李 輝,李德芳,陳安國,唐慧娟,李建軍,黃思齊
(中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院 麻類研究所,湖南 長沙 410205)
土壤的鹽堿化是一個世界性的難題,全球鹽漬土面積約10億hm2,中國鹽漬土面積約占世界鹽漬土面積的10%[1-3]。隨著人類活動的增加,環(huán)境的惡化,不合理的灌溉等因素使鹽堿化土地的面積不斷擴大。隨著世界人口的不斷增加,對糧食的需求也不斷增加[4-5],人口、糧食、耕地的矛盾不斷加劇,所以探索農(nóng)作物的耐鹽機理,培育耐鹽品種是一項十分重要的任務(wù)。
植物在進化過程中形成了各種生理生化機制來適應(yīng)鹽脅迫,其中鹽離子的轉(zhuǎn)運和吸收是一個很重要的耐鹽機制。液泡是成熟植物細胞中最大的細胞器,在細胞滲透壓的調(diào)節(jié)、離子的吸收和轉(zhuǎn)運、有毒離子的區(qū)域化以及信號轉(zhuǎn)導(dǎo)系統(tǒng)的調(diào)控等方面具有重要作用[6-7],而液泡膜上的質(zhì)子泵是實現(xiàn)這些生物功能的關(guān)鍵因素。定位于液泡膜上的H+-PPase的質(zhì)子泵,能夠利用焦磷酸(PPi)為底物,催化H+由細胞質(zhì)進入液泡,形成電化學(xué)梯度,用于各種離子的運輸和積累,維持細胞的離子平衡和滲透壓,保證植物能夠在鹽脅迫下正常生長[8-9]。H+-PPase基因已經(jīng)從多種植物中得到了克隆,如黃瓜、玉米、梭梭、陸地棉、費爾干豬毛菜、剛毛檉柳等[10-15]。大量的研究表明,通過對H+-PPase基因的遺傳轉(zhuǎn)化能夠顯著提高轉(zhuǎn)基因作物的耐鹽性。Gaxiola等[16]在2001年首次將AVP1 基因轉(zhuǎn)入擬南芥中,結(jié)果發(fā)現(xiàn),超表達AVP1 基因的轉(zhuǎn)基因植株抗鹽性得到增強。Duan等[17]通過在煙草中過量表達液泡膜H+-PPase基因,發(fā)現(xiàn)在鹽脅迫下轉(zhuǎn)基因煙草比野生型煙草葉肉細胞液泡中的Na+含量更高,耐鹽性更強。
紅麻(Hibiscuscannabinus)是一年生韌皮纖維作物。紅麻纖維是重要的紡織原料,可以用于地毯,麻袋的生產(chǎn),隨著紅麻多用途開發(fā)利用的研究,紅麻還可以用于建筑板材、紙漿、飼料、麻骨炭等方面[18]。隨著人們對糧食需求的不斷增加,紅麻的生產(chǎn)必須向鹽堿地、灘涂、干旱坡地轉(zhuǎn)移而避免與糧棉油爭地。所以對紅麻耐鹽機理的探索,培育紅麻耐鹽品種對紅麻產(chǎn)業(yè)的發(fā)展具有重要意義。目前,紅麻的H+-PPase基因還未見報道,本研究從紅麻耐鹽轉(zhuǎn)錄組測序結(jié)果中發(fā)現(xiàn)了該基因,克隆了其全長cDNA序列,并對該基因進行了鹽脅迫表達分析,這將為紅麻耐鹽分子設(shè)計育種奠定堅實的基礎(chǔ)。
中紅麻16號的種子由中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院麻類研究所紅麻育種課題組提供。選取籽粒飽滿,大小均勻的種子,消毒,播種在發(fā)芽盒,置于光照培養(yǎng)箱,晝夜溫度為28,26 ℃,光照13 h/d,培養(yǎng)7 d后,選取植株健壯,長勢一致的紅麻幼苗,移入1/2 Hoagland 營養(yǎng)液中繼續(xù)培養(yǎng),每天更換營養(yǎng)液。在營養(yǎng)液中培養(yǎng)5 d后進行NaCl脅迫處理,NaCl濃度梯度為0,75,150,250 mmol/L。每個處理設(shè)置3個重復(fù),每個重復(fù)選用10株幼苗。NaCl脅迫處理5 d后取樣,每個處理選取3株幼苗葉片,液氮速凍后保存在-80 ℃冰箱,用于總RNA的提取。
TRIzol購自Invitrogen 公司, Reverse Transcriptase、Rever Transcriptase inhibitor、Power2(SYBR Real-time PCR Premixture、pMD19-T載體購自TaKaRa 公司,DH5α感受態(tài)細胞購自天根生化科技有限公司;其余試劑為國產(chǎn)分析純。
依據(jù)紅麻轉(zhuǎn)錄組序列利用Primer premier 5.0進行引物設(shè)計,NCBI Blast驗證引物準確性,序列由上海生工合成?;蚩寺〉囊镄蛄校篜rimer-F(5′-3′):ATGTCGGATCATGGATTTA;Primer-R(5′-3′):
TCATGGTTCGTGTTTAAGGA。
參照天根生化科技有限公司,植物總RNA提取試劑盒的說明書提取總RNA, 然后用1.0%的瓊脂糖凝膠電泳檢測提取總RNA的完整性和純度。
提取250 mmol/L NaCl脅迫下紅麻幼苗葉片的總RNA,并進行反轉(zhuǎn)錄合成首鏈cDNA, 以1 μL反轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物為模板進行PCR擴增。PCR反應(yīng)體系:10×LA PCR Buffer(Mg2+plus) 2.5 μL,LATaq(TaKaRa) 0.25 μL, dNTP(2.5 mmol/mL)1 μL,F(xiàn)-primer(10 μmol/mL)0.25 μL,R-Primer(10 μmol/mL)0.25 μL,cDNA 1 μL,dH2O 補足25 μL。PCR反應(yīng)程序:94 ℃ 2 min;94 ℃ 30 s,55 ℃ 30 s,72 ℃ 60 s,30個循環(huán);72 ℃ 3 min,反應(yīng)終止于4 ℃。反應(yīng)結(jié)束后,取10 μL PCR產(chǎn)物進行瓊脂糖凝膠電泳。PCR產(chǎn)物連接到pMD19-T載體上,轉(zhuǎn)化DH5α感受態(tài)細胞,送華大基因進行測序。
利用ORF Finder(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/gorf/gorf.html)尋找Hcvp1基因的最大開放讀碼框;在NCBI網(wǎng)站((http://www.ncbi.nlm.nih.gov/blast)對Hcvp1基因的核苷酸序列進行BlastN序列比對,同時利用推測的氨基酸序列進行BlastP比對;利用ClustalW軟件進行Hcvp1基因氨基酸序列同源性比對;用MEGA 6.0構(gòu)建進化樹,分析該基因的進化關(guān)系。用TMHMM-2.0(http://www.cbs.dut.dk/services/TMHMM-2.0/)預(yù)測Hcvp1基因編碼蛋白質(zhì)的跨膜結(jié)構(gòu),用(http://www.expasy.ch/tools/pi_tool.html)推測Hcvp1基因編碼蛋白質(zhì)的等電點和分子量。
采用實時熒光定量PCR(qRT-PCR)技術(shù)分析Hvcp1 在不同的NaCl濃度脅迫下的表達特征。熒光定量PCR的引物Primer-F(5′-3′):GGTGCGGAGGAATTAGTA,Primer-R(5′-3′):ATGAAAGCAAATCGTGGT;內(nèi)參基因為Actin, 引物為:Primer-F (5′-3′) CAGGCAGTTCTTTCTTTGT;Primer-R (5′-3′) ATCCTCCAATCCAGACACT。qRT-PCR的反應(yīng)體系為(10 μL):Power 2×SYBR Real-time PCR Premixture 5 μL,正向引物(Forward primer)0.3 μL,反向引物(Reverse primer)0.3 μL,cDNA 2 μL,H2O 2.4 μL。qRT-PCR的反應(yīng)程序為:95 ℃ 2 min; 95 ℃ 15 s, 61 ℃ 15 s, 72 ℃ 20 s,40個循環(huán)。
根據(jù)天根生化科技有限公司的植物總RNA提取試劑盒說明書提取250 mmol/L NaCl濃度脅迫的紅麻幼苗葉片的總RNA, 然后用1.0%的瓊脂糖凝膠電泳檢測提取總RNA的完整性和純度。結(jié)果如圖1所示28S、18S和5S 3條帶清晰可見,并且28S條帶的亮度約是18S條帶亮度的2倍,表明RNA結(jié)構(gòu)完整,無污染和降解可以作為反轉(zhuǎn)錄的模板。
以紅麻耐鹽轉(zhuǎn)錄組獲得的Hcvp1基因的片段序列為基礎(chǔ),設(shè)計特異性引物,以cDNA為模板進行PCR擴增,擴增產(chǎn)物進行瓊脂糖凝膠電泳檢測結(jié)果如圖2所示。經(jīng)PCR獲得產(chǎn)物連接到pMD19-T載體上,轉(zhuǎn)化DH5α感受態(tài)細胞,經(jīng)培養(yǎng)后提取質(zhì)粒,送華大基因公司進行測序。將測序獲得的cDNA序列,通過Blast比對發(fā)現(xiàn),其與H+-PPase基因高度相似,將其命名為Hcvp1,在GenBank中的登錄號為:KX687919。
圖1 紅麻葉片總RNA凝膠電泳圖Fig.1 Agarose gel electrophoresis of total RNA of kenaf leaf
Marker.2k plus Ⅱ;1.PCR產(chǎn)物。Marker.2k plus Ⅱ; 1.PCR production.
圖3 Hcvp1基因的核苷酸序列和氨基酸序列Fig.3 Nucleotides sequence and predicted amino acids sequence of Hcvp1 gene
經(jīng)過Sanger測序,該基因cDNA全長2 298 bp,開放閱讀框為2 298 bp,推測其編碼765個氨基酸的蛋白質(zhì)(圖3),推測其分子量和等電點分別為80.2 kDa和5.25。用TMHMM-2.0預(yù)測表明Hcvp1基因編碼蛋白質(zhì)具有13個跨膜結(jié)構(gòu)(圖4)。
圖4 Hcvp1 蛋白質(zhì)的跨膜結(jié)構(gòu)預(yù)測Fig.4 Transmembrane region prediction of Hcvp1
將該基因核苷酸序列通過BlastN 比對分析,發(fā)現(xiàn)其與雷蒙德氏棉(XM 012587702)、甜橙(XM 006492028 )、毛果楊(XM 006389360 )、煙草(NM001325218)、和大豆(XM 003528254)的H+-PPase基因核苷酸序列的相似性分別為90%,85%,85%,83%,83%,通過BlastP比對發(fā)現(xiàn)蛋白質(zhì)序列的相似性分別為96%,93%,91%,93%,94%。
利用ClustalW軟件分析Hcvp1基因氨基酸序列與具有代表性的雷蒙德氏棉(XM 012587702)、甜橙(XM 006492028 )、毛果楊(XM 006389360)、煙草(NM001325218)、紅麻(KX687919)和大豆(XM 003528254)的H+-PPase基因氨基酸序列進行比對分析(圖5)。結(jié)果表明,Hcvp1基因氨基酸序列與其他植物氨基酸序列的一致性為94.6%,保守的氨基酸多達738個,而非保守的氨基酸僅有27個。
多重比較采用ClustalW軟件進行;不同的標記表示氨基酸殘基不同的保守性;* .完全保守; :.75%以上;..50%以上和不足50%的保守。
利用MEGA 6.0軟件分析Hcvp1基因的氨基酸序列與具有代表性的雷蒙德氏棉(XM 012587702)、甜橙(SM 006492028 )、毛果楊(XM 006389360 )、煙草(NM001325218)、紅麻(KX687919)和大豆(XM 003528254)的H+-PPase基因氨基酸序列的進化關(guān)系(圖6)表明,紅麻與雷蒙德氏棉的距離最近,這可能是因為兩者都是錦葵科的緣故。紅麻與毛果楊的距離最遠。
圖6 Hcvp1 和其他H+-PPase基因的進化樹分析Fig.6 Phylogenetic tree of Hcvp1 and other H+-PPase genes
圖7 qRT-PCR分析Hcvp1基因在不同NaCl濃度脅迫下的表達Fig.7 Expression analysis of Hcvp1 under different concentration of NaCl by qRT-PCR
分別提取0,75,150,250 mmol/L NaCl濃度脅迫下紅麻幼苗葉片的總RNA,并反轉(zhuǎn)錄成cDNA作為qRT-PCR 反應(yīng)的模板,以肌動蛋白做內(nèi)參,進行qRT-PCR 分析,結(jié)果如圖7所示。表明隨著NaCl濃度的增加,Hvcp1基因的表達量不斷增加??梢奌vcp1基因與NaCl脅迫直接相關(guān)。
根據(jù)紅麻耐鹽轉(zhuǎn)錄組測序獲得的轉(zhuǎn)錄組序列設(shè)計引物[19],從紅麻克隆得到Hcvp1基因,采用多種生物信息學(xué)的方法對Hcvp1基因進行分析,其cDNA全長為2 298 bp,開放閱讀框為2 298 bp,編碼765個氨基酸的多肽。同源序列比較發(fā)現(xiàn),紅麻的Hcvp1基因序列與雷蒙德氏棉、甜橙、毛果楊、煙草、和大豆的液泡膜H+-PPase 基因的序列高度同源,因此,推測獲得的全長cDNA編碼產(chǎn)物是紅麻液泡膜H+-PPase。
液泡膜H+-PPase在植物耐鹽抗旱、生長發(fā)育等方面具有重要的作用。液泡膜H+-PPase能夠調(diào)節(jié)液泡的pH值,參與Na+、K+等溶質(zhì)向液泡內(nèi)運輸;為Na+、Cl-液泡區(qū)域化提供運輸動力,進而減輕鹽害,降低細胞的滲透壓[20-21],提高植物的耐鹽能力。本研究通過qRT-PCR分析發(fā)現(xiàn),隨著NaCl濃度的提高,Hcvp1基因的表達量也隨著升高??梢娨号菽+-PPase基因的表達受NaCl脅迫的誘導(dǎo),且表達量與NaCl濃度直接相關(guān),所以液泡膜H+-PPase基因在紅麻耐鹽機制中具有重要的作用。
本研究克隆了紅麻Hcvp1基因,并對其在不同NaCl濃度脅迫下的表達模式進行了qRT-PCR分析,這將為后續(xù)開展該基因的功能驗證,揭示紅麻耐鹽機制奠定堅實的基礎(chǔ)。