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    沉默UHRF1對乳腺癌細胞增殖和轉移的影響

    2018-01-09 02:49:42孔藝然
    實用腫瘤學雜志 2017年6期
    關鍵詞:乳腺癌活性蛋白

    陳 琢 孔藝然

    沉默UHRF1對乳腺癌細胞增殖和轉移的影響

    陳 琢 孔藝然

    目的探討UHRF1對乳腺癌MDA-MB-231細胞增殖以及侵襲的影響及其相關機制。方法采用四甲基偶氮唑鹽微量酶反應比色法(MTT)檢測沉默UHRF1基因后對乳腺癌MDA-MB-231細胞活力的影響;應用克隆形成實驗檢測沉默UHRF1后對乳腺癌MDA-MB-231細胞存活的影響;吖啶橙-溴乙錠(AO/EB)檢測沉默UHRF1后對乳腺癌MDA-MB-231細胞凋亡的影響;Caspase-3活性試劑盒檢測沉默UHRF1后乳腺癌細胞Casapse-3活性的變化;Western blot法檢測細胞中凋亡相關蛋白Bcl-2、Bax、Bad、p-Bad、XIAP、p53、p21Cip1/Waf1和p16INK4a的表達;應用Transwell實驗研究沉默UHRF1對MDA-MB-231細胞侵襲能力的影響;Wound Healing實驗研究沉默UHRF1后對其遷移能力的影響。結果沉默UHRF1使乳腺癌MDA-MB-231細胞活力降低;克隆形成實驗結果顯示沉默UHRF1后MDA-MB-231細胞存活能力降低,AO/EB染色顯示沉默UHRF1促進MDA-MB-231細胞凋亡。同時Caspase-3活性實驗結果顯示沉默UHRF1后乳腺癌MDA-MB-231細胞Caspase-3的活性增加;Western blot結果顯示,沉默UHRF1后,能夠使凋亡蛋白Bad、XIAP和Bax的表達上調,同時抗凋亡蛋白p-Bad,Bcl-2的表達下調,也使p53,p21Cip1/Waf1,p16INK4a蛋白表達升高;Transwell以及Wound Healing實驗證明沉默UHRF1能夠抑制乳腺癌MDA-MB-231細胞侵襲和遷移。結論沉默UHRF1能夠抑制乳腺癌MDA-MB-231細胞活力和存活,并抑制乳腺癌MDA-MB-231的侵襲和遷移。沉默UHRF1通過調控p53,p21Cip1/Waf1,p16INK4a信號發(fā)揮作用。

    UHRF1;乳腺癌;p53;侵襲;凋亡

    乳腺癌(Breast cancer)是世界范圍內女性較常見的惡性腫瘤之一[1]。盡管目前臨床對于乳腺癌的治療主要集中于手術和放化療[2-3],但因其對患者的損傷大,術后對于女性心理以及生理的影響巨大[4]。因此,進一步研究乳腺癌的致病因素和發(fā)生機制,明確靶向治療方向[5],是目前困擾廣大學者的重要研究問題。UHRF1,也被稱為ICBP90,屬于UHRF家族[6]。UHRF1被發(fā)現在前列腺癌[7]、膀胱癌[8]和乳腺癌[9]中過量表達,但是其確切的生物學功能仍然被學者們所關注。文獻報道[10]體外實驗中UHRF1基因可能是一種生長調節(jié)基因,其主要作用在于能夠抑制細胞有絲分裂從而對細胞增殖產生影響,進而對細胞周期進行調節(jié)。然而,關于UHRF1對乳腺癌細胞增殖的具體影響鮮有報道。本研究主要探討沉默UHRF1后,乳腺癌細胞系MDA-MB-231增殖以及遷移能力的變化,及其初步機制。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    人乳腺癌細胞系用RPMI-1640(含10%小牛血清)培養(yǎng)基于37℃、5% CO2條件下培養(yǎng)。UHRF1-shRNA購自中國Gene Pharma公司??笲cl-2、抗Bax、抗Bad、抗p-Bad、抗p53,抗p21Cip1/Waf1以及p16INK4a單克隆抗體購自美國Cell Signaling公司。

    1.2 方法

    1.2.1 分組 將正常對照組,NC組以及UHRF1-shRNA組分別轉染到MDA-MB-231細胞中(NC組:陰性對照組;UHRF1-shRNA組,轉染UHRF1-shRNA 48 h后的MDA-MB-231細胞),Western blot方法檢測轉染后UHRF1蛋白的變化,發(fā)現NC組與正常對照組相比沒有統計學差異(P=0.0923),因此在后續(xù)的實驗中,本研究以NC組為對照組(圖1A)。

    1.2.2 MTT法測定MDA-MB-231細胞生長抑制率 將2×103L-1的MDA-MB-231細胞接種于96孔板中,貼壁培養(yǎng)24 h后,分別向MDA-MB-231細胞中轉染UHRF1-shRNA及NC 48 h后,MTT法測定細胞的吸光度值。

    1.2.3 Caspase-3活性檢測 向MDA-MB-231細胞中轉染UHRF1-shRNA,48 h后,按照Caspase-3活性檢測試劑盒說明書測定Caspase-3的酶活性。

    1.2.4 Western blot檢測細胞中凋亡相關蛋白的表達 總蛋白是從轉染UHRF1-shRNA及其NC 48 h后MDA-MB-231細胞中提取。使用12%的SDS-PAGE膠,每個孔道蛋白樣品50 μg,濃縮膠70 V,分離膠110 V后,將蛋白轉印至醋酸纖維素膜上,300 mA轉印1.5 h后,在5%的脫脂牛奶中封閉2 h。分別將不同的抗體p16INK4a、p21CIP1/WAF1、p53、Bcl-2、Bax、Bad、p-Bad、XIAP、β-actin在4℃恒溫搖床上孵育過夜,紅外熒光染料標記的第二抗體室溫孵育1 h。Western blot通過奧德賽3.0軟件進行紅外成像系統采集,以相應蛋白條帶的灰度值/β-actin蛋白條帶的灰度值表示相對蛋白含量。

    1.2.5 吖啶橙-溴乙錠(AO/EB)染色法檢測細胞生存 將MDA-MB-231細胞培養(yǎng)于滅菌的玻片上24 h。瞬時轉染UHRF1-shRNA 48 h。加入吖啶橙-溴乙錠混合液染色100 mg/mL的AO以及100 mg/mL的EB融于PBS中。用熒光顯微鏡檢測細胞形態(tài)的變化(100×)。細胞凋亡率用以下公式檢測:凋亡率(%)=凋亡細胞數/細胞總數。

    1.2.6 Transwell法檢測侵襲能力的影響 將5×104個細胞加入無血清培養(yǎng)基的上室,接種前需提前鋪設Matrigel膠,加入1×104個細胞于血清培養(yǎng)基的上室,下室均為含10%胎牛血清的培養(yǎng)基。24 h后取出小室,依次經甲醛固定及結晶紫染色,采用倒置顯微鏡計算侵襲或遷移細胞數,實驗重復3次。

    1.2.7 劃痕實驗 將乳腺癌細胞接種至6孔板中,分別轉染NC組與UHRF1-shRNA組12 h后,待細胞完全貼壁,使用10 μL的槍頭對兩組細胞進行劃痕,磷酸鹽緩沖液清洗細胞并拍照觀察,100倍視野下隨機選擇3個視野進行記錄劃痕寬度。24 h后再拍照觀察,記錄劃痕寬度。

    1.3 數據處理分析

    用GraphPad Prism 5.0軟件處理數據,計量資料采用t檢驗,Kruskal-wallis秩和檢驗或Wilcoxon秩和檢驗,P<0.05為差異有統計學意義。

    2 結果

    2.1 沉默UHRF1后乳腺癌MDA-MB-231細胞活性的變化

    UHRF1-shRNA與NC分別轉染到MDA-MB-231細胞中作用48 h后,Western blot方法檢測其敲減效率(圖1A)。MTT方法檢測轉染UHRF1-shRNA后細胞活性的變化,分別與正常對照組以及NC組相比,UHRF1-shRNA轉染組細胞活性相較于正常對照組(50.28+3.89)%以及NC組(48.36+5.80)%(P<0.05)有所降低(圖1B)。通過AO/EB染色法和克隆形成實驗檢測MDA-MB-231增殖能力,發(fā)現與NC相比,UHRF1-shRNA組乳腺癌細胞增殖能力明顯降低(P<0.05)(圖1C,圖1D)。

    圖1 沉默UHRF1后對乳腺癌MDA-MB-231細胞活性的影響Figure 1 Knockdown UHRF1 affected the viability of MDA-MB-231 cellsNote:A.MDA-MB-231 cells were transfected with UHRF1-shRNA or NC-shRNA and siRNA-depletion efficiency was examined by Western blot;B.MDA-MB-231 cells transfected with UHRF1-shRNA or NC-shRNA were cultured and cell viability was analyzed by MTT assay;C.MDA-MB-231 cells transfected with UHRF1-shRNA or NC-shRNA were subjected to AO/EB staining to detect changes in the nucleus.The orange-colored region indicated initiation of apoptosis;D.MDA-MB-231 cells transfected with UHRF1-shRNA or NC-shRNA were seeded into 6-cm dishes at a density of 800 cells/dish.Colony formation was assessed by crystal violet staining.*P<0.05 vs.control or NC group.

    2.2 沉默UHRF1對Caspase-3通路的影響

    本研究首先檢測了線粒體凋亡相關蛋白Bcl-2、Bax(圖2A)、Bad與p-Bad(圖2B)的表達,結果發(fā)現相對于NC組,沉默UHRF1后Bax與Bcl-2比值顯著上調(P=0.0233),Bad蛋白表達相較于NC組顯著上調(P=0.0451),而p-Bad蛋白相對于NC組顯著下調(P=0.0315)。同時通過Caspase-3的活性檢測,發(fā)現與NC組相比,轉染UHRF1-shRNA后MDA-MB-231細胞Caspase-3活性顯著升高(P=0.0194)(圖2C),說明沉默UHRF1能夠抑制MDA-MB-231細胞增殖是依賴于Caspase-3的活化。隨后本研究又檢測了XIAP蛋白的表達,相對于NC組,沉默UHRF1后XIAP蛋白的表達顯著上調(P=0.0412)(圖2D)。

    圖2 沉默UHRF1對于Bax,Bcl-2(A)Bad,p-Bad(B)以及Xiap(D)蛋白影響,及其對于caspase-3活性的改變Figure 2 Knockdown UHRF1 altered the expression of p-Bad,Bad,Bax,Bcl-2 and XIAP,and promoted caspase-3 activation in MDA-MB-231 cellsNote:Western blot was used to detect Bax,Bcl-2(A),p-Bad,Bad,(B)and XIAP(D)expression in MDA-MB-231 cells transfected with UHRF1-shRNA or NC-shRNA.Relative expression of Bax,Bcl-2,p-Bad,Bad and XIAP was normalized to β-actin.n=3 independent experiments for each group.(C)Activation of caspase 3 by UHRF1-shRNA or NC-shRNA.Data are averaged from five independent experiments for each group.*P<0.05 vs.NC group.

    2.3 沉默UHRF1對于乳腺癌細胞MDA-MB-231侵襲能力的影響

    Transwell以及Wound Healing實驗檢測沉默UHRF1對于細胞侵襲和遷移能力的影響,結果顯示UHRF1能夠明顯的抑制乳腺癌細胞MDA-MB-231的侵襲和遷移能力,說明UHRF1參與了MDA-MB-231的侵襲和遷移過程(圖3A,B)。

    2.4 沉默UHRF1對于p53信號通路的影響

    為進一步驗證UHRF1是否通過p53信號通路影響MDA-MB-231細胞增殖及侵襲,結果發(fā)現與NC組相比,UHRF1-shRNA組中p53,p21Cip1/Waf1,p16INK4a蛋白的表達顯著上調(P<0.05)(圖4)。

    圖3 轉染UHRF1-shRNA對于乳腺癌細胞MDA-MB-231侵襲能力的影響Figure 3 UHRF1 shRNA inhibited the migration of MDA-MB-231 cellsNote:MDA-MB-231 cells were transfected with UHRF1-shRNA or NC-shRNA.(A)Wound-Healing assay was performed to analyze the effect of UHRF1 on cell migration.Representative images(100×)and quantitative analyses are shown;(B)Transwell assay in the presence or absence of matrigel was performed.*P<0.05 vs. NC group.

    圖4 UHRF1-shRNA對于乳腺癌細胞系MDA-MB-231細胞凋亡通路的影響Figure 4 Knockdown UHRF1 increased the expression of p53,p21Cip1/Waf1 and p16INK4a in MDA-MB-231 cellsNote:A.p53 protein level;B.p21Cip1/Waf1 protein level;C.p16INK4a protein level.*P<0.05 vs.NC group.

    3 討論

    UHRF1基因是近些年深受廣大學者關注的一個凋亡相關基因[11]。目前,很多研究表明,其廣泛參與各種生物學過程,包括表觀遺傳調控[12]、細胞周期調控和細胞分化調控等眾多生命活動,成為遺傳學研究熱點?,F有的文獻報道,UHRF1對于肝癌[13]和胃癌[14]的發(fā)生發(fā)展有著巨大的影響。但是其對于乳腺癌增殖、侵襲的影響并沒有太多的相關報道,本研究主要通過沉默UHRF1來研究其對乳腺癌細胞系MDA-MB-231增殖的作用及其相關機制。

    過度增殖是惡性腫瘤發(fā)生發(fā)展的重要環(huán)節(jié)[15]。本結果顯示,沉默UHRF1后,MDA-MB-231細胞的生存率均低于正常水平,表明沉默UHRF1能夠抑制乳腺癌細胞的增殖,克隆形成以及AO/EB的結果均印證了UHRF1能夠影響乳腺癌細胞系MDA-MB-231的活性。現有的文獻[16]大多關于過表達UHRF1后對于增殖能力影響的研究,但是對于乳腺癌的研究鮮有報道。此外,本研究進一步發(fā)現沉默UHRF1基因后,MDA-MB-231細胞的增殖能力明顯降低,表明UHRF1對調節(jié)乳腺癌細胞的增殖過程起到一定作用。

    遷移和侵襲是腫瘤發(fā)生發(fā)展過程中重要的環(huán)節(jié)[17]。腫瘤細胞的遷移和侵襲能力與乳腺癌的預后密切相關,也是導致治療失敗的主要原因。本研究采用Transwell和WoundHealing實驗檢測發(fā)現沉默UHRF1后,MDA-MB-231細胞的侵襲遷移能力受抑制,表明UHRF1與乳腺癌細胞的惡性生物學行為有關。

    p53基因突變被認為是目前所有人體腫瘤中最常見的基因改變。p53基因定位于染色體17p13.1,對細胞周期DNA的修復、合成、細胞分化、基因組的穩(wěn)定和細胞的凋亡起調控作用,p53通過對多種基因的調控引起G1、S和G2期停頓從而調控凋亡。Huang等[18]證明p53能夠參與到乳腺癌細胞凋亡的過程。Cao等[19]的研究同時證明了p53能夠參與到乳腺癌的侵襲。而本研究結果表明沉默UHRF1后能夠使p53蛋白表達上調,同時p53信號通路中重要蛋白p21Cip1/Waf1和p16INK4a蛋白表達也上調。

    綜上所述,沉默UHRF1后,能夠抑制乳腺癌細胞MDA-MB-231的增殖,同時也能夠抑制其侵襲的能力。而這種抑制增殖和侵襲的能力可能是通過上調Caspase-3活性,進而上調p53蛋白表達,然后激活下游的p21Cip1/Waf1和p16INK4a蛋白而實現的,以上研究為UHRF1對于乳腺癌的治療提供了理論依據。

    1 Rao N,Qiu J,Wu J,et al.Significance of tumor-infiltrating lymphocytes and the expression of topoisomerase IIalpha in the prediction of the clinical outcome of patients with triple-negative breast cancer after taxane-anthracycline-based neoadjuvant chemotherapy[J],Chemotherapy,2017,62(2):246-255.

    4 Joseph FJ,van Oepen A,Friebe M,et al.Breast sentinel lymph node biopsy with imaging towards minimally invasive surgery[J],Biomed Tech(Berl),2017[Epub ahead of print].

    5 Treitl D,Radkani P,Rizer M,et al.Adenoid cystic carcinoma of the breast,20 years of experience in a single center with review of literature[J],Breast Cancer,2017[Epub ahead of print].

    6 Hopfner R,Mousli M,Jeltsch JM,et al.ICBP90,a novel human CCAAT binding protein,involved in the regulation of topoisomerase IIalpha expression[J],Cancer Res,2000,60(1):121-128.

    7 Abu-Alainin W,Gana T,Liloglou T,et al.UHRF1 regulation of the keap1-nrf2 pathway in pancreatic cancer contributes to oncogenesis[J],J Pathol,2016,238(3):423-433.

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    10 Bonapace IM,Latella L,Papait R,et al.Np95 is regulated by E1A during mitotic reactivation of terminally differentiated cells and is essential for S phase entry[J].J Cell Biol,2002,157(6):909-914.

    11 Subramani R,Gangwani L,Nandy SB,et al.Emerging roles of microRNAs in pancreatic cancer diagnosis,therapy and prognosis(Review)[J].Int J Oncol,2015,47(4):1203-1210.

    12 Kang SM,Lee HJ.MicroRNAs in human lung cancer[J].Exp Biol Med(Maywood),2014,239(11):1505-1513.

    13 Ahmed K,Tabuchi Y,Kondo T.Hyperthermia:an effective strategy to induce apoptosis in cancer cells[J].Apoptosis,2015,20(11):1411-1419.

    14 Chen WM,Huang MD,Sun DP,et al.Long intergenic non-coding RNA 00152 promotes tumor cell cycle progression by binding to EZH2 and repressing p15 and p21 in gastric cancer[J].Oncotarget,2016,7(9):9773-9987.

    15 Li J,Zhang N,Zhang R,et al.CDC5L Promotes hTERT expression and colorectal tumor growth[J].Cell PhysiolBiochem,2017,41(6):2475-2488.

    16 Seo JS,Choi YH,Moon JW,et al.Hinokitiol induces DNA demethylation via DNMT1 and UHRF1 inhibition in colon cancer cells[J].BMC Cell Biol,2017,18(1):14.

    17 Li J,Zhang N,Zhang R,et al.CDC5L Promotes hTERT expression and colorectal tumor growth[J].Cell Physiol Biochem,2017,41(6):2475-2488.

    18 Huang L,Li A,Liao G,et al.Curcumol triggers apoptosis of p53 mutant triple-negative human breast cancer MDA-MB 231 cells via activation of p73 and PUMA[J].Oncol Lett,2017,14(1):1080-1088.

    19 Cao Y,Lin M,Bu Y,et al.p53-inducible long non-coding RNA PICART1 mediates cancer cell proliferation and migration[J].Int J Oncol,2017,50(5):1671-1682.

    EffectofsilencingUHRF1onproliferationandmetastasisofbreastcancercells

    CHENZhuo,KONGYiran

    Harbin Medical University Cancer Hospital,Harbin 150081,China

    ObjectiveThe objective of this study was to investigate the effect of UHRF1 on the proliferation and metastasis of breast cancer MDA-MB-231 cells and its mechanism.MethodsThe effect of silencing UHRF1 gene on the viability of MDA-MB-231 cells was detected by MTT assay.Colony formation assay was performed to analyze the effect of silencing UHRF1 on cell survival of MDA-MB-231 cells.The effect of silencing UHRF1 on the apoptosis of MDA-MB-231 cells was detected by acridine orange-ethidium bromide (AO / EB).Caspase-3 activity kit was used to detect the expression of caspase-3 in MDA-MB-231 cells.The expressions of Bcl-2,Bax,Bad,p-Bad,XIAP,p53,p21Cip1/Wafand p16INK4awere detectedby Western blot.The abilities of invasion and migration of MDA-MB-231 cells silenced by UHRF1were examined by Transwell and Wound healing assays,respectively.ResultsSilencing UHRF1 significantlydecreased the viability of MDA-MB-231 cells.Silencing UHRF1 decreased colony formation in MDA-MB-231 cells.Depletion of UHRF1 resulted in apoptosis inducedin MDA-MB-231 cells,showing nuclear morphological changes by AO/EB staining and increasing caspase-3 activity.After knockdown of UHRF1,the expression of Bad,XIAP,Bax,p53,p21Cip1/Waf1and p16INK4awas up-regulatedand down-regulated the expression of p-Bad and Bcl-2 in MDA-MB-231 cells.Transwell and wound healing assays demonstrated that silencing UHRF1 could decrease metastasisin MDA-MB-231 cells.ConclusionSilencing UHRF1 can inhibit the viability and survival of MDA-MB-231 cells,and inhibit the invasion and migration of MDA-MB-231 cells regulated by p53/p21Cip1/Waf1/p16INK4asignalings.

    UHRF1;Breast cancer;p53;Metastasis;Apoptosis

    哈爾濱醫(yī)科大學附屬腫瘤醫(yī)院(哈爾濱 150081)

    陳琢,女,(1987-),碩士,住院醫(yī)師,從事外科疾病的研究。

    陳琢,E-mail:zhuochen930@hotmail.com

    R737.9

    A

    10.11904/j.issn.1002-3070.2017.06.006

    (收稿:2017-07-14)

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