朱玉東,汪銘書,3,程安春,3*,朱德康,3,賈仁勇,3,劉馬峰,3,陳 舜,3,趙新新,3,楊 喬,3,吳 英,3,陳孝躍
(1.四川農(nóng)業(yè)大學(xué) 預(yù)防獸醫(yī)研究所,成都 611130; 2.四川農(nóng)業(yè)大學(xué) 動(dòng)物疫病與人類健康四川省重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,成都 611130;3.四川農(nóng)業(yè)大學(xué) 動(dòng)物醫(yī)學(xué)院禽病防治研究中心,成都 611130)
鴨甲肝病毒(duck hepatitis A virus,DHAV)是引起鴨病毒性肝炎(duck viral hepatitis)的病原之一,主要感染4周以內(nèi)雛鴨,死亡雛鴨表現(xiàn)為肝腫脹、出血等特點(diǎn)。目前,DHAV劃分為3個(gè)基因型[1]:DHAV-1在世界范圍內(nèi)分布,DHAV-2主要發(fā)生于我國臺(tái)灣地區(qū)[2],DHAV-3分布在我國大陸地區(qū)[3-5]、韓國[6-7]和越南[8]。近年來,DHAV-3的流行呈現(xiàn)擴(kuò)展趨勢(shì)[8-15],給鴨養(yǎng)殖業(yè)帶來巨大威脅。
DHAV-3感染發(fā)病雛鴨很難通過臨床癥狀和剖檢變化與DHAV-1感染發(fā)病雛鴨進(jìn)行區(qū)分,但可通過血清學(xué)和分子生物學(xué)方法進(jìn)行鑒別診斷。目前已建立多種可鑒別DHAV-1和DHAV-3的RT/rRT-PCR和免疫組化的方法并廣泛應(yīng)用到DHAV增殖規(guī)律的研究中[15-19]。DHAV在雛鴨體內(nèi)增殖除由病毒自身特性決定外,還受初始感染劑量[18]、感染途徑[20]、雛鴨日齡[21]、雛鴨種系[22]等多種因素影響。DHAV在雛鴨體內(nèi)具有廣泛的組織嗜性,但各組織病毒含量不同。普遍認(rèn)為肝是DHAV增殖的最佳靶器官,其致病機(jī)制尚不清楚。張煥榮等[16]認(rèn)為DHAV-1弱毒進(jìn)入雛鴨肝后,可誘導(dǎo)多種細(xì)胞因子表達(dá)量上調(diào),而其中干擾素(主要是IFN-α)轉(zhuǎn)錄水平的升高抑制了病毒增殖。C. Q. Gu等[23]研究表明DHAV-1 JX株感染24 h后病毒維持高水平,肝中細(xì)胞因子(TNF-α、IFN-α、IL-6、IL-10)表達(dá)量受到明顯抑制。而C. P. Song等[24]檢測(cè)結(jié)果表明DHAV-1強(qiáng)毒和弱毒均能誘導(dǎo)肝中多種細(xì)胞因子表達(dá)量上調(diào),但上調(diào)程度不同,強(qiáng)毒誘導(dǎo)IFN-γ和IL-2的表達(dá)量上調(diào)更明顯。目前尚未見DHAV-3在肝中致病機(jī)制的研究報(bào)道。本研究建立DHAV-3強(qiáng)毒人工感染7日齡雛鴨模型,并對(duì)病毒在雛鴨體內(nèi)動(dòng)態(tài)分布及誘導(dǎo)肝組織病變和細(xì)胞因子(IFN-α/β/γ和IL-1β/2/6)表達(dá)的關(guān)聯(lián)性進(jìn)行分析,以期為DHAV-3致病機(jī)制的研究奠定基礎(chǔ)。
DHAV-3 QL株,由四川農(nóng)業(yè)大學(xué)禽病中心分離鑒定并保存,對(duì)4日齡雛鴨的LD50=10-4.13·0.2 mL-1;1日齡北京鴨,購自四川農(nóng)業(yè)大學(xué)家禽養(yǎng)殖場(chǎng),隔離飼養(yǎng)至7日齡,參照Q. Hu等[5]和S. Mao等[25]方法檢測(cè)DHAV及母源抗體含量均為陰性。
CFX ConnectTMOptics Module Real-Time PCR System(Bio-Rad);RNAiso Plus (No.: 9109) 、One Step PrimeScriptTMRT-PCR Kit(No.: RR064A)、PrimeScriptTMRT Kit(No.:RR047)購自TaKaRa;DHAV-3型引物和探針[5]由上?;瞪锛夹g(shù)有限公司合成;6種細(xì)胞因子(IFN-α、β、γ和IL-1β、2、6)及內(nèi)參GAPDH基因引物[26]由英濰捷基公司合成。
77只7日齡雛鴨隨機(jī)分為試驗(yàn)組(50只)和對(duì)照組(27只),試驗(yàn)組雛鴨腿部肌肉注射DHAV-3病毒 6×107.99copies·只-1(2 000 LD50),對(duì)照組腿部肌肉注射生理鹽水(0.75%)0.5 mL·只-1。接毒后觀察雛鴨臨床發(fā)病和死亡情況,并于感染后1、3、6、9、12、24、48、72和96 h,在試驗(yàn)組(出現(xiàn)臨床癥狀后,選擇發(fā)病癥狀典型的雛鴨)和對(duì)照組中各采集3只雛鴨的血液、肝、脾、肺、腎、胰、法氏囊、胸腺、大腦、哈德氏腺和十二指腸,死亡雛鴨采集肝,置于-80 ℃保存?zhèn)溆?,未死亡雛鴨取部分肝組織固定于4%多聚甲醛中備用。
根據(jù)RNAiso Plus操作說明書,提取樣品中總RNA,利用一步法TaqMan探針實(shí)時(shí)熒光定量RT-PCR方法[5]檢測(cè)DHAV-3含量。檢測(cè)結(jié)果用Graphpad prism 6中獨(dú)立樣本t檢驗(yàn)方法分析并作圖。
對(duì)“1.3”保存的肝組織樣品切片進(jìn)行HE染色,光學(xué)顯微鏡觀察,用Adobe photoshop CS 6作圖對(duì)比。參照2-ΔΔCt相對(duì)定量方法[27]在轉(zhuǎn)錄水平檢測(cè)肝中抗病毒細(xì)胞因子IFN-α、IFN-β和IFN-γ及促炎因子IL-1β、IL-2和IL-6,檢測(cè)結(jié)果用Graphpad prism 6分析并作圖。
雛鴨于感染18 h后開始出現(xiàn)癥狀,大部分雛鴨精神沉郁、扎堆,采食、飲水量明顯減少;感染24 h后開始出現(xiàn)死亡,24 h死亡6只雛鴨,30 h死亡2只,48 h死亡2只,54 h死亡1只。剖檢發(fā)病死亡雛鴨,可見肝腫大,表面分布有大量出血點(diǎn)或出血斑,質(zhì)地變脆;脾充血呈鈍圓形;腎有明顯出血現(xiàn)象;胸腺也有出血點(diǎn)。對(duì)照組雛鴨精神、采食和飲水正常,剖檢未發(fā)現(xiàn)病變。
用于單獨(dú)觀測(cè)DHAV-3致死率的雛鴨,共死亡4只(死亡率40%),24 h死亡2只,38 h死亡1只,60 h死亡1只。雛鴨生存曲線如圖1。
圖1 致病性DHAV-3感染7日齡雛鴨的生存曲線Fig.1 Survival curves of 7-day-old ducklings after infected with virulent strain of DHAV-3
DHAV-3感染7日齡雛鴨后,1 h即在所有組織器官中檢測(cè)到。但在各組織器官中含量不同,肝病毒含量最高(為106.34copies·g-1),其次是脾、腎和血液中病毒含量,分別為105.56、105.03和105.04copies·mL-1,其余器官病毒含量均在105copies·g-1以下(圖2)。隨時(shí)間推移,所有組織和器官中病毒含量均逐漸上升,血液和胰分別于感染后12和96 h含量最高,其余組織均于24~48 h達(dá)到峰值,隨后病毒含量下降。其中,肝、脾和腎中各時(shí)間點(diǎn)DHAV-3含量明顯高于其他組織器官,感染后24 h達(dá)到峰值,分別為1011.15、1010.37和1010.30copies·g-1,48~96 h病毒含量緩慢下降(圖2A)。DHAV-3在除脾外其他免疫器官(胸腺、法氏囊、哈德氏腺)中增殖規(guī)律存在差異,胸腺中各時(shí)間點(diǎn)病毒含量高于法氏囊和哈德氏腺,而法氏囊峰值時(shí)間在感染后24 h早于胸腺和哈德氏腺峰值時(shí)間48 h(圖2B)。DHAV-3在血液組織和胰中增殖規(guī)律與其他器官不同,感染12 h后血液中病毒含量即達(dá)到峰值,為108.80copies·mL-1, 12~96 h病毒含量下降,96 h下降至105.69copies·mL-1。DHAV-3在胰中含量持續(xù)增加,感染96 h后最高,為108.33copies·g-1(圖2D)。DHAV-3在其他器官(肺、大腦、十二指腸)中增殖均在感染后24 h達(dá)到峰值,除9和12 h外各時(shí)間點(diǎn)病毒含量,十二指腸高于肺和大腦。大腦中病毒含量最低,峰值含量僅為107.66copies·g-1,感染96 h后下降至105.60copies·g-1(圖2C)。
2.3.1 DHAV-3在肝中增殖速度 比較相鄰時(shí)間點(diǎn)肝中DHAV-3病毒含量,分析其含量變化及顯著性差異,以研究病毒的增殖速度。結(jié)果表明,感染1~3 h肝中病毒增殖速度最快,3 h病毒含量較1 h時(shí)有極顯著差異(P<0.01),而在9~12 h和12~24 h有顯著性差異(P<0.05)(圖3)。感染死亡雛鴨的肝病毒含量最高為1012.01copies·g-1,最低1011.05copies·g-1,平均含量為1011.47±0.37copies·g-1。
A.DHAV-3在肝、脾和腎增殖;B. DHAV-3在胸腺、法氏囊和哈德氏腺中增殖;C. DHAV-3在肺、大腦和十二指腸中增殖;D. DHAV-3在血液和胰中增殖 A. DHAV-3 proliferates in the liver, spleen and kidneys; B. DHAV-3 proliferates in thymus, bursa of Fabricius and Harderian gland; C. DHAV-3 proliferates in the lung, brain and duodenum; D. DHAV-3 proliferates in blood and pancreas圖2 DHAV-3在各組織器官中動(dòng)態(tài)分布Fig.2 Distribution of DHAV-3 in different tissues and organs
*. P<0.05; **. P<0.01圖3 感染后不同時(shí)間點(diǎn)肝中DHAV-3載量Fig.3 Viral load of DHAV-3 in the liver at different time points after infection
2.3.2 肝組織病理學(xué)變化 通過光學(xué)顯微鏡觀察DHAV-3感染雛鴨各時(shí)間點(diǎn)的肝病理組織學(xué)變化,結(jié)果顯示:感染1 h,局部肝組織毛細(xì)血管充血,肝細(xì)胞輕微腫脹(圖4A,箭頭所示);感染3 h,肝細(xì)胞呈空泡變性,細(xì)胞質(zhì)內(nèi)出現(xiàn)大小不一的空泡(圖4b,箭頭所示);感染6 h,肝細(xì)胞腫脹明顯,空泡變性加重,變性的肝細(xì)胞數(shù)目增多(圖4c,箭頭所示);感染9 h,肝細(xì)胞呈嚴(yán)重空泡變性,肝組織呈網(wǎng)狀,細(xì)胞核懸于中央或被擠于一側(cè)(圖4 D和d,箭頭所示);感染12 h,中央靜脈周圍肝細(xì)胞仍以空泡變性為主,并伴有少量炎性細(xì)胞浸潤(圖4e,箭頭所示);感染24~48 h,肝中央靜脈及匯管區(qū)周圍肝細(xì)胞大多呈壞死性變化,細(xì)胞核固縮消失,細(xì)胞質(zhì)碎裂呈碎片狀或消失形成空泡,周圍伴有大量易嗜性粒細(xì)胞浸潤(圖4f、g,箭頭所示);感染72~96 h,匯管區(qū)膽管上皮細(xì)胞呈明顯增生性變化,周圍肝細(xì)胞多呈空泡性變化并伴有少量黃染的枯否細(xì)胞。對(duì)照組未觀察到病變。
染料法實(shí)時(shí)熒光定量RT-PCR檢測(cè)肝中干擾素及促炎性因子IL-1β、IL-2和IL-6各時(shí)間點(diǎn)含量變化,結(jié)果顯示,抗病毒細(xì)胞因子(IFN-α、IFN-β、IFN-γ)的DHAV-3感染后表達(dá)量逐漸升高,在感染48 h后達(dá)到峰值,上調(diào)倍數(shù)分別為30.60、27.31和19.15倍,72~96 h上調(diào)倍數(shù)下降。促炎因子(IL-1β、IL-2、IL-6)在感染前期(1~9 h)變化不明顯,感染12 h后顯著增高,24 h后達(dá)峰值,感染48~96 h逐漸下降。其中IL-1β峰值出現(xiàn)在感染后12 h,早于IL-2和IL-6(24 h),但I(xiàn)L-2表達(dá)量上調(diào)最高,達(dá)1 448.25倍,高于IL-6和IL-1β的上調(diào)倍數(shù)分別為132.51和59.3倍(圖5)。
圖5 感染雛鴨肝細(xì)胞因子mRNA轉(zhuǎn)錄水平Fig.5 Transcription level of cytokine mRNAs in liver of infected ducklings
生產(chǎn)實(shí)踐中,往往使用疫苗免疫種鴨,通過母源抗體而使雛鴨獲得被動(dòng)的保護(hù),但母源抗體在7日齡后常常下降到較低水平[28-29],而使7日齡雛鴨感染DHAV后發(fā)病。雛鴨日齡對(duì)DHAV的致病性具有重要影響[23,30-31],如蘇敬良等[3]報(bào)道DHAV-3(G株)感染2日齡雛鴨的死亡率為80%,感染7日齡雛鴨的死亡率為40%,而感染13日齡的雛鴨則不致死;本研究結(jié)果相似。DHAV-3 (QL株)在4日齡雛鴨上測(cè)得LD50=10-4.13·0.2 mL-1,而以2 000 LD50劑量的DHAV-3強(qiáng)毒感染7日齡雛鴨的致死率為40%(圖1)。目前針對(duì)DHAV-3的研究所建立的人工感染雛鴨病理模型很多,但主要集中在4日齡以內(nèi)[15-19],因此,本研究建立DHAV-3人工感染7日齡雛鴨的疾病模型,測(cè)定病毒在其體內(nèi)分布規(guī)律、對(duì)肝組織病理學(xué)損傷、肝細(xì)胞因子含量變化等,分析病毒分布與病理損傷、抗病毒細(xì)胞因子、促炎性因子的關(guān)聯(lián)性,對(duì)進(jìn)一步闡明DHAV-3的致病機(jī)制具有重要意義。
熒光定量結(jié)果顯示,DHAV-3在不同組織中病毒含量不同。DHAV-3感染1 h即可在所有組織器官中檢測(cè)到。這與林少莉等[18]和Q. X. Huang等[15]檢測(cè)結(jié)果相似,表明DHAV-3有廣泛的組織嗜性。但本研究中病毒全身性分布的時(shí)間要早。原因可能是攻毒劑量、毒株毒力不同等造成[18]。本研究中攻毒劑量為2 000 LD50(6×107.02copies·只-1),攻毒1 h血液中病毒含量即達(dá)到105.04copies·mL-1。林少莉等攻毒劑量僅為20 ELD50,Q. X. Huang等攻毒劑量為4.73×104copies·只-1。本研究中DHAV-3在各組織中病毒含量隨感染時(shí)間逐漸升高,多數(shù)于24~48 h達(dá)峰值。這與DHAV的人工感染潛伏期一般為24 h結(jié)果一致。S. L. Lin等[14]檢測(cè)的200份臨床死亡雛鴨樣本中DHAV含量,結(jié)果表明DHAV-3感染死亡雛鴨的組織中,肝病毒含量最高(1010.42±0.71copies·g-1),其次為脾和腎。這與本研究中結(jié)果相符,肝中病毒含量大于脾和腎,含量均在1010copies·g-1以上。林少莉等[18]和Q. X. Huang等[15]檢測(cè)結(jié)果表明DHAV-3感染的雛鴨肝中峰值時(shí)含量低于108copies·g-1,本研究中DHAV-3感染死亡的雛鴨肝中,病毒含量高于未死亡雛鴨峰值含量,平均含量為1011.47±0.37copies·g-1,更接近S. L. Lin等[14]檢測(cè)結(jié)果。研究表明初始感染劑量越高組織中病毒含量越高。推測(cè)臨床上雛鴨感染DHAV-3的劑量與本研究中攻毒劑量相近。張煥榮等[16]檢測(cè)DHAV-3感染雛鴨的組織病理學(xué)和病毒分布,發(fā)現(xiàn)腎也是病毒侵染的重要器官之一。筆者試驗(yàn)中,腎剖檢病變(未發(fā)表資料)和病毒含量都證明這一結(jié)論。但朱方偉等[19]建立免疫組化的方法檢測(cè)DHAV-3在雛鴨組織內(nèi)分布時(shí),未在腎、心和腦中檢測(cè)到,這可能與檢測(cè)方法的敏感性有關(guān)。
肝損傷是病毒與宿主之間相互作用的結(jié)果。先天免疫是機(jī)體第一道防線,病毒入侵后,首先被固有免疫細(xì)胞(巨噬細(xì)胞、樹突狀細(xì)胞等)上的模式識(shí)別受體(PRRs)識(shí)別,進(jìn)而誘導(dǎo)產(chǎn)生干擾素及白介素等細(xì)胞因子。干擾素能通過激活信號(hào)通路途徑誘導(dǎo)一系列干擾素刺激基因(ISGs)的轉(zhuǎn)錄,在靶細(xì)胞內(nèi)建立抗病毒反應(yīng)體系或者通過激活效應(yīng)細(xì)胞和促進(jìn)獲得性免疫來調(diào)節(jié)免疫系統(tǒng)[32-33]。C.P. Song等[24]研究表明DHAV-1強(qiáng)毒和弱毒在雛鴨體內(nèi)可引發(fā)不同的先天免疫反應(yīng),強(qiáng)弱毒均能誘導(dǎo)IFN表達(dá)量上調(diào),強(qiáng)毒誘導(dǎo)IFN-γ更明顯,弱毒誘導(dǎo)IFN-α/β更強(qiáng)。本研究DHAV-3能夠誘導(dǎo)肝中Ⅰ型和Ⅱ型干擾素轉(zhuǎn)錄量上調(diào),感染12 h后隨病毒含量逐漸升高,48 h達(dá)到峰值,其后病毒含量下降而誘導(dǎo)減弱。這與C. Q. Gu等[23]研究結(jié)果不同,DHAV-1強(qiáng)毒在感染12 h后,干擾素α表達(dá)量受到明顯抑制,僅在24 h出現(xiàn)短暫上調(diào)。這可能與雛鴨日齡或固有免疫水平有關(guān)。C.P. Song等[20]研究表明3周齡雛鴨擁有更強(qiáng)的先天免疫水平,細(xì)胞因子表達(dá)水平也較1日齡雛鴨更高。X. M. Ou等[33]研究結(jié)果也表明DHAV-1強(qiáng)弱毒在成年鴨上均能夠引起干擾素表達(dá)量明顯上調(diào)(1 000倍以上)。促炎因子可由活化的巨噬細(xì)胞產(chǎn)生,刺激T細(xì)胞和B細(xì)胞增殖、觸發(fā)急性期反應(yīng)和活化血管內(nèi)皮細(xì)胞等,促進(jìn)炎癥反應(yīng),進(jìn)而清除病毒和修復(fù)受損的組織[34]。本研究中IL-2/6在感染12 h明顯上調(diào),并與肝病變嚴(yán)重程度呈正比。在感染24 h達(dá)到峰值,IL-2上調(diào)1 448倍,IL-6上調(diào)132倍,此時(shí)肝組織多呈壞死性變化,細(xì)胞核固縮消失,細(xì)胞質(zhì)碎裂呈碎片狀或消失形成空泡,周圍伴有大量易嗜性粒細(xì)胞浸潤。本研究中IL-1β峰值時(shí)間要在感染后12 h,早于其他細(xì)胞因子,這提示IL-1β可能在炎癥反應(yīng)早期發(fā)揮重要作用。
以DHAV-3強(qiáng)毒感染7日齡雛鴨,發(fā)現(xiàn)DHAV-3在雛鴨體內(nèi)具有廣泛的組織嗜性,肝、脾、腎是病毒攻擊的主要靶器官,肝中細(xì)胞因子可能在抑制病毒增殖和修復(fù)組織損傷過程中發(fā)揮重要作用。
[1] KING A M Q, ADAMS M J, CARSTENS E B, et al. Virus taxonomy: ninth report of the international committee on taxonomy of viruses[M]. Amsterdam: Elsevier, 2012: 351-373.
[2] TSENG C H, TSAI H J. Molecular characterization of a new serotype of duck hepatitis virus[J].VirusRes, 2007, 126(1-2): 19-31.
[3] 蘇敬良, 黃 瑜, 賀榮蓮, 等. 新型鴨肝炎病毒的分離及初步鑒定[J]. 中國獸醫(yī)科技, 2002, 32(1): 15-16.
SU J L, HUANG Y, HE R L, et al. Isolation and preliminary identification of new duck hepatitis virus[J].ChineseJournalofVeterinaryScienceandTechnology, 2002, 32(1): 15-16. (in Chinese)
[4] WEN X J, CHENG A C, WANG M S, et al. Detection, differentiation, and VP1 sequencing of duck hepatitis A virus type 1 and type 3 by a 1-step duplex reverse-transcription PCR assay[J].PoultSci, 2014, 93(9): 2184-2192.
[5] HU Q, ZHU D K, MA G P, et al. A one-step duplex rRT-PCR assay for the simultaneous detection of duck hepatitis A virus genotypes 1 and 3[J].JVirolMethods, 2016, 236: 207-214.
[6] KIM M C, KWON Y K, JOH S J, et al. Recent Korean isolates of duck hepatitis virus reveal the presence of a new geno-and serotype when compared to duck hepatitis virus type 1 type strains[J].ArchVirol, 2007, 152(11): 2059-2072.
[7] CHA S Y, ROH J H, KANG M, et al. Isolation and characterization of a low pathogenic duck hepatitis A virus 3 from South Korea[J].VetMicrobiol, 2013, 162(1): 254-258.
[8] DOAN H T T, LE X T K, DO R T, et al. Molecular genotyping of duck hepatitis A viruses (DHAV) in Vietnam[J].JInfectDevCountr, 2016, 10(9): 988-995.
[9] 黃秋雪, 湯 承, 聶培婷, 等. 鴨甲肝病毒基因A型和C型雙重RT-PCR檢測(cè)方法的建立[J]. 中國預(yù)防獸醫(yī)學(xué)報(bào), 2012, 34(2): 120-123.
HUANG Q X, TANG C, NIE P T, et al. Establishment of a duplex RT-PCR assay for detection of duck hepatitis A virus genotype A and genotype C[J].ChineseJournalofPreventiveVeterinaryMedicine, 2012, 34(2): 120-123. (in Chinese)
[10] FU Y, PAN M, WANG X Y, et al. Molecular detection and typing of duck hepatitis A virus directly from clinical specimens[J].VetMicrobiol, 2008, 131(3-4): 247-257.
[11] XU Q, ZHANG R H, CHEN L L, et al. Complete genome sequence of a duck hepatitis A virus type 3 identified in eastern China[J].JVirol, 2012, 86(24): 13848.
[12] CHEN L L, XU Q, ZHANG R H, et al. Improved duplex RT-PCR assay for differential diagnosis of mixed infection of duck hepatitis A virus type 1 and type 3 in ducklings[J].JVirolMethods, 2013, 192(1-2): 12-17.
[13] SOLIMAN M, ALFAJARO M M, LEE M H, et al. The prevalence of duck hepatitis A virus types 1 and 3 on Korean duck farms[J].ArchVirol, 2015, 160(2): 493-498.
[14] LIN S L, CONG R C, ZHANG R H, et al. Circulation and in vivo distribution of duck hepatitis A virus types 1 and 3 in infected ducklings[J].ArchVirol, 2016, 161(2): 405-416.
[15] HUANG Q X, YUE H, ZHANG B, et al. Development of a real-time quantitative PCR for detecting duck hepatitis A virus genotype C[J].JClinMicrobiol, 2012, 50(10): 3318-3323.
[16] 張煥容, 皮晉魁, 黃志宏. 基因C型鴨甲肝病毒實(shí)驗(yàn)感染雛鴨的組織病理學(xué)及病毒分布[J]. 畜牧獸醫(yī)學(xué)報(bào), 2013, 44(4): 622-628.
ZHANG H R, PI J K, HUANG Z H. Pathology and virus distribution of duck hepatitis A virus genotype C in experimentally infected ducklings[J].ActaVeterinariaetZootechnicaSinica, 2013, 44(4): 622-628. (in Chinese)
[17] 柯 晨, 程安春, 汪銘書, 等. 檢測(cè)鴨甲型肝炎病毒3型的免疫組織化學(xué)方法的建立和應(yīng)用[J]. 中國獸醫(yī)科學(xué), 2015, 45(10): 1013-1020.
KE C, CHENG A C, WANG M S, et al. Establishment and application of immunohistochemistry for detection of duck hepatitis A virus type 3[J].ChineseVeterinaryScience, 2015, 45(10): 1013-1020. (in Chinese)
[18] 林少莉, 楊 蕾, 張瑞華, 等. 鴨甲肝病毒3型熒光定量PCR檢測(cè)方法的建立及其在雛鴨體內(nèi)分布規(guī)律[J]. 中國獸醫(yī)學(xué)報(bào), 2016, 36(5): 723-727, 733.
LIN S L, YANG L, ZHANG R H, et al. Development of a real-time quantitative PCR for detection and investigation ofinvivodynamic distribution of duck hepatitis virus type 3[J].ChineseJournalofVeterinaryScience, 2016, 36(5): 723-727, 733. (in Chinese)
[19] 朱方偉, 谷長勤, 程國富, 等. 新型鴨肝炎病毒感染雛鴨組織內(nèi)病毒抗原的分布[J]. 華中農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào), 2007, 26(4): 511-513.
ZHU F W, GU C Q, CHENG G F, et al. Dynamic distribution of new type duck hepatitis virus in experimental infectious duckling[J].JournalofHuazhongAgriculturalUniversity, 2007, 26(4): 511-513. (in Chinese)
[20] SONG C P, YU S Q, DUAN Y B, et al. Effect of age on the pathogenesis of DHV-1 in Pekin ducks and on the innate immune responses of ducks to infection[J].ArchVirol, 2014, 159(5): 905-914.
[21] 柯 晨. 檢測(cè)3型鴨甲肝病毒免疫組化方法建立和應(yīng)用[D]. 成都: 四川農(nóng)業(yè)大學(xué), 2015.
KE C. Establishment and application of immunohistochemistry to detect duck hepatitis A virus type 3[D]. Chengdu: Sichuan Agricultural University, 2015. (in Chinese)
[22] WANG X Y, ZHANG J J, MENG R Z, et al. Host differences affecting resistance and susceptibility of the second generation of a pekin duck flock to duck hepatitis A virus genotype 3[J].FrontMicrobiol, 2017, 8: 1128.
[23] GU C Q, XIE C Q, HU X Y, et al. Cytokine gene expression in the livers of ducklings infected with duck hepatitis virus-1 JX strain[J].PoultSci, 2012, 91(3): 583-591.
[24] SONG C P, LIAO Y, GAO W, et al. Virulent and attenuated strains of duck hepatitis A virus elicit discordant innate immune responsesinvivo[J].JGenVirol, 2014, 95(12): 2716-2726.
[25] MAO S, OU X M, ZHU D K, et al. Development and evaluation of indirect ELISAs for the detection of IgG, IgM and IgA1 against duck hepatitis A virus 1[J].JVirolMethods, 2016, 237: 79-85.
[26] OU X M, MAO S, JIANG Y F, et al. Viral-host interaction in kidney reveals strategies to escape host immunity and persistently shed virus to the urine[J].Oncotarget, 2017, 8(5): 7336-7349.
[27] LIVAK K J, SCHMITTGEN T D. Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the method[J].Methods, 2001, 25(4): 402-408.
[28] 楊發(fā)龍, 張煥容, 程方明, 等. 基于基因C型鴨甲肝病毒VP1重組蛋白的鴨甲肝病毒抗體ELISA檢測(cè)方法的建立[J]. 畜牧獸醫(yī)學(xué)報(bào), 2014, 45(7): 1148-1153.
YANG F L, ZHANG H R, CHENG F M, et al. Development of an indirect ELISA for detecting antibodies against Genotype A and C duck hepatitis A virus based on recombinant VP1 protein[J].ActaVeterinariaetZootechnicaSinica, 2014, 45(7): 1148-1153. (in Chinese)
[29] 張玉瑤, 馬秀麗, 黃 兵, 等. 鴨甲肝病毒1型和3型間接ELISA方法的建立與應(yīng)用[J]. 微生物學(xué)報(bào), 2015, 55(4): 501-509.
ZHANG Y Y, MA X L, HUANG B, et al. Indirect ELISA for simultaneous detection of antibodies against duck hepatitis A type 1 and 3 viruses[J].ActaMicrobiologicaSinica, 2015, 55(4): 501-509. (in Chinese)
[30] SUN X Y, DIAO Y X, WANG J, et al. Tembusu virus infection in Cherry Valley ducks: the effect of age at infection[J].VetMicrobiol, 2014, 168(1): 16-24.
[31] LI N, LV C W, YUE R C, et al. Effect of age on the pathogenesis of duck tembusu virus in Cherry Valley ducks[J].FrontMicrobiol, 2015, 6: 581.
[32] RANDALL R E, GOODBOURN S. Interferons and viruses: an interplay between induction, signalling, antiviral responses and virus countermeasures[J].JGenVirol, 2008, 89(Pt 1): 1-47.
[33] OU X M, MAO S, CAO J Y, et al. Comparative analysis of virus-host interactions caused by a virulent and an attenuated duck hepatitis A virus genotype 1[J].PLoSOne, 2017, 12(6): e0178993.
[34] GIANSANTI F, GIARDI M F, BOTTI D. Avian cytokines—an overview[J].CurrPharmDes, 2006, 12(24): 3083-3099.