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    Exendin-4對胰島素抵抗人肝癌HepG2細胞脂代謝相關因子基因表達的影響

    2018-01-24 08:43:18張美家王懷杰霍連廣李桂芝高志芹楊曉云1曲梅花
    吉林大學學報(醫(yī)學版) 2018年1期
    關鍵詞:胰島素水平模型

    蘇 寒,張美家,王懷杰,李 娜,霍連廣,李桂芝,戴 功,高志芹,楊曉云1,,曲梅花

    (1.濰坊醫(yī)學院山東省高校應用藥理學重點實驗室,山東 濰坊 261053; 2. 濰坊醫(yī)學院藥學院藥理學教研室,山東 濰坊 261053;3. 濰坊醫(yī)學院臨床醫(yī)學院生物化學教研室,山東 濰坊 261053;4. 濰坊醫(yī)學院生物科學與技術學院細胞生物學教研室,山東 濰坊 261053)

    Exendin-4(Ex-4)是從墨西哥巨型蜥蜴的唾液中分離得到的一種氨基酸多肽,可促進胰島素分泌[1],改善胰島素抵抗(insulin resistance, IR)。Ex-4具有穩(wěn)定性好、半衰期長的優(yōu)點,現(xiàn)已在臨床用于治療2型糖尿病(type 2 diabetes mellitus,T2DM),其治療機制仍未完全闡明[2]。IR與多種疾病的發(fā)生有關,其中主要包括T2DM,如何改善IR是尋求治療T2DM及其他代謝疾病的一個重要途徑[3-4]。有研究[5]表明:IR在T2DM中更為普遍,導致了T2DM脂代謝的紊亂。乙酰輔酶A羧化酶(acetyl-CoA carboxylase,ACC)、脂肪酸合成酶(fatty acid synthase,F(xiàn)AS)、固醇調(diào)節(jié)元件結合蛋白1c(sterol regulatory element-binding protein-1c,SREBP-1c)和載脂蛋白B100(apolipoprotein B100,apoB100)是維持肝臟脂代謝的關鍵環(huán)節(jié)[6]。本研究通過建立HepG2細胞IR模型,研究Ex-4處理對IR細胞葡萄糖消耗、細胞內(nèi)脂肪和甘油三酯(triglyceride,TG)的影響,以及對脂代謝相關因子ACC、FAS、SREBP-1c和 apoB100等表達的影響,闡明Ex-4對肝細胞脂代謝的作用機制。

    1 材料與方法

    1.1 細胞和主要試劑人肝癌HepG2細胞(中國科學院上海生命科學研究院細胞庫)。DMEM培養(yǎng)基(美國Hyclone公司),胎牛血清、胰酶、油紅O、蘇木素和牛胰島素(北京索萊寶科技有限公司),Ex-4(美國MedChemExpress公司),甘油三酯檢測試劑盒(南京建成生物工程研究所),BCA蛋白定量試劑盒和Trizol(北京康為世紀生物科技有限公司),SYBR Green PCR(日本TOYOBO公司),PCR 引物(上海生工生物工程有限公司),葡萄糖檢測試劑盒(北京普利萊基因技術有限公司)。

    1.2 HepG2細胞IR模型建立HepG2細胞按1∶3比例傳代后,用含10%胎牛血清(FBS)的高糖DMEM培養(yǎng)基,在培養(yǎng)箱中37℃、5%CO2條件下進行培養(yǎng),待到細胞長滿80%左右,將細胞分為對照組和胰島素組。待細胞培養(yǎng)12 h 后,對照組加入不含胰島素的DMEM培養(yǎng)基,將李秀麗等[7]建立模型方法進行改進,胰島素組分別加入含1×10-8、1×10-7、1×10-6和1×10-5mol·L-1胰島素的培養(yǎng)基,繼續(xù)培養(yǎng)24、36和48 h。處理后分別取出細胞培養(yǎng)基上清液,應用葡萄糖氧化酶法(GOD-POD)檢測上清葡萄糖濃度,計算葡萄糖消耗量(mmol·L-1)。葡萄糖消耗量最低的一組即IR最佳模型組(葡萄糖消耗量=模型初始葡萄糖濃度-建模后葡萄糖濃度)。HepG2細胞建立IR模型(HepG2-IR細胞)后,然后將細胞分為對照組(不含胰島素誘導)、IR組(IR模型,即HepG2-IR細胞)和Ex-4組(HepG2-IR細胞中加入10 nmol·L-1Ex-4)。

    1.3 油紅O染色在裝有載玻片的6孔板中建立HepG2細胞IR模型(HepG2-IR細胞),IR模型建成后分組同上。吸出培養(yǎng)基,用PBS清洗3次,4%多聚甲醛固定10 min,加入油紅O工作液孵育10 min;細胞爬片破膜10 min,PBS漂洗3次,每次5 min,入油紅O工作液37℃染色1~2 h。蘇木素復染1~2 min,自來水沖洗,1%鹽酸酒精分化數(shù)秒,自來水沖洗,氨水返藍,流水沖洗。在顯微鏡下觀察細胞中脂滴形成情況。用酶標儀測定各組細胞吸光度(A)值,計算細胞含脂率。細胞含脂率=(實驗組A值-對照組A值)/對照組A值×100%。

    1.4 TG 水平檢測細胞分組同上。細胞長滿約1×106mL-1時,將細胞用胰酶消化,離心留沉淀,PBS洗3次后再次離心,留沉淀; 加入少許裂解液進行裂解,取部分上清液檢測TG水平。

    1.5 實時熒光定量PCR(qRT-PCR)法檢測HepG2細胞中脂類代謝相關因子mRNA表達水平HepG2細胞建立IR模型后,分組同上。每個培養(yǎng)瓶中加入Trizol 1 mL,利用Trizol法提取細胞總RNA,RNA定量后進一步逆轉錄成cDNA。建立PCR反應體系,其中ACC、FAS、SREBP-1c和apoB100及GAPDH引物序列見表1,以GAPDH為內(nèi)參基因。反應條件:預變性95℃、10 min,變性95℃、10 s,退火60℃、30 s,共40個循環(huán);熔解曲線為:從55℃到95℃,每隔10 s 增加0.5℃。使用LightCycler?480實時熒光定量PCR系統(tǒng)上機擴增,得出實驗數(shù)據(jù),根據(jù)2-ΔΔCt計算各基因的相對表達水平。

    表1 基因引物序列

    2 結 果

    2.1 IR模型建立在不同濃度胰島素作用下,HepG2細胞在24、36和48 h時葡萄糖消耗量見表2。與對照組比較,胰島素濃度為1×10-7mol·L-1作用36 h, HepG2葡萄糖消耗量最低,故本次實驗中應用的胰島素濃度為1×10-7mol·L-1、作用時間36 h為最佳造模條件。

    2.2 各組細胞葡萄糖消耗量HepG2細胞誘導成IR形成后,采用GOD-POD法檢測各組細胞葡萄糖消耗量,IR組(36 h, 胰島素濃度為1×10-7mol·L-1)細胞葡萄糖消耗量[(1.656±0.133)mmol·L-1)]明顯低于對照組[(1.845±0.138)mmol·L-1)](P<0.01),說明IR模型已建立。

    與IR組比較,Ex-4組細胞的葡萄糖消耗量 [(2.190±0.080)mmol·L-1)] 明顯升高(P<0.05)。

    2.3 各組細胞的形態(tài)表現(xiàn)及TG水平油紅O染色結果顯示:與對照組比較,IR組HepG2-IR細胞中紅色脂滴明顯增多;與IR組比較,Ex-4組細胞中紅色脂滴明顯減少(圖1,見插頁二)。與對照組(25%±6%)比較,IR組細胞含脂率(63%±12%)明顯升高(P<0.05);與IR組比較,Ex-4組細胞含脂率(34%±8%)明顯降低(P<0.05)。各組細胞中TG水平(mmol·g-1)檢測:與對照組(0.21±0.03)比較,IR組HepG2-IR細胞中TG水平(0.33±0.08)明顯升高(P<0.05);Ex-4組HepG2-IR細胞中TG水平(0.24±0.04)明顯低于IR組(P<0.05),接近對照組HepG2細胞中TG水平(P>0.05),表明Ex-4通過調(diào)節(jié)TG的代謝影響細胞的脂質(zhì)代謝途徑,進而減少細胞內(nèi)脂質(zhì)的積聚。

    表2 不同濃度胰島素作用HepG2細胞24、36和48 h后葡萄糖消耗量

    Tab.2 Glucose consumption of HepG2 cells treated with different concentrations of insulin for 24, 36 and 48 h

    表2 不同濃度胰島素作用HepG2細胞24、36和48 h后葡萄糖消耗量

    GroupGlucoseconsumption(t/h) 243648Control1.645±0.0981.845±0.1382.148±0.143Insulin(mol·L-1) 1×10-81.723±0.147?1.737±0.042?2.148±0.182 1×10-71.703±0.067?1.656±0.133?1.879±0.127 1×10-61.834±0.183?1.762±0.0532.012±0.129 1×10-52.034±0.108?1.937±0.0672.388±0.157

    *P<0.05 compared with control group at same time.

    2.4 各組細胞中脂類代謝相關因子mRNA 表達水平與對照組比較,IR組HepG2-IR細胞中ACC、FAS和SREBP-1c mRNA表達水平明顯升高(P<0.01),apoB100 mRNA表達水平明顯降低(P<0.05);與IR組比較,Ex-4細胞中ACC、FAS和SREBP-1c mRNA表達水平明顯降低(P<0.05),apoB100 mRNA表達水平明顯升高(P<0.01)。見表3。

    表3 各組HepG2細胞中脂類代謝相關因子mRNA表達水平

    *P<0.05,**P<0.01 compared with control group;△P<0.05,△△P<0.01 compared with IR group.

    3 討 論

    胰高血糖素樣肽1(glucagon-like peptide-1,GLP-1)是腸道分泌的一種腸促胰島素[8],能夠刺激胰島β細胞分化,改善細胞的胰島素敏感性,降低血糖,但其半衰期較短,作為臨床藥物常受到制約[9-11]。作為第一個臨床使用的GLP-1類似物藥物,Ex-4的特點是可模擬人體內(nèi)自然分泌的激素,調(diào)節(jié)血糖水平,且與GLP-1有相似的生物學作用,Ex-4具有半衰期長的優(yōu)點,在研究中更具有優(yōu)勢[12-13]。

    IR與脂代謝異常有密切關聯(lián),所以研究脂代謝的變化是尋找改善IR的一個重要途徑。本文作者主要是通過觀察Ex-4調(diào)節(jié)脂代謝的相關因子來探討Ex-4對IR的影響。脂代謝相關因子ACC和FAS是脂肪酸合成限速酶[14],ACC、FAS等因子表達水平明顯增加,可引起肝臟內(nèi)脂肪酸合成增加、積累,導致肝細胞脂代謝異常,從而進一步加重IR;FAS還在結合與轉運脂質(zhì)和調(diào)節(jié)脂蛋白代謝等方面具有重要作用,其表達水平的升高能夠明顯增加TG在體內(nèi)的沉積從而使糖尿病的脂代謝紊亂[15-16]。本研究結果顯示: IR形成后,脂肪酸合成增加,脂類物質(zhì)聚集,ACC和FAS表達水平升高。

    SREBP-1c是核轉錄因子,在脂肪酸的合成中發(fā)揮重要作用,SREBP-1c活性升高引起攝入游離脂肪酸增加[17]。本研究顯示:HepG2-IR細胞經(jīng)Ex-4處理后,SREBP-1c表達水平降低,提示Ex-4能夠減少游離脂肪酸的生成,改善脂肪酸合成異常的現(xiàn)象,使脂肪酸合成減少。apoB100在肝臟中合成,是低密度脂蛋白的載脂蛋白,參與低密度脂蛋白的轉運[18-19]。本研究結果顯示:Ex-4處理HepG2-IR細胞后,apoB100 mRNA表達水平升高,說明Ex-4通過影響apoB100表達使其能夠加劇游離脂肪酸的轉運。

    研究[20]表明:Ex-4可提高誘導的3T3-L1脂肪細胞IR模型的葡萄糖攝取量,從而改善脂肪細胞的IR。Ex-4在抑制人或動物體質(zhì)量增長、促進膽固醇代謝和改善胰島素敏感性方面具有重要作用,可防止高脂誘導的IR[21-22]。本研究結果顯示:Ex-4能夠增加 HepG2-IR細胞的葡萄糖消耗量,降低TG的水平,與上述文獻報道一致。

    綜上所述,Ex-4可調(diào)節(jié)脂代謝的過程,改善脂肪酸合成異常,進而改善IR。本研究結果為Ex-4成為臨床一線抗糖尿病藥物提供了理論依據(jù)。

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