系統(tǒng)的影響,且與IL-6相關(guān)。
脾臟是人體最大的外周免疫器官,也是對血源性抗原產(chǎn)生免疫應(yīng)答的主要場所。METH作用同時也會影響脾臟中免疫相關(guān)細(xì)胞與細(xì)胞因子的表達(dá)改變,進(jìn)一步引起炎性反應(yīng)與組織損傷。SAITO等[25]研究發(fā)現(xiàn),METH可以使脾臟的淋巴細(xì)胞,如白細(xì)胞和NK細(xì)胞活性減低。PEERZADA[26]的研究發(fā)現(xiàn),慢性遞增劑量METH處理后,脾臟中前炎性細(xì)胞因子,如IFN-γ、TNF-α、IL-6和IL-12的增多與持續(xù)的細(xì)胞炎性應(yīng)答和組織損傷有關(guān)。本研究對脾臟IL-1β、IL-6和TGF-β的檢測發(fā)現(xiàn),METH單獨(dú)作用時,對其細(xì)胞因子的影響沒有顯著性改變。然而在METH作用后再給予LPS時,IL-6的表達(dá)水平大幅度升高(P<0.001);同時,TGF-β的表達(dá)水平也明顯下降(P<0.001);而無論有無LPS的刺激,METH對脾臟中IL-1β的表達(dá)沒有影響。以上結(jié)果表明,當(dāng)機(jī)體沒有發(fā)生炎性反應(yīng)時,METH對脾臟的細(xì)胞因子沒有明顯的影響;一旦由于某種因素刺激機(jī)體產(chǎn)生炎性反應(yīng)后,長期的METH作用會加劇這種炎性反應(yīng),給機(jī)體造成進(jìn)一步的損傷。
越來越多的研究發(fā)現(xiàn),METH作用于機(jī)體產(chǎn)生炎性反應(yīng)的機(jī)制與中樞神經(jīng)系統(tǒng)密切相關(guān)[14-15]。METH增強(qiáng)了中樞炎性反應(yīng),伴隨著外周炎性細(xì)胞因子的增加;與此同時,外周的免疫刺激能夠激活大腦的膠質(zhì)細(xì)胞,其釋放的細(xì)胞因子和趨化因子在METH誘導(dǎo)的神經(jīng)損傷中起主要作用。LIU等[27]還發(fā)現(xiàn),METH和LPS在某種程度上可以協(xié)同作用,促進(jìn)細(xì)胞因子和趨化因子的產(chǎn)生,而NF-κB和MAPK信號通路在METH和LPS誘導(dǎo)產(chǎn)生細(xì)胞因子中發(fā)揮主要作用。這些研究進(jìn)一步支持了METH能促進(jìn)LPS誘導(dǎo)炎癥反應(yīng)的觀點(diǎn),提示METH作用和LPS誘導(dǎo)炎癥反應(yīng)的發(fā)生過程有共通的分子機(jī)制。
綜上所述,長期METH作用既可以增加炎性細(xì)胞因子的含量,也可以降低抗炎因子的含量,從而影響機(jī)體的免疫反應(yīng)。這些發(fā)現(xiàn)對我們以后進(jìn)一步研究METH濫用對機(jī)體免疫反應(yīng)影響的分子機(jī)制奠定了基礎(chǔ)。
[1] THOMAS J. Methylenedioxymethamphetamine (MDMA, `Ecstasy'): A stressor on the immune system[J]. Immunology, 2004, 111:357-367.
[2] ESTRADA AL. Epidemiology of HIV/AIDS, hepatitis B, hepatitis C, and tuberculosis among minority injection drug users[J]. Public Health Rep, 2002, 117 Suppl 1:S126-S134.
[3] FRIEDMAN H, NEWTON C, KLEIN TW. Microbial infections, immunomodulation, and drugs of abuse[J]. Clin Microbiol Rev, 2003, 16(2):209-219.
[4] YE L, PENG JS, WANG X, et al. Methamphetamine enhances hepatitis C virus replication in human hepatocytes[J]. J Viral Hepat, 2008, 15(4):261-270.
[5] BODDIGER D. Metamphetamine use linked to rising HIV transmission[J]. Lancet, 2005, 365 (9466):1217-1218.
[6] YU Q, ZHANG D, WALSTON M, et al. Chronic methamphetamine exposure alters immune function in normal and retrovirus-infected mice[J]. Int Immunopharmacol, 2002(2), 951-962.
[7] IN SW, Son EW, RHEE DK, et al. Methamphetamine administration produces immunomodulation in mice[J]. J Toxicol Env Heal, 2005, Part A, 68:2133-2145.
[8] WEY S, WU H, CHANG F, et al. Methamphetamine and diazepam suppress antigen-specific cytokine expression and antibody production in ovalbumin-sensitized BALB/c mice[J]. Toxicol Lett, 2008, 181(3):157-162.
[9] POTULA R, HAWKINS BJ, CENNA JM, et al. Methamphetamine causes mitrochondrial oxidative damage in human T lymphocytes leading to functional impairment[J]. J Immunol, 2010, 185(5):2867-2876.
[10] ZSOLT T, JOSE M, DANIELLE J, et al. Methamphetamine inhibits antigen processing, presentation, and phagocytosis[J]. PLoS Pathog, 2008, 4(2):e28.
[11] In SW, Son EW, Rhee DK, et al. Modulation of murine macrophage function by methamphetamine[J]. J Toxicol Env Heal, 2004, Part A, 67:1923-1937.
[12] GILLES JR, W. BROOKS G, et al. Disposition of methamphetamine and its metabolite amphetamine in brain and other tissues in rats after intravenous administration[J]. J Pharmacol Exp Ther, 2000, 292(3):1042-1047.
[13] LOFTIS JM, CHOI D, HOFFMAN W, et al. Methamphetamine causes persistent immune dysregulation: A cross-species, translational report[J]. Neurotox Res, 2011, 20(1):59-68.
[14] BUCHANAN JB, SPARKMAN NL, JOHNSON RW. Methamphetamine sensitization attenuates the febrile and neuroinflammatory response to a subsequent peripheral immune stimulus[J]. Brain Behav Immun, 2010, 24(3):502-511.
[15] BUCHANAN JB, SPARKMAN NL, JOHNSON RW. A neurotoxic regimen of methamphetamine exacerbates the febrile and neuroinflammatory response to a subsequent peripheral immune stimulus[J]. J Neuroinflammation, 2010, 7:82.
[16] Tipton DA, LEGAN ZT, DABBOUS MK. Methamphetamine cytotoxicity and effect on LPS-stimulated IL-1βproduction by human monocytes[J]. Toxicol in Vitro, 2010, 24(3):921-927.
[17] 孟改利,任會勛,吳鋒,等. 甲基苯丙胺急性處理對小鼠脾臟細(xì)胞因子的影響[J]. 西安交通大學(xué)學(xué)報(bào)(醫(yī)學(xué)版), 2012(1):35-38.
[18] XUE L, GENG Y, LI M, et al. The effects of D3R on TLR4 signaling involved in the regulation of METH-mediated mast cells activation[J]. Int Immunopharmacol, 2016, 36:187-198.
[19] ITZHAK Y, ERGUII, YOUNG JI. Long-term parental methamphetamine exposure of mice influences behavior and hippocampal DNA methylation of the offspring[J]. Mol Psychiatr, 2014, 1-11.
[20] NORDEND M, TROIANOWSKI PJ, VILLANUEVA E, et al. Sequential activation of microglia and astrocyte cytokine expression precedes increased iba-1 or GFAP immunoreactivity following systemic immune challenge[J]. Glia, 2016, 64(2):300-316.
[21] VALENCIA F, BUBAR MJ, MILLIGAN G, et al. Influence of methamphetamine on genital herpes simplex virus type 2 infection in a mouse model[J]. Sex Transm Dis, 2012, 720-725.
[22] 劉镕,趙琴平,董惠芬,等. TGF-β信號傳導(dǎo)通路及其生物學(xué)功能[J]. 中國病原生物學(xué)雜志,2014, 9(1):77-83.
[23] 孫鳳丹,張金子,崔演,等. TGF-β1/Smads信號通路相關(guān)蛋白在乳腺癌組織中的表達(dá)及其臨床意義[J]. 吉林大學(xué)學(xué)報(bào)(醫(yī)學(xué)版), 2012, 38(1):93-97.
[24] 林麗艷,張慧云,何韶衡. IL-6及其受體與炎癥性疾病關(guān)系的新進(jìn)展[J]. 中國熱帶醫(yī)學(xué), 2008, 8(4):680-682.
[25] SAITO M, TERADA M, KAWATA T, et al. Effects of single or repeated administrations of methamphetamine on immune response in mice[J]. Exp Anim, 2008, 57(1):35-43.
[26] PEERZADA H, GANDHI JA, GUIMARAES AJ, et al. Methamphetamine administration modifies leukocyte proliferation and cytokine production in murine tissues[J]. Immunobiology, 2013, 218(8):1063-1068.
[27] XUN L, PETER S. SILVERSTEIN, VIJETA S, et al. Methamphetamine increases LPS-mediated expression of IL-8, TNF-α and IL-1β in human macrophages through common signaling pathways[J]. PLoS One, 2012, 7(3):1-8.