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    響應(yīng)面法優(yōu)化生姜蛋白酶活性測(cè)定方法

    2018-02-01 08:48:45侯嬰惠張秀娟王帥唐曉珍
    食品研究與開發(fā) 2018年3期
    關(guān)鍵詞:底物緩沖液生姜

    侯嬰惠,張秀娟,王帥,唐曉珍,*

    (1.山東農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院,山東泰安271000;2.濟(jì)寧學(xué)院,山東曲阜273100)

    酶作為一種生物催化劑,能夠通過降低從底物到產(chǎn)物的反應(yīng)活化能,在溫和環(huán)境條件下提高反應(yīng)速度[1-2],因?yàn)槊妇哂写呋咝?、底物專一性等?yōu)勢(shì),使其在食品、工業(yè)、醫(yī)藥、分子生物學(xué)等領(lǐng)域具有越來越廣泛的應(yīng)用[3-4]。目前在食品工業(yè)中開發(fā)利用的植物蛋白酶主要有木瓜蛋白酶[5]、菠蘿蛋白酶[6-8]、無花果蛋白酶[9-11]以及相對(duì)研究較晚較弱的生姜蛋白酶[12-13]等,這些植物蛋白酶結(jié)構(gòu)與性質(zhì)均相似。生姜酶活測(cè)定常參照木瓜蛋白酶活性測(cè)定標(biāo)準(zhǔn),但實(shí)際試驗(yàn)中因生姜蛋白酶與木瓜蛋白酶并非完全相同,具體反應(yīng)溫度、時(shí)間等條件尚不統(tǒng)一,不能完全參照木瓜蛋白酶標(biāo)準(zhǔn)進(jìn)行測(cè)定[14]。近年來關(guān)于生姜蛋白酶的研究雖多有報(bào)道,但生姜酶活性具體測(cè)定條件尚未統(tǒng)一。宋琦等[13]以酪蛋白為底物,單位時(shí)間內(nèi)以生姜蛋白酶分解酪蛋白的生成物的量來表示酶活大小,此過程以需要加三氯乙酸等強(qiáng)酸終止反應(yīng);周慧等[15]采用考馬斯亮藍(lán)法測(cè)定單位時(shí)間內(nèi)生姜蛋白酶分解酪蛋白后溶液殘留蛋白,以此為指標(biāo)確定酶活大小,但此方法受溶液中雜質(zhì)影響較大,所測(cè)結(jié)果真實(shí)性有待考究;于潔等[16]以加熱生姜蛋白酶失活后樣液為對(duì)照,以考馬斯亮藍(lán)法直接測(cè)出蛋白酶活性,但具體工藝條件有待篩選。因此建立快速、準(zhǔn)確的生姜酶活測(cè)定方法非常重要。介于響應(yīng)面試驗(yàn)[17-19]周期短,回歸方程精確度高,能研究多因素間交互作用等優(yōu)點(diǎn)[20-23],本試驗(yàn)以生姜蛋白酶活性為指標(biāo),通過單因素試驗(yàn),篩選出主要影響因素,再進(jìn)行響應(yīng)面試驗(yàn)設(shè)計(jì),從而優(yōu)化了生姜蛋白酶活性測(cè)定工藝條件,為后續(xù)姜酶提取、純化提供基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 試驗(yàn)材料

    生姜蛋白酶:實(shí)驗(yàn)室提?。桓衫宜?、三氯乙酸:天津市博迪化工有限公司;半胱氨酸、BSA(牛血清白蛋白):北京索萊寶有限公司;考馬斯亮藍(lán)G-250:天津市凱通化學(xué)試劑有限公司提供;其他試劑均為實(shí)驗(yàn)室常規(guī)試劑。

    1.2 試驗(yàn)儀器

    UV-5500型紫外可見分光光度計(jì):上海元析儀器有限公司;數(shù)顯恒溫水浴鍋HH-4:上海梅香儀器有限公司;離心機(jī)TDL-40B:上海安亭科學(xué)儀器廠。

    1.3 試驗(yàn)方法

    1.3.1 生姜蛋白酶的制備

    生姜洗凈切碎,稱取200 g,按1∶3(g/mL)料液比打漿,低溫(4℃)靜置2 h,離心取沉淀用磷酸緩沖液1 ∶4(g/mL)復(fù)溶,低速攪拌 15 min后再靜置 3 h,用四層紗布過濾后離心取上清液,加95%的乙醇至醇體積為60%,冰浴7 h離心取沉淀[24]。

    1.3.2 蛋白質(zhì)含量的測(cè)定

    本試驗(yàn)采用考馬斯亮藍(lán)法測(cè)蛋白質(zhì)含量[25]。標(biāo)準(zhǔn)曲線為:y=0.019 3x-0.018 7,R2=0.999 4,式中:x 為蛋白質(zhì)濃度,μg/mL;y為吸光度值。

    1.3.3 生姜蛋白酶酶活力測(cè)定

    生姜蛋白酶酶活測(cè)定條件:40℃水浴條件下,酶促反應(yīng)15 min降解酪蛋白產(chǎn)生TCA可溶的多肽增加量,以滅活的生姜蛋白酶為對(duì)照[22],根據(jù)酪氨酸標(biāo)準(zhǔn)曲線,測(cè)得樣品中酶活力大小。酶活力標(biāo)準(zhǔn)曲線為:y=774.11x-8.590 1,R2=0.999,式中:x 為樣品吸光度;y 為酶活力,U。

    1.3.4 生姜蛋白酶酶活測(cè)定單因素試驗(yàn)

    生姜蛋白酶活性測(cè)定各單因素梯度設(shè)置:反應(yīng)溫度 20、30、40、50、60、70℃;反應(yīng)時(shí)間 1、3、5、7、9、11 min;酪蛋白底物濃度0.3%、0.6%、0.9%、1.2%、1.5%、1.8%;磷酸鹽緩沖液 pH5、5.5、6、6.5、7、7.5。

    1.3.5 響應(yīng)面法優(yōu)化提取條件

    在單因素的基礎(chǔ)上采用Design-Expert 8.0.6軟件進(jìn)行四因素三水平試驗(yàn)設(shè)計(jì),以生姜蛋白酶酶活為響應(yīng)值進(jìn)行回歸分析,建立二次回歸模型,擬合得到二次回歸方程。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 單因素試驗(yàn)

    2.1.1 反應(yīng)溫度對(duì)酶活性測(cè)定的影響

    反應(yīng)溫度對(duì)生姜蛋白酶活性測(cè)定的影響見圖1。

    圖1 反應(yīng)溫度對(duì)生姜蛋白酶活性測(cè)定的影響Fig.1 Effect of reaction temperature on the activity of Ginger protease

    控制酶活測(cè)定時(shí)間5 min,酪蛋白濃度0.6%,緩沖液pH6.5,考察溫度在20℃~80℃時(shí)酶活大小。在一定溫度下酶具有最大活性,此溫度稱為酶的最適溫度[8]。由圖1可知,隨著溫度的升高酶活增大,在溫度為40℃時(shí)酶活測(cè)定值最大。當(dāng)溫度大于40℃時(shí),隨著溫度升高酶活性逐漸降低趨于0,此時(shí)酶已失活變性[13]。所以,選擇反應(yīng)溫度為40℃。

    2.1.2 反應(yīng)時(shí)間對(duì)酶活性測(cè)定的影響

    反應(yīng)時(shí)間對(duì)生姜蛋白酶活性測(cè)定的影響見圖2。

    圖2 反應(yīng)時(shí)間對(duì)生姜蛋白酶活性測(cè)定的影響Fig.2 Effect of reaction time on the activity of Ginger protease

    控制酶活測(cè)定反應(yīng)溫度40℃,酪蛋白濃度0.6%,緩沖液pH6.5,考察反應(yīng)時(shí)間在1 min~11 min時(shí)酶活大小。由圖2可知,隨著反應(yīng)時(shí)間的延長(zhǎng),酶活先增大后降低,反應(yīng)時(shí)間5 min時(shí)酶活測(cè)定值最大。隨著反應(yīng)時(shí)間繼續(xù)增大,酶活緩慢降低,是因?yàn)? min時(shí)酶已充分參與反應(yīng),隨著時(shí)間的增大,酶在40℃的水浴條件下逐漸失活。所以,選擇反應(yīng)時(shí)間為5 min。

    2.1.3 底物濃度對(duì)酶活性測(cè)定的影響

    底物濃度對(duì)生姜蛋白酶活性測(cè)定的影響見圖3。

    圖3 底物濃度對(duì)生姜蛋白酶活性測(cè)定的影響Fig.3 Effect of substrate concentration on the activity of Ginger protease

    控制酶活測(cè)定反應(yīng)溫度40℃,反應(yīng)時(shí)間5 min,緩沖液pH6.5,考察酪蛋白底物濃度在0.3%~1.8%時(shí)酶活大小。由圖3可知,在反應(yīng)溫度、緩沖液pH值適宜的條件下,酶促反應(yīng)隨底物濃度的增大迅速增大,當(dāng)?shù)孜餄舛却笥?.9%時(shí),底物濃度繼續(xù)增大,酶活性中心分子逐漸被飽和,反應(yīng)速度的增加率將會(huì)減少[26]。所以,選擇酪蛋白濃度為0.9%。

    2.1.4 緩沖液pH值對(duì)酶活性測(cè)定的影響

    緩沖液pH值對(duì)生姜蛋白酶活性測(cè)定的影響見圖4。

    圖4 緩沖液pH值對(duì)生姜蛋白酶活性測(cè)定的影響Fig.4 Effect of buffer pH on the activity of Ginger protease

    控制酶活測(cè)定反應(yīng)溫度40℃,反應(yīng)時(shí)間5 min,酪蛋白濃度0.9%,考察緩沖液pH值在5~7.5時(shí)酶活大小。由圖4可知,隨著緩沖液pH值的增大,酶活先增大后降低。pH值之所以影響酶的活性是因?yàn)榫彌_液pH值改變了酶活性部位相關(guān)的基團(tuán)的解離狀態(tài)[13],當(dāng)緩沖液pH6.5時(shí)酶活最大,此時(shí)酶分子上活性基團(tuán)的解離狀態(tài)最適于酶與底物結(jié)合;當(dāng)pH值大于7.5時(shí)酶活性突然降低,其原因?yàn)檫^堿使蛋白質(zhì)中的氫鍵、化學(xué)鍵斷裂或與游離的氨基或羧基形成鹽,從而使蛋白質(zhì)變性[16]。所以,選擇緩沖液為pH6.5。

    2.2 響應(yīng)面法分析

    2.2.1 響應(yīng)面優(yōu)化生姜蛋白酶酶活測(cè)定條件

    根據(jù)單因素試驗(yàn)結(jié)果篩選出反應(yīng)時(shí)間、反應(yīng)溫度、底物濃度、緩沖液pH值作為優(yōu)化條件,應(yīng)用Design-Expert 8.0.6軟件設(shè)計(jì)四因素三水平的響應(yīng)面試驗(yàn),利用響應(yīng)面試驗(yàn)結(jié)果確定生姜蛋白酶酶活測(cè)定最佳方案。響應(yīng)面試驗(yàn)因素水平表如表1,試驗(yàn)結(jié)果如表2所示。

    表1 因素水平表編碼表Table 1 Factors and levels in central composite design

    表2 響應(yīng)面分析方案與試驗(yàn)結(jié)果Table 2 Experimental scheme and results of central composite design

    根據(jù)表1設(shè)定的水平和因素,以A(反應(yīng)時(shí)間)、B(反應(yīng)溫度)、C(底物濃度)、D(緩沖液pH值)為自變量,酶活(Y)為響應(yīng)值,按表2實(shí)施30次試驗(yàn),并測(cè)得各條件下的酶活。所得回歸方程為:

    酶活=-2 444.190 99+84.668 55A-2.676 57B+482.823 24C+665.213 34D-0.223 58AB+1.657 38AC-7.544 74AD+0.433 75BC+3.032 71BD-13.271 33CD-3.427 20A2-0.188 38B2-221.162 64C2-56.497 05D2

    式中:Y 為酶活預(yù)測(cè)值;A、B、C、D 為上述 4個(gè)自變量的編碼值。

    2.2.2 方差分析及顯著性檢驗(yàn)

    利用Design-Expert 8.0.6軟件對(duì)表2試驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行多元回歸擬合,進(jìn)行顯著性檢驗(yàn)。得到的回歸方程的顯著性檢驗(yàn)及方差分析結(jié)果見表3。

    表3 回歸模型方差分析Table 3 Variance analysis of the regression equation for the yield of xylan

    P值的大小表明模型及各考察因素的顯著水平。P值小于0.05,表明模型或各因素有顯著影響;P值小于0.01,表明模型或各因素高度顯著。從表3可知,以酶活為響應(yīng)值時(shí),模型P<0.010 0,表明該二次方程模型極顯著。同時(shí)失擬項(xiàng)P=0.133 1>0.100 0,表示正交試驗(yàn)結(jié)果和數(shù)學(xué)模型擬合良好,即可用該數(shù)學(xué)模型推測(cè)試驗(yàn)結(jié)果。由表3還可以看出,4個(gè)因素中A、B、C影響極顯著,AD、BD、A2、B2、C2、D2影響極顯著,D、AB、AC、BC、CD、影響差異不顯著,其結(jié)果表明在酶活測(cè)定時(shí),反應(yīng)時(shí)間、溫度、底物濃度均對(duì)測(cè)定結(jié)果有較大影響。雖然過酸或過堿性條件可使蛋白變性,但在響應(yīng)面試驗(yàn)過程中溶液緩沖液pH值均在7左右,因此測(cè)定結(jié)果表明D緩沖液pH對(duì)酶活測(cè)定影響不顯著。

    2.2.3 響應(yīng)面分析及酶活測(cè)定工藝優(yōu)化

    響應(yīng)面交互作用分析與優(yōu)化通過Design Expert8.0.6軟件對(duì)各因素之間的交互作用進(jìn)行響應(yīng)面分析,繪制響應(yīng)面曲線圖。圖5分別顯示6組以酶活為響應(yīng)值的趨勢(shì)圖。從其等高線圖可直觀反映出2個(gè)變量間交互作用的顯著程度,其中圓形表示兩因素交互作用不顯著,而橢圓形表示兩因素交互作用顯著。

    由圖5響應(yīng)面立體圖和等高線圖形可知:反應(yīng)時(shí)間、反應(yīng)溫度、底物濃度、反應(yīng)時(shí)間和緩沖液pH值、反應(yīng)溫度和緩沖液pH值交互作用對(duì)酶活測(cè)定影響均顯著;圖5D、5F中等高線圖形趨于圓形,反應(yīng)溫度和底物濃度、底物濃度和緩沖液pH值交互作用不顯著。

    圖5E(a)響應(yīng)面隨著pH值的增大酶活先增大后降低,變化幅度較??;隨溫度的增大酶活先增大后降低且變化幅度較大。這主要是由于較高或較低的pH值使蛋白質(zhì)氫鍵斷裂引起酶變性失活;適當(dāng)提高酶活測(cè)定溫度可提高酶催化活性,當(dāng)溫度高于酶活反應(yīng)最佳溫度時(shí),測(cè)定溫度越大酶易變性失活[13]。因此酶活測(cè)定時(shí)要選擇合適的緩沖液pH值及測(cè)定溫度。

    圖5 兩因素交互作用對(duì)生姜蛋白酶活測(cè)定的等高線和響應(yīng)面Fig.5 Response surface and contour plots showing two factors effects on the activity of Ginger protease

    由各響應(yīng)面立體圖可看出,響應(yīng)值存在最大值。通過軟件分析計(jì)算得出理論最佳提取工藝:反應(yīng)時(shí)間3.6 min,反應(yīng)溫度46.45℃,底物濃度0.95%,緩沖液pH6.78,其預(yù)測(cè)值為130.46 U。為檢驗(yàn)響應(yīng)面優(yōu)化結(jié)果的可靠性,采用上述條件測(cè)定酶活為133.15 U,表明該試驗(yàn)值與預(yù)測(cè)值吻合良好。

    3 結(jié)論

    采用Design-Expert 8.0.6軟件的中心組合設(shè)計(jì)方法設(shè)計(jì)響應(yīng)面試驗(yàn),建立數(shù)學(xué)模型。方差分析結(jié)果表明反應(yīng)溫度和時(shí)間、反應(yīng)溫度和底物濃度、反應(yīng)溫度和緩沖液pH值、反應(yīng)時(shí)間和底物濃度的交互作用對(duì)酶活測(cè)定影響均顯著,反應(yīng)時(shí)間和緩沖液pH、底物濃度和緩沖液pH交互作用不顯著。通過軟件分析得出生姜蛋白酶活性測(cè)定最佳條件:反應(yīng)時(shí)間3.6 min,反應(yīng)溫度46.44℃,底物濃度0.95%,緩沖液pH6.78,此條件下生姜蛋白酶活130.46 U,驗(yàn)證試驗(yàn)測(cè)得生姜蛋白酶活性為133.15 U,與預(yù)測(cè)值吻合。

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    2種緩沖液對(duì)血清蛋白醋酸纖維膜電泳效果對(duì)比研究
    含兩性離子緩沖液的組合物及其在電分析裝置和方法中的用途
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