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    咖啡因聯(lián)合電離輻射對(duì)沉默Chk-1肝癌干細(xì)胞的增殖抑制和凋亡誘導(dǎo)作用

    2018-01-24 08:28:40王志成王鐵君
    關(guān)鍵詞:肝癌檢測(cè)

    于 雷,王志成,王鐵君

    (1.吉林大學(xué)第二醫(yī)院放療科,吉林 長(zhǎng)春 130041;2.吉林大學(xué)公共衛(wèi)生學(xué)院 衛(wèi)生部放射生物學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,吉林 長(zhǎng)春 130021)

    肝癌是全球5大常見(jiàn)腫瘤之一,放射治療已經(jīng)成為原發(fā)性肝癌的治療手段,并在我國(guó)的原發(fā)性肝癌診治指南得到推薦[1]。但是,由于腫瘤干細(xì)胞(cancer stem cell,CSC)的存在,導(dǎo)致腫瘤的復(fù)發(fā)和轉(zhuǎn)移,而且是腫瘤放療抵抗的重要原因之一[2],因此如何提高肝癌放療效果成為目前研究的熱點(diǎn)之一。腫瘤細(xì)胞受到輻射后,DNA的損傷如未修復(fù)則發(fā)生細(xì)胞凋亡[3],檢查點(diǎn)激酶1(checkpoint kinase 1,Chk-1)是一種進(jìn)化上高度保守的絲氨酸/蘇氨酸蛋白激酶,可有效調(diào)節(jié)細(xì)胞周期進(jìn)程,具有重要的生理功能,當(dāng)Chk-1被抑制后,則調(diào)控周期阻滯的功能消失,使其成為腫瘤治療的重要靶點(diǎn)。另外,咖啡因(caffeine)是一種茶葉、可可豆和咖啡果中的提取物,近期研究顯示其具有抗腫瘤作用,并且取得了較好的效果[4-6]。本研究探討咖啡因增強(qiáng)輻射對(duì)沉默了Chk-1的CD133+肝癌HepG2細(xì)胞增殖、周期和凋亡的作用,為改善肝癌細(xì)胞放療抵抗提供新的思路。

    1 材料與方法

    1.1 細(xì)胞株及主要試劑人肝癌HepG2細(xì)胞和人腎上皮293T細(xì)胞由吉林大學(xué)公共衛(wèi)生學(xué)院王志成博士惠贈(zèng)。培養(yǎng)血清及高糖DMEM培養(yǎng)基(江蘇恩莫阿塞生物技術(shù)有限公司),DMEM/F12培養(yǎng)基、靶向沉默Chk-1的慢病毒載體pGIPZ-Chk-1 shRNA(第6外顯子)、非靶對(duì)照載體pGIPZ-control shRNA、質(zhì)粒pMD2G和pSPAX2由吉林大學(xué)衛(wèi)生部放射生物學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室保存;轉(zhuǎn)染試劑Lipofectamine 2000和B27(美國(guó)Invitrogen公司),puromycin、MTT試劑、咖啡因和碘化丙啶(PI)(美國(guó) Sigma公司),重組人堿性成纖維細(xì)胞生長(zhǎng)因子(bFGF)和重組人表皮生長(zhǎng)因子(EGF)(美國(guó)Peprtech公司),牛血清白蛋白(BSA)(美國(guó)Gbico公司),AnnexinⅤ-FITC凋亡檢測(cè)試劑盒(南京凱基生物公司),CD133一抗(美國(guó)Abcam公司),GAPDH、Chk-1兔多克隆抗體和ECL發(fā)光試劑盒(美國(guó)Santa Cruz公司),辣根過(guò)氧化物酶標(biāo)記的抗兔二抗(北京中山金橋公司),其他試劑為國(guó)產(chǎn)分析純。

    1.2 沉默Chk-1的HepG2細(xì)胞模型的建立293T細(xì)胞接種6孔板,待80%~90%融合時(shí),利用Lipofectamine 2000轉(zhuǎn)染試劑將pGIPZ-Chk-1 shRNA、pMD2G和pSPAX2質(zhì)粒共轉(zhuǎn)染到293T細(xì)胞中,48和72 h收取上清液并利用0.45 μm濾膜過(guò)濾后加到培養(yǎng)于6孔板80%~90%融合的HepG2細(xì)胞中,共感染2次。通過(guò)觀察綠色熒光的狀態(tài)判定感染的效率,并加入50 g·L-1的puromycin 10 μL進(jìn)行陽(yáng)性篩選,將獲得的細(xì)胞命名為HepG2-Chk-1,以pGIPZ-control作為非靶對(duì)照,命名為HepG2-control,凍存?zhèn)溆谩?/p>

    1.3 Western blotting法檢測(cè)Chk-1蛋白的表達(dá)收集HepG2、HepG2-Chk-1和HepG2-control組細(xì)胞,利用RIPA裂解細(xì)胞,總蛋白提取后進(jìn)行定量,按照25 μg蛋白上樣進(jìn)行SDS-PAGE電泳,將蛋白轉(zhuǎn)到硝酸纖維膜后,利用TBST配置的5%脫脂奶粉封閉1 h,4℃過(guò)夜GAPDH和Chk-1一抗孵育。含有0.05%Tween 20的TBST洗3次,每次5 min,辣根過(guò)氧化物酶標(biāo)記的二抗37℃下孵育1 h,TBST洗3次,利用化學(xué)發(fā)光試劑ECL進(jìn)行顯像,并進(jìn)行拍照分析。

    1.4 沉默Chk-1的肝癌干細(xì)胞的獲得參照文獻(xiàn)[7-8]進(jìn)行肝癌干細(xì)胞的懸浮培養(yǎng),DMEM/F12培養(yǎng)基中加入20 μg·L-1EGF、10 μg·L-1bFGF、2% B27、0.4% BSA、100 U· mL-1青霉素和100 mg·L-1鏈霉素,于37℃、5% CO2條件下培養(yǎng),約6 d可形成懸浮球,采用Western blotting法檢測(cè)CD133蛋白表達(dá)確定是否為肝癌干細(xì)胞,命名為S-HepG2-Chk-1細(xì)胞(沉默Chk-1的肝癌干細(xì)胞)和S-HepG2-control細(xì)胞(肝癌干細(xì)胞)。

    1.5 細(xì)胞分組和照射S-HepG2-Chk-1和S-HepG2-control細(xì)胞分別分為對(duì)照組、咖啡因(0.2 mmol·L-1)組、4 Gy組和4 Gy+咖啡因組。 X射線(xiàn)照射采用X-RAD320生物輻照儀(美國(guó)PXI公司),照射條件:電壓 180 kV,電流12.0 mA,靶皮距70 cm,劑量率 1.0 Gy·min-1,總劑量為4 Gy。

    1.6 MTT法檢測(cè)細(xì)胞增殖活性收集各組肝癌干細(xì)胞懸浮球,0.25%胰蛋白酶消化后按照1× 104個(gè)/孔接種96孔板,參照1.4中的方法繼續(xù)培養(yǎng),12 h后加入終濃度為0.2 mmol·L-1的咖啡因,24 h后進(jìn)行X射線(xiàn)照射,計(jì)為0 h,分別于4、12、24和48 h加入MTT試劑,再培養(yǎng)4 h后吸去上清,加DMSO到孔底結(jié)晶處,于酶標(biāo)儀上490 nm處測(cè)定吸光度[A(490)]值,代表其增殖活性。

    1.7 流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)細(xì)胞周期收集肝癌干細(xì)胞懸浮球,0.25%胰蛋白酶消化后按照4 × 105個(gè)/孔接種24孔板,參照1.4中的方法繼續(xù)培養(yǎng)12 h后加入終濃度為0.2 mmol·L-1的咖啡因,24 h后進(jìn)行X射線(xiàn)照射,24 h后收集細(xì)胞,1 mol·L-1PBS洗2次,每個(gè)管中加入200 μL PI和100 μL RNaseA,輕微震蕩混勻,室溫條件避光20 min,上機(jī)收細(xì)胞,CellQuest軟件收集,ModFit軟件分析數(shù)據(jù),結(jié)果以各期細(xì)胞百分率表示。

    1.8 流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)細(xì)胞凋亡率收集各組肝癌干細(xì)胞懸浮球,0.25%胰蛋白酶消化后按照4 × 105個(gè)/孔接種24孔板,參照1.4中的方法繼續(xù)培養(yǎng),12 h后加入終濃度為0.2 mmol·L-1的咖啡因[9],24 h后進(jìn)行X射線(xiàn)照射,24 h后收細(xì)胞,1 mol·L-1的PBS洗2次,每個(gè)管中加入5 μL PI和5 μL Annexin V-FITC試劑,混勻后避光10 min,上機(jī)收細(xì)胞,CellQuest軟件收集數(shù)據(jù),ModFit軟件分析,細(xì)胞凋亡率以百分率表示。

    2 結(jié) 果

    2.1 沉默Chk-1的HepG2細(xì)胞模型的鑒定利用轉(zhuǎn)染293T細(xì)胞獲得的慢病毒感染HepG2細(xì)胞后獲得穩(wěn)定沉默Chk-1的細(xì)胞模型,通過(guò)Western blotting法檢測(cè)Chk-1蛋白的表達(dá)。HepG2和非靶對(duì)照shRNA的HepG2細(xì)胞中均可見(jiàn)Chk-1蛋白的表達(dá),而靶向沉默Chk-1的HepG2細(xì)胞中Chk-1蛋白低表達(dá),表明本研究獲得的沉默Chk-1的HepG2細(xì)胞模型成功。見(jiàn)圖1。

    Lane 1:HepG2 cells;Lane 2:HepG2-control shRNA cells;Lane 3:HepG2-Chk-1 shRNA cells.

    2.2 肝癌干洗胞懸浮球中CD133蛋白的表達(dá)根據(jù)Yoshikawa等[10]報(bào)道,肝癌干細(xì)胞表面標(biāo)志為CD133。在懸浮培養(yǎng)6 d后,收集細(xì)胞采用Western blotting法檢測(cè),HepG2-control和HepG2-Chk-1細(xì)胞中可見(jiàn)CD133蛋白表達(dá),而將2種細(xì)胞懸浮培養(yǎng)后,CD133蛋白均高表達(dá),提示細(xì)胞中高比例的CD133+細(xì)胞為肝癌干細(xì)胞。見(jiàn)圖2。

    Lane 1:HepG2-control cells;Lane 2:HepG2-Chk-1 cells;Lane 3:S-HepG2-control cells;Lane 4:S-HepG2-Chk-1 cells.

    2.3 各組細(xì)胞增殖活性采用MTT比色法檢測(cè)細(xì)胞增殖活性。在相同時(shí)間點(diǎn),與對(duì)照組比較,同一種細(xì)胞的增殖活性均明顯降低(除了4 h時(shí)S-HepG2-control細(xì)胞)(P<0.05或P<0.01),且以咖啡因 + 4 Gy組的細(xì)胞活性最低;與S-HepG2-control細(xì)胞比較,48 h時(shí)對(duì)照組,4、12、24和48 h時(shí)咖啡因組,12、24和48 h時(shí)4 Gy組,以及4、12、24和48 h時(shí)咖啡因 +4 Gy組 S-HepG2-Chk-1細(xì)胞活性均明顯降低(P<0.01)。見(jiàn)表1。

    2.4 各組細(xì)胞不同細(xì)胞周期百分率與對(duì)照組比較,咖啡因組S期和G2/M期細(xì)胞百分率明顯增加(P<0.05或P<0.01),4 Gy組G0/G1期和G2/M期細(xì)胞百分率明顯增加(P<0.01);咖啡因 + 4 Gy組S期細(xì)胞百分率明顯降低,而G2/M期細(xì)胞百分率明顯增加(P<0.05或P<0.01)。與S-HepG2-control 細(xì)胞比較,S-HepG2-Chk-1細(xì)胞G2/M期細(xì)胞百分率均明顯降低(P< 0.05或P< 0.01)。見(jiàn)表2。

    表1 各組沉默Chk-1的肝癌干細(xì)胞的增殖活性

    Tab.1 Proliferation activities of hepatocellular carcinoma stem cells silenced by Chk-1 in various groups

    表1 各組沉默Chk-1的肝癌干細(xì)胞的增殖活性

    GroupCellsA(490)value(t/h) 4122448ControlS?HepG2?control0.62±0.020.68±0.010.74±0.020.85±0.01S?HepG2?Chk?10.62±0.010.67±0.020.71±0.010.80±0.01△△CaffeineS?HepG2?control0.60±0.010.64±0.01?0.68±0.01?0.69±0.02??S?HepG2?Chk?10.56±0.02?△0.61±0.01?△0.63±0.02??△0.55±0.02??△△4GyS?HepG2?control0.54±0.02??0.58±0.01??0.63±0.01??0.70±0.01??S?HepG2?Chk?10.50±0.01??0.53±0.01??△0.57±0.01??△0.59±0.01??△△Caffeine+4GyS?HepG2?control0.41±0.02??0.42±0.01??0.54±0.01??0.56±0.01??S?HepG2?Chk?10.11±0.01??△△0.12±0.01??△△0.21±0.02??△△0.31±0.01??△△

    *P< 0.05,**P< 0.01vscontrol group;△P< 0.05,△△P< 0.01vsS-HepG2-control cells.

    表2 各組沉默Chk-1的肝癌干細(xì)胞不同周期細(xì)胞百分率

    Tab.2 Percentages of hepatocellular carcinoma stem cells silenced by Chk-1 at different phages in various groups

    表2 各組沉默Chk-1的肝癌干細(xì)胞不同周期細(xì)胞百分率

    GroupCellsPercentageofcellsG0/G1SG2/MControlS?HepG2?control47.07±0.9349.57±0.923.36±0.21S?HepG2?Chk?153.95±0.35△45.00±0.34△1.05±0.06?CaffeineS?HepG2?control32.80±1.49??60.43±1.62?6.77±0.31??S?HepG2?Chk?145.31±0.63??△49.24±0.71?△5.45±0.40?△4GyS?HepG2?control50.20±0.66?31.84±1.33??17.96±0.69??S?HepG2?Chk?157.03±0.28??△33.00±0.47??9.97±0.71??△△Caffeine+4GyS?HepG2?control34.67±0.92??39.03±0.55??26.30±1.11??S?HepG2?Chk?150.14±0.87?△△30.85±0.49??△△19.01±0.47??△

    *P< 0.05,**P< 0.01vscontrol group;△P<0.05,△△P< 0.01vsS-HepG2-control cells.

    2.5 各組細(xì)胞凋亡率與對(duì)照組比較,咖啡因組、4 Gy組和咖啡因 + 4 Gy組細(xì)胞凋亡率均明顯增加(P< 0.05或P< 0.01),且咖啡因 + 4 Gy組增加最明顯;與S-HepG2-control細(xì)胞比較,各組S-HepG2-Chk-1細(xì)胞凋亡率均明顯增加(P< 0.05或P< 0.01)。見(jiàn)表3和圖3。

    3 討 論

    CSC為腫瘤組織中存在的非常小比例的細(xì)胞,具有無(wú)限自我更新和增殖能力,維持細(xì)胞群的生命力。CSC長(zhǎng)時(shí)間處于休眠狀態(tài),對(duì)腫瘤的存活、增殖、轉(zhuǎn)移和復(fù)發(fā)具有重要作用,同時(shí)也是腫瘤放療抵抗和化療多藥耐藥的影響因素之一,以CSC為靶點(diǎn)的腫瘤治療策略越來(lái)越引起重視[11-12]。原發(fā)性肝癌包括肝細(xì)胞癌和肝內(nèi)膽管癌,有學(xué)者認(rèn)為可能部分起源于肝癌干細(xì)胞。目前,識(shí)別CSC的表面標(biāo)志物被認(rèn)為是鑒定CSC的重要途徑。肝癌干細(xì)胞具有多個(gè)表面標(biāo)志物,如CD133、CD90、CD44、OV6和EpCAM等[13]。在本研究中懸浮培養(yǎng)6 d后,檢測(cè)肝癌干細(xì)胞表面標(biāo)志物CD133蛋白表達(dá)結(jié)果顯示:與未懸浮的相同細(xì)胞比較,CD133蛋白呈高表達(dá),提示有高比例的肝癌干細(xì)胞存在,為后續(xù)實(shí)驗(yàn)提供了保障。

    表3 各組沉默Chk-1的肝癌干細(xì)胞的凋亡率

    *P<0.05,**P<0.01vscontrol group;△P<0.05,△△P<0.01vsS-HepG2-control cells.

    A-D:S-HepG2-control cells;E-H:S-HepG2-Chk-1 cells;A,E:Control group;B,F:Caffeine group;C,G:4 Gy group;D,H:Caffeine+4 Gy group.

    腫瘤放療時(shí)損傷細(xì)胞的一個(gè)重要的機(jī)制就是誘導(dǎo)DNA損傷,繼而導(dǎo)致細(xì)胞最終走向死亡。DNA損傷時(shí)細(xì)胞周期Chk-1/2在限制細(xì)胞周期進(jìn)展的DNA損傷反應(yīng)通路中發(fā)揮重要作用[14]。腫瘤臨床放療時(shí),往往因腫瘤細(xì)胞逃避了凋亡,使得以誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡為目的的治療方案效果降低,這與細(xì)胞周期檢查點(diǎn)的活化關(guān)系密切。當(dāng)細(xì)胞遭受DNA損傷劑作用時(shí),Chk1被激活,致使細(xì)胞停留在S和G2/M期檢查點(diǎn),保證DNA有充足的時(shí)間完成修復(fù),從而維持基因組的穩(wěn)定性[15]。本研究中靶向Chk-1第6外顯子的靶向RNAi慢病毒pGIPZ-Chk-1感染肝癌細(xì)胞HepG2后,Western blotting法檢測(cè)結(jié)果顯示:Chk-1蛋白表達(dá)大大降低,具有較好的沉默效果,而對(duì)照序列的慢病毒則不影響Chk-1蛋白的表達(dá)。另外,流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)Chk-1被沉默的HepG2細(xì)胞和對(duì)照序列的HepG2細(xì)胞周期結(jié)果顯示:G2/M期細(xì)胞百分率明顯降低,表明經(jīng)過(guò)懸浮培養(yǎng)后沉默Chk-1的細(xì)胞更少的處于G2/M期。

    2013年,美國(guó)國(guó)家綜合癌癥網(wǎng)絡(luò)(NCCN)肝癌診治指南推薦:原發(fā)性肝癌患者無(wú)論腫瘤位于何處,都適合外照射放療。我國(guó)也在肝癌診治指南中推薦肝癌放療,而腫瘤放療與其他療法的聯(lián)合應(yīng)用則具有更高的治療效果。咖啡因廣泛存在于茶葉、咖啡和其他飲料中,有研究[16]表明:咖啡因能夠通過(guò)誘發(fā)細(xì)胞凋亡和抑制增殖實(shí)現(xiàn)抗腫瘤效應(yīng)。放療也可以誘導(dǎo)腫瘤細(xì)胞凋亡,因此本研究將二者結(jié)合以增加彼此的誘導(dǎo)凋亡作用,并且以沉默了Chk-1的肝癌干細(xì)胞為靶細(xì)胞。沉默了Chk-1后G2/M期細(xì)胞比例減少,而該細(xì)胞周期是對(duì)X射線(xiàn)最敏感的期,這將對(duì)放射效果產(chǎn)生影響,但從本研究結(jié)果來(lái)看,二者協(xié)同作用于沉默Chk-1的肝癌干細(xì)胞能明顯提高其增殖抑制和凋亡促進(jìn)效果。另外,咖啡因?qū)τ诩?xì)胞周期的影響主要集中在S相延遲和G2/M期阻滯,而4 Gy照射則誘導(dǎo)G0/G1和G2/M期阻滯,對(duì)于逆轉(zhuǎn)因缺少Chk-1調(diào)控周期檢查點(diǎn)監(jiān)控失調(diào)具有一定的作用。

    綜上所述,由沉默了Chk-1的HepG2細(xì)胞懸浮培養(yǎng)獲得的肝癌干細(xì)胞G2/M期比例降低,本身不利于細(xì)胞維持正?;?,但對(duì)于腫瘤來(lái)說(shuō),則有利于以此為突破口進(jìn)行靶向治療??Х纫蚝碗婋x輻射均可誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡,二者聯(lián)合應(yīng)用大大增強(qiáng)了單一治療的效果。本研究結(jié)果為肝癌的放射治療提供了新的實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)和思路。

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