錢偉琨 段萬星 馬清涌
胰腺癌動物學(xué)模型研究現(xiàn)狀
錢偉琨 段萬星 馬清涌
(馬清涌,西安交通大學(xué)第一附屬醫(yī)院教授、主任醫(yī)師、博士生導(dǎo)師。中國抗癌協(xié)會胰腺癌專業(yè)委員會、CSCO胰腺癌專家委員會、中華醫(yī)療保健國際交流促進(jìn)會胰腺疾病分會委員、中國醫(yī)藥教育協(xié)會腹部腫瘤專業(yè)委員會常務(wù)委員。中華胰腺病學(xué)雜志及多本專業(yè)雜志編委。主要研究方向胰腺疾病的基礎(chǔ)及臨床應(yīng)用研究。培養(yǎng)博士55名,已畢業(yè)42名。發(fā)表論文200余篇,包括SCI論文130余篇。獲陜西省科學(xué)技術(shù)二等獎三項。)
現(xiàn)階段,胰腺導(dǎo)管腺癌(pancreatic ductal adenocarcinoma, PDAC)研究主要應(yīng)用的動物模型可以分為移植瘤模型、基因工程鼠模型以及近年來興起的類器官模型[1]等。動物模型具有動物體型小、繁殖迅速、壽命長(3年)等特點,可以更加真實地反映腫瘤在生物體內(nèi)發(fā)生、發(fā)展、轉(zhuǎn)移和耐藥等情況,故對于PDAC發(fā)生的分子機(jī)制研究、抗腫瘤藥物篩選等具有重要的意義。
PDAC移植瘤模型有很多種,按移植部位可分為皮下移植瘤和胰腺原位移植瘤模型;按移植物來源可分為同種移植瘤和異種移植瘤模型,后者又按移植物種類分為基于人腫瘤細(xì)胞構(gòu)建的細(xì)胞移植瘤模型和基于人腫瘤組織構(gòu)建的異種移植瘤(patient-derived tumour xenografts,PDXs)模型。PDAC移植瘤模型較體外細(xì)胞模型的優(yōu)勢在于能更加真實、系統(tǒng)地模擬腫瘤在生物活體內(nèi)生長情況,反映生物體營養(yǎng)、代謝、免疫狀況等對腫瘤發(fā)生、生長、轉(zhuǎn)移、耐藥等方面的影響,較基因工程鼠模型造價低、操作簡便、成瘤周期短。
細(xì)胞移植瘤模型是將人腫瘤細(xì)胞移植入免疫缺陷鼠皮下或胰腺原位,其缺陷在于移植物來源較為單一(常為一種腫瘤細(xì)胞),代表性不足。PDAC是一種高度異質(zhì)性的腫瘤,表現(xiàn)為腫瘤細(xì)胞成分及來源多樣,間質(zhì)成分多樣,甚至在不同個體或同一個體不同時期呈現(xiàn)多樣性。全基因組測序證實,不同個體之間或同一個體的原發(fā)腫瘤和轉(zhuǎn)移灶之間,PDAC具有很強(qiáng)的遺傳多樣性[2]。研究表明,豐富的基質(zhì)纖維化反應(yīng)是PDAC的一個顯著特征,PDAC腫瘤組織中腫瘤細(xì)胞占比較少,其周圍包繞著大量的主要由胰腺星狀細(xì)胞(pancreatic stellate cells, PSCs)產(chǎn)生的細(xì)胞外基質(zhì)(extracellular matrix,ECM)[2]和各種非腫瘤細(xì)胞例如間質(zhì)細(xì)胞、免疫細(xì)胞、血管細(xì)胞等。為了更好地模擬出更真實的PDAC,本課題組將BxPC-3細(xì)胞和PSCs以5∶1比例混合制成單細(xì)胞懸液,注入Balb/c裸鼠皮下(100 μl)或胰腺原位(30 μl)成功構(gòu)建了PDAC間質(zhì)纖維化移植瘤模型[3]。
PDXs模型則是將新鮮的PDAC切除標(biāo)本碎片移植入免疫缺陷鼠皮下或胰腺原位,可以較細(xì)胞移植瘤模型更真實地反映出包括PDAC在內(nèi)的許多腫瘤的抗腫瘤藥物應(yīng)答反應(yīng)[4]。PDXs的缺陷在于構(gòu)建周期長且對腫瘤組織的特性要求較高(如需要侵襲性高的腫瘤組織),不適用于PDAC這種生存期短、手術(shù)機(jī)會較少的癌癥。此外,PDXs的腫瘤組織在連續(xù)傳代的過程中,其分子和組織學(xué)特性會發(fā)生改變[5]。
PDAC移植瘤模型的局限性還體現(xiàn)在皮下移植瘤模型是將腫瘤細(xì)胞或組織塊植入血供較為豐富、藥物灌注良好的受體皮下組織,故其不能模擬出真實的PDAC的乏血供、低藥物灌注狀態(tài)[6],因此對PDAC轉(zhuǎn)移的研究價值相對較低[7]。此外,免疫系統(tǒng)與腫瘤的相互作用可影響PDAC的發(fā)生發(fā)展,如癌細(xì)胞可以表達(dá)PD-L1,并與CD8+細(xì)胞毒性T淋巴細(xì)胞(cytotoxic lymphocyte, CTL)表面的PD-1結(jié)合以抑制其遷移活化,從而減少CTL對腫瘤細(xì)胞的識別殺傷,與腫瘤進(jìn)展及不良預(yù)后相關(guān)[8];又如M2型巨噬細(xì)胞與胰腺癌的腫瘤免疫抑制和不良預(yù)后相關(guān)[9]等。為防止免疫排斥而使移植失敗,移植受體主要選用不同類型的免疫缺陷鼠,這就造成了PDAC移植瘤模型缺少了免疫系統(tǒng)與腫瘤之間的相互影響。這些局限性可能是造成以移植瘤模型為載體的基礎(chǔ)實驗結(jié)果與臨床試驗結(jié)論不相符的原因所在。
由正常胰腺上皮演變?yōu)榘┙M織,至少需要發(fā)生4~5個基因突變事件[10]。胰腺癌的發(fā)生和發(fā)展過程中有4個主要的基因:K-ras、CDKN2A、Trp53和Smad4[11]。K-ras基因是PDAC最常見的突變基因之一,抑癌基因Trp53也影響PDAC的發(fā)生發(fā)展。LSL-KrasG12D;Pdx1-Cre(KC)、LSL-KrasG12D;LSL-Trp53R172H;Pdx1-Cre(KPC)[12-13],即基于K-ras癌基因突變和(或)聯(lián)合Trp53抑癌基因突變所構(gòu)建的基因工程鼠模型是現(xiàn)階段研究較為常用的PDAC動物模型,它可以很好地模仿PDAC的病理生理發(fā)展過程。構(gòu)建KC/KPC鼠是借助一種條件基因打靶技術(shù)——Cre-LoxP系統(tǒng)。先利用基因工程技術(shù)構(gòu)建一種表達(dá)載體(核心部件為被LoxP-Stop-LoxP序列錨定的目的基因,如LSL-KrasG12D、LSL-Trp53R172H),其次將其導(dǎo)入預(yù)先獲得的鼠胚胎細(xì)胞,應(yīng)用同源重組技術(shù)將載體整合入胚胎細(xì)胞基因組中,并對其進(jìn)行篩選,然后將整合有目的基因的鼠胚胎細(xì)胞重新導(dǎo)入鼠胚胎使其發(fā)育成為成熟的嵌合體鼠,最后使之與野生型鼠雜交得到含目的基因的雜合子鼠。此外,還需應(yīng)用上述基因工程技術(shù)和雜交技術(shù)獲得帶胰腺特異性啟動子-Cre酶(如Pdx1-Cre)的雜合子鼠,二者雜交形成最終的基因工程鼠模型。此模型的胰腺組織特異性表達(dá)Cre酶,識別切割LoxP-Stop-LoxP序列使目的基因得以表達(dá)。KC鼠可以很好地模擬胰腺正常腺泡→ADM→PanINs(Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ)的變化,腫瘤進(jìn)展較為緩慢,其中位生存期在1年左右,因此它常用于腫瘤的發(fā)生、早期診斷和預(yù)防方面的研究。KPC鼠可以很好地模擬正常胰腺組織→PDAC甚至轉(zhuǎn)移癌的過程,腫瘤進(jìn)展相對迅速,其中位生存期在5個月左右,且其組織學(xué)形態(tài)表現(xiàn)為基質(zhì)成分豐富且乏血供[10],對PDAC常規(guī)化療藥物吉西他濱具有耐藥性[14],主要用于PDAC的生長、轉(zhuǎn)移、耐藥、腫瘤免疫等方面的研究。KPPC鼠為抑癌基因Trp53純合子突變鼠,其腫瘤進(jìn)展迅速,腹水、黃疸、局部浸潤及遠(yuǎn)處轉(zhuǎn)移均較KPC模型嚴(yán)重且快速,中位生存期僅2個月左右[15]。
其他PDAC基因工程鼠模型如Garcia-Carracedo等[16]通過構(gòu)建MT-TGFα、Smad4f/f;p48-Cre (S4)、Smad4f/f;MT-TGFα、p48-Cre (STP)3種模型,顯示Smad4缺失和TGF-α高表達(dá)可促進(jìn)PDAC的轉(zhuǎn)移、PanINs的發(fā)展以及纖維化過程。Gruber等[17]通過構(gòu)建R26-LSL-YFP、LSL-KrasG12D、±Yapf/f、±Tazf/f、±Stat3f/f、Ela1-CreERT2模型,表明PDAC的主要細(xì)胞學(xué)來源是胰腺腺泡細(xì)胞,而非導(dǎo)管細(xì)胞或泡心細(xì)胞,提出了腫瘤的命名方式應(yīng)該由其來源確定而非后期形態(tài)來確定的理念。總之,基因工程鼠模型的優(yōu)勢決定了其在PDAC研究中的核心地位,但局限性在于設(shè)計難度大、操作復(fù)雜、構(gòu)建困難、造價昂貴,故其廣泛應(yīng)用仍受到一定程度的限制。
Boj等[1]在前人研究的基礎(chǔ)上開發(fā)出PDAC類器官模型。首先取小葉內(nèi)導(dǎo)管細(xì)胞(來自野生型小鼠正常胰腺組織和KC鼠PanINs-1a/b胰腺組織)包埋入人工基底膜進(jìn)行3D培養(yǎng),然后將其原位移植入小鼠胰腺。結(jié)果野生型小鼠構(gòu)建的模型表現(xiàn)為正常胰腺導(dǎo)管結(jié)構(gòu),KC鼠構(gòu)建出PDAC類器官模型。應(yīng)用人正常胰腺和人PDAC,也獲得了人源性腫瘤組織構(gòu)建的PDAC類器官模型。
PDAC類器官模型的優(yōu)勢在于該模型能夠高度模仿人PDAC完整的病理生理發(fā)展過程(包括各種級別的PanINs、侵襲性PDAC以及轉(zhuǎn)移瘤),還可以觀察到類似于人和基因工程鼠模型中的PDAC的膠原沉積[1,6]。應(yīng)用類器官模型可以在體內(nèi)研究人PanINs的結(jié)構(gòu)、早期標(biāo)志物,從而進(jìn)一步研究PDAC早期診斷與治療技術(shù)。
應(yīng)用PDAC動物模型可以更加真實地反映人PDAC的病理生理發(fā)展過程和分子機(jī)制,對揭示促進(jìn)PDAC快速進(jìn)展的因素、探索非手術(shù)治療方案、改善胰腺癌預(yù)后具有重要意義。從移植瘤模型到基因工程鼠模型再到類器官模型,每種模型都有其自身的優(yōu)勢和局限,要求我們在進(jìn)行PDAC的研究時,一方面要選擇恰當(dāng)?shù)哪P瓦M(jìn)行合適的研究得出合理的結(jié)論,揚長避短,最大限度地減小實驗誤差和偏倚,另一方面要不斷完善PDAC模型,為PDAC的基礎(chǔ)研究創(chuàng)造最符合真實情況的工具。只有這樣,才能更加清楚、準(zhǔn)確地認(rèn)識PDAC,為PDAC的醫(yī)學(xué)轉(zhuǎn)化研究提供理論基礎(chǔ)。
[1] Boj SF, Hwang CI, Baker LA, et al. Organoid models of human and mouse ductal pancreatic cancer[J]. Cell, 2015,160(1-2):324-338. DOI: 10.1016/j.cell.2014.12.021.
[2] Jones S, Zhang X, Parsons DW, et al. Core signaling pathways in human pancreatic cancers revealed by global genomic analyses[J]. Science, 2008,321(5897):1801-1806. DOI: 10.1126/science.1164368.
[3] Duan W, Chen K, Jiang Z, et al. Desmoplasia suppression by metformin-mediated AMPK activation inhibits pancreatic cancer progression[J]. Cancer Lett, 2017,385:225-233. DOI: 10.1016/j.canlet.2016.10.019.
[4] Garber K. From human to mouse and back: ‘tumorgraft’ models surge in popularity[J]. J Natl Cancer Inst, 2009,101(1):6-8. DOI: 10.1093/jnci/djn481.
[5] Aparicio S, Hidalgo M, Kung AL. Examining the utility of patient-derived xenograft mouse models[J]. Nat Rev Cancer, 2015,15(5):311-316. DOI: 10.1038/nrc3944.
[6] Olive KP, Jacobetz MA, Davidson CJ, et al. Inhibition of Hedgehog signaling enhances delivery of chemotherapy in a mouse model of pancreatic cancer[J]. Science, 2009,324(5933):1457-1461. DOI: 10.1126/science.1171362.
[7] Pothula SP, Xu Z, Goldstein D, et al. Key role of pancreatic stellate cells in pancreatic cancer[J]. Cancer Lett, 2016,381(1):194-200. DOI: 10.1016/j.canlet.2015.10.035.
[8] Nomi T, Sho M, Akahori T, et al. Clinical significance and therapeutic potential of the programmed death-1 ligand/programmed death-1 pathway in human pancreatic cancer[J]. Clin Cancer Res, 2007,13(7):2151-2157. DOI: 10.1158/1078-0432.CCR-06-2746.
[9] Witkiewicz A, Williams TK, Cozzitorto J, et al. Expression of indoleamine 2,3-dioxygenase in metastatic pancreatic ductal adenocarcinoma recruits regulatory T cells to avoid immune detection[J]. J Am Coll Surg, 2008,206(5):849-854. DOI: 10.1016/j.jamcollsurg.2007.12.014.
[10] Fearon ER, Vogelstein B. A genetic model for colorectal tumorigenesis[J]. Cell, 1990,61(5):759-767.
[11] Kamisawa T, Wood LD, Itoi T, et al. Pancreatic cancer[J]. Lancet, 2016,388(10039):73-85. DOI: 10.1016/S0140-6736(16)00141-0.
[12] Hingorani SR, Petricoin EF, Maitra A, et al. Preinvasive and invasive ductal pancreatic cancer and its early detection in the mouse[J]. Cancer Cell, 2003,4(6):437-450.
[13] Hingorani SR, Wang L, Multani AS, et al. Trp53R172H and KrasG12D cooperate to promote chromosomal instability and widely metastatic pancreatic ductal adenocarcinoma in mice[J]. Cancer Cell, 2005,7(5):469-483. DOI: 10.1016/j.ccr.2005.04.023.
[14] Jacobetz MA, Chan DS, Neesse A, et al. Hyaluronan impairs vascular function and drug delivery in a mouse model of pancreatic cancer[J]. Gut, 2013,62(1):112-120. DOI: 10.1136/gutjnl-2012-302529.
[15] Morton JP, Timpson P, Karim SA, et al. Mutant p53 drives metastasis and overcomes growth arrest/senescence in pancreatic cancer[J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2010,107(1):246-251. DOI: 10.1073/pnas.0908428107.
[16] Garcia-Carracedo D, Yu CC, Akhavan N, et al. Smad4 loss synergizes with TGFα overexpression in promoting pancreatic metaplasia, PanIN development, and fibrosis[J].PLoS One,2015,10(3):e0120851. DOI: 10.1371/journal.pone.0120851.
[17] Gruber R, Panayiotou R, Nye E, et al. YAP1 and TAZ control pancreatic cancer initiation in mice by direct up-regulation of JAK-STAT3 signaling[J]. Gastroenterology, 2016,151(3):526-539. DOI: 10.1053/j.gastro.2016.05.006.
10.3760/cma.j.issn.1674-1935.2017.06.002
國家自然科學(xué)基金(81672434、81472248)
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馬清涌,Email: qyma56@xjtu.edu.cn
2017-01-25)
呂芳萍)