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    實驗性結(jié)腸炎大鼠結(jié)腸上皮claudin-1、-2、-4表達改變*

    2017-11-11 02:47:50武曉琳趙春燕江海洋范聰聰王麗波
    胃腸病學 2017年10期
    關(guān)鍵詞:屏障結(jié)腸炎上皮

    武曉琳 趙春燕 江海洋 范聰聰 王麗波

    吉林大學基礎醫(yī)學院病原微生物學系1(130021) 吉林大學第一醫(yī)院胃腸內(nèi)科2

    實驗性結(jié)腸炎大鼠結(jié)腸上皮claudin-1、-2、-4表達改變*

    武曉琳1趙春燕1江海洋1范聰聰1王麗波2#

    吉林大學基礎醫(yī)學院病原微生物學系1(130021)吉林大學第一醫(yī)院胃腸內(nèi)科2

    緊密連接蛋白質(zhì)類; 惡唑酮; 結(jié)腸炎,潰瘍性; 細胞因子類

    潰瘍性結(jié)腸炎(ulcerative colitis,UC)是一組反復發(fā)作的慢性炎癥性腸道疾病,影響包括兒童在內(nèi)的幾乎各個年齡段的人群,已成為全球性疾病[1]。然而,其病因尚未完全闡明,目前普遍認為UC的致病因素可能包括遺傳、免疫異常、環(huán)境、腸道微生物等的相互作用,最終導致結(jié)腸炎癥的發(fā)生[2]。腸黏膜屏障受損可能是導致UC發(fā)生的病理基礎。近年發(fā)現(xiàn)位于上皮細胞頂側(cè)的緊密連接改變在腸道屏障功能中發(fā)揮關(guān)鍵作用,緊密連接主要由claudin蛋白、occuludin蛋白、JAM等結(jié)構(gòu)蛋白分子共同組成[3]。來源于植物或水果的提取物(如姜黃素、槲皮素、蘋果原漿等)已在Caco-2細胞株中證實可通過抑制激酶或促使轉(zhuǎn)錄因子表達來調(diào)節(jié)claudin表達,從而增加跨上皮電阻,改善腸上皮屏障功能。上述實驗結(jié)論可能延伸到人小腸上皮,從而對腸相關(guān)疾病的研究起積極作用[4-6]。目前claudin在UC病因、診斷、預后以及治療中的分子機制研究少見。本研究通過給予惡唑酮誘導大鼠實驗性結(jié)腸炎模型,并檢測claudin蛋白表達,旨在探討緊密連接在UC中的作用,從而為其用于UC的診治提供一定的依據(jù)。

    材料與方法

    一、主要材料

    清潔級雌性Wistar大鼠(吉林大學動物實驗中心)40只,體質(zhì)量180~210 g。惡唑酮購自Sigma公司;claudin-1兔多克隆抗體購自ImmunoWay公司;claudin-2兔多克隆抗體購自Abcam公司;claudin-4山羊多克隆抗體購自Santa Cruz公司;GAPDH鼠單克隆抗體購自北京博奧森生物技術(shù)有限公司;Trizol試劑購自Invitrogen公司;RNAiso Plus試劑盒、SuperPrimeScript?RT reagent Kit with gDNA Erase試劑盒和SuperScriptTMⅢ Reverse Transcriptase均購自TaRaKa公司;IL-4、IL-5、IL-10、TNF-α大鼠ELISA檢測試劑盒均購自R&D公司。

    二、研究方法

    1.動物分組與造模方法:按照Abdin[7]的實驗方法,將大鼠分為模型組和正常對照組,每組各20只。大鼠禁食不禁水1 d,10%水合氯醛腹腔注射麻醉后,將一直徑2 mm的靜脈輸液管由肛門輕緩插入至8 cm處,模型組大鼠注射濃度為7.5 mg/mL的惡唑酮1.1 mL,正常對照組注射等體積0.9% NaCl溶液,倒置1 min,以利藥物與腸壁充分接觸而不致于經(jīng)肛門溢出。結(jié)束后,動物平躺,自然清醒,自由飲食。每日觀察并記錄各組大鼠存活狀況,精神狀態(tài)、進食、活動、排便等情況。

    2.標本采集:造模后第7天,10%水合氯醛麻醉大鼠,取結(jié)腸組織。部分結(jié)腸組織以4%多聚甲醛溶液固定,石蠟包埋,行HE染色和免疫組化染色,剩余結(jié)腸組織置于液氮中保存,用于實時PCR和蛋白質(zhì)印跡法。

    3.觀察指標:①造模后存活率:主要觀察模型組大鼠死亡情況。②造模后一般情況:包括大鼠飲食、體質(zhì)量、排便、皮毛、活動情況、精神狀態(tài)等情況。③造模后結(jié)腸組織損傷大體形態(tài)評分和組織學評分方法:大體評分指標包括黏連、局部充血、潰瘍和炎癥。黏連和充血按有無以及輕重程度分別計0、1、2分,出現(xiàn)炎癥、潰瘍數(shù)目增加1個、潰瘍直徑>2 cm時每增加1 cm計分均加1分。組織學評分指標包括潰瘍、炎癥、肉芽腫、纖維化以及病變深度,按有無和輕重程度分別計0、1、2分,病變深度達黏膜下層、肌層、漿膜層分別計1、2、3分,各項相加得總評分。④HE染色:光學顯微鏡下觀察組織炎癥和潰瘍情況。

    4.ELISA法:取各組大鼠血清和結(jié)腸組織,按照ELISA試劑盒說明書,設置標記標準孔和樣品孔后分別加入待測樣本10 μL、樣本稀釋液40 μL以及檢測抗體100 μL,封板膜封住反應孔,37 ℃恒溫箱孵育1 h,清洗反應板。每孔先后加入底物A、B各 50 μL,37 ℃避光孵育15 min。最后加入終止液50 μL,15 min內(nèi)在450 nm波長處測定各孔A值。

    5.免疫組化染色:取各組大鼠結(jié)腸組織切片二甲苯脫蠟,3% H2O2孵育30 min以阻斷內(nèi)源性過氧化氫酶,PBS洗滌,1% BSA封閉30 min后滴加一抗(claudin-1、-2、-4工作濃度分別為1∶100、1∶300、1∶200),4 ℃過夜,PBS洗滌,加入二抗。DAB顯色,蘇木素復染、脫水、透明、封片,顯微鏡下觀察。以細胞質(zhì)呈棕黃色或棕褐色為陽性表達。

    6.實時PCR法:提取結(jié)腸組織總RNA,逆轉(zhuǎn)錄合成cDNA。各目的基因的引物序列見表1,反應條件:95 ℃ 10 min;95 ℃ 10 s,60 ℃ 60 s,40個循環(huán)。上CFX 96TMRealTime System(Bio-Rad)熒光定量儀,具體步驟按照說明書進行。以GAPDH作為內(nèi)參,采用2-ΔΔCt法分析樣本中目的基因mRNA相對表達量。

    7.蛋白質(zhì)印跡法:提取結(jié)腸組織全蛋白并測定蛋白含量。取60 μg蛋白行SDS-PAGE電泳,轉(zhuǎn)移到PVDF膜上,加入抗claudin-1抗體(工作濃度1∶200)、抗claudin-2抗體(工作濃度1∶300)、抗claudin-4抗體(工作濃度1∶200)4 ℃過夜,次日用TBST洗滌3次,加入二抗孵育1 h,化學發(fā)光ECL放射自顯影。以GAPDH作為內(nèi)參,Image J軟件處理分析蛋白條帶灰度值。

    表1 目的基因引物序列

    三、統(tǒng)計學分析

    結(jié) 果

    一、大鼠一般情況

    模型組大鼠3 d內(nèi)出現(xiàn)排便次數(shù)增多、稀便、便上有黏液或膿點、肛周有糞便等表現(xiàn),少數(shù)出現(xiàn)黏液血便,其中4只大鼠因癥狀嚴重而于造模3 d左右死亡。死亡大鼠腹腔內(nèi)可見大量腹水,胃腔高度擴張,空回腸亦明顯擴張,結(jié)直腸水腫、腸壁顏色灰暗,腸壁變薄,部分呈壞疽狀,其中1只可見穿孔灶(圖1)。正常對照組大鼠飲食正常、反應靈活、體質(zhì)量增加,毛發(fā)無光澤,大小便正常均無腹瀉和血便。

    二、組織病理學改變

    模型組大鼠結(jié)腸黏膜上皮糜爛、潰瘍形成,黏膜下水腫、杯狀細胞和腺體減少,固有層有彌漫性中性粒細胞、淋巴細胞浸潤,黏膜下淋巴細胞增生;正常對照組結(jié)腸黏膜上皮完整,黏膜下亦無腺體和杯狀細胞消失,僅見少量炎癥細胞浸潤(圖2)。模型組大體評分和結(jié)腸組織學評分明顯高于對照組(P<0.05)(表2)。

    三、血清和結(jié)腸組織細胞因子含量

    與正常對照組大鼠相比,模型組血清和結(jié)腸組織IL-4和IL-5含量均顯著增高(P<0.05),而兩組TNF-α和IL-10含量無明顯差異(P>0.05)(表3、表4)。

    圖1 模型組死亡大鼠大體表現(xiàn)圖

    表2 大鼠結(jié)腸組織學評分比較

    *與正常對照組比較,P<0.05

    圖2 各組大鼠結(jié)腸組織HE染色圖

    四、緊密連接蛋白claudin分布和表達

    免疫組化結(jié)果顯示,claudin-1、-2、-4在正常對照組以及模型組大鼠結(jié)腸上皮中均有不同程度的表達,主要位于細胞質(zhì)。與正常對照組相比,模型組大鼠結(jié)腸組織中claudin-1、-4表達明顯下降,而claudin-2表達明顯增加(圖3)。

    表3 各組大鼠血清細胞因子含量比較

    表4 各組大鼠結(jié)腸組織細胞因子表達比較

    圖3各組大鼠結(jié)腸組織中claudin-1、-2、-4表達(免疫組化染色,×200)

    五、實時定量PCR檢測claudin-1、-2、-4 mRNA表達

    與正常對照組相比,模型組claudin-1、-4 mRNA表達顯著降低(P<0.05),而claudin-2 mRNA表達顯著增高(P<0.05)(圖4)。

    六、蛋白質(zhì)印跡法檢測claudin-1、-2、-4蛋白表達

    與正常對照組相比,模型組claudin-1、-4蛋白表達顯著降低(P<0.05),而claudin-2蛋白表達顯著增高(P<0.05)(圖5)。

    *與正常對照組比較,P<0.05

    圖4各組大鼠結(jié)腸組織中claudin-1、-2、-4 mRNA表達(實時PCR法)

    1 Da=0.992 1 u

    圖5各組大鼠結(jié)腸組織中claudin-1、-2、-4蛋白表達(蛋白質(zhì)印跡法)

    討 論

    近年腸黏膜屏障功能在IBD病理生理過程中的作用逐漸引起重視。機械屏障是腸黏膜屏障的重要組成部分,由單層腸上皮細胞和細胞間連接(包括緊密連接、黏附連接和縫隙連接)組成,緊密連接通透性是決定腸道通透性的關(guān)鍵因素,維持完整的緊密連接形態(tài)和功能對保護腸黏膜屏障、防止細菌易位具有重要意義。急性期IBD患者腸黏膜屏障受損,腸道通透性增加,腸上皮完整性受損,如潰瘍、糜爛等肉眼可見病變是引起屏障功能受損的主要原因,但在上皮組織完整的腸黏膜區(qū)同樣可見緊密連接結(jié)構(gòu)受損、通透性增加[8]。

    細胞因子通過兩種方式影響緊密連接,一是調(diào)節(jié)緊密連接蛋白的表達,二是影響緊密連接蛋白重新分布的過程[9]。惡唑酮為一種半抗原,可誘發(fā)大鼠結(jié)腸發(fā)生接觸性過敏反應。惡唑酮誘導的實驗性結(jié)腸炎為IL-4介導的以IL-4/IL-5含量增高為主、TNF-α和INF-γ含量正常的典型Th2型炎癥。本研究中,與正常對照組相比,模型組大鼠血清以及結(jié)腸組織促炎細胞因子IL-4和IL-5表達顯著增高,而TNF-ɑ和IL-10表達無明顯差異。但UC發(fā)病過程中涉及多種細胞因子,如促炎細胞因子IL-1α、IL-1β、IL-2、IL-6、IL-8、IL-12、IL-17、IL-23、IFN均與UC的發(fā)病和進展密切相關(guān),而抗炎細胞因子如IL-4、IL-10和IL-13與UC的發(fā)病以及病理特征密切相關(guān),促炎因子和抗炎因子共同影響結(jié)腸黏膜炎癥的發(fā)生、發(fā)展,因此各細胞因子在惡唑酮誘導UC中的作用仍需進一步研究。

    緊密連接復合體由occludin、claudin以及膜周蛋白JAM和ZO蛋白以及相關(guān)激酶組成。Claudin蛋白是組成緊密連接復合體的功能和結(jié)構(gòu)基礎,可直接影響上皮/內(nèi)皮組織跨上皮細胞電阻,決定緊密連接復合體的離子選擇性,并調(diào)節(jié)緊密連接復合體的通透性。一部分claudin可加固細胞間的連接,其表達上調(diào)可降低緊密連接復合體的通透性,稱之為“封閉性”claudin蛋白,包括claudin-1、-3、-4、-5、-8等;另一部分claudin分子可通過形成特異性離子通道而增加緊密連接復合體的通透性,稱之為“滲漏性”claudin蛋白,如claudin-2可增加緊密連接結(jié)構(gòu)孔數(shù)量,增加經(jīng)細胞旁物質(zhì)運輸,尤其是Na+離子的吸收。claudin蛋白與occludin、ZO蛋白相連,在組裝成熟的緊密連接結(jié)構(gòu)和維持緊密連接復合體的完整性方面發(fā)揮重要作用[9]。

    本研究免疫組化、蛋白質(zhì)印跡法和實時PCR結(jié)果均顯示,與正常對照組相比,惡唑酮誘導的結(jié)腸炎大鼠結(jié)腸上皮滲漏性緊密連接蛋白claudin-2表達增加,封閉性緊密連接蛋白claudin-1、-4表達顯著下降。推測這些緊密連接蛋白表達變化是引起惡唑酮大鼠結(jié)腸緊密連接復合體受損、腸黏膜屏障功能下降的主要機制。Fischer等[10]的研究表明TNF-α單克隆抗體阿達木單抗可緩解TNF-α引起的結(jié)腸癌細胞株T-84細胞緊密連接蛋白claudin-1、-2、-4以及occludin表達減少導致的細胞屏障功能紊亂以及滲透性增加。因此細胞屏障的保護作用將成為抗TNF-α治療機制的研究新方向,這一作用可對炎癥性腸病造成的結(jié)腸上皮重塑以及組織損傷均具有重要意義[11]。

    總之,結(jié)腸炎大鼠結(jié)腸組織中claudin-1、-2、-4表達改變與黏膜屏障損傷、功能紊亂以及滲透性改變可能具有重要聯(lián)系,可作為UC的治療研究靶點,是UC藥物治療療效的重要評價指標以及藥物機制研究的重要方向,未來需行進一步研究探討。

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    3 Roda G,Sartini A,Zambon E,et al.Intestinal epithelial cells in inflammatory bowel diseases[J].World J Gastroenterol,2010,16 (34):4264-4271.

    4 Lu Z,Ding L,Lu Q,et al.Claudins in intestines:Distribution and functional significance in health and diseases[J].Tissue Barriers,2013,1 (3):e24978.

    5 Epstein J,Docena G,MacDonald TT,et al.Curcumin suppresses p38 mitogen-activated protein kinase activation,reduces IL-1beta and matrix metalloproteinase-3 and enhances IL-10 in the mucosa of children and adults with inflammatory bowel disease[J].Br J Nutr,2010,103 (6):824-832.

    6 Vreeburg RA,van Wezel EE,Ocaa-Calahorro F,et al.Apple extract induces increased epithelial resistance and claudin 4 expression in Caco-2 cells[J].J Sci Food Agric,2012,92 (2):439-444.

    7 Abdin AA.Targeting sphingosine kinase 1 (SphK1) and apoptosis by colon-specific delivery formula of resveratrol in treatment of experimental ulcerative colitis in rats[J].Eur J Pharmacol,2013,718 (1-3):145-153.

    8 Haber VE,Cˇu?ic' S,Kramaric' MD,et al.Claudin expression in animal models of IBD and human disease[J].New Horiz Transl Med,2015,2 (2):66.

    9 Hering NA,Fromm M,Schulzke JD.Determinants of colonic barrier function in inflammatory bowel disease and potential therapeutics[J].J Physiol,2012,590 (5):1035-1044.

    10 Fischer A,Gluth M,Pape UF,et al.Adalimumab prevents barrier dysfunction and antagonizes distinct effects of TNF-α on tight junction proteins and signaling pathways in intestinal epithelial cells[J].Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol,2013,304 (11):G970-G979.

    11 Amasheh S,Fromm M,Günzel D.Claudins of intestine and nephron - a correlation of molecular tight junction structure and barrier function[J].Acta Physiol (Oxf),2011,201 (1):133-140.

    (2017-05-17收稿;2017-07-01修回)

    ChangesofExpressionsofClaudin-1,-2,-4inExperimentalColitisRats

    WUXiaolin1,ZHAOChunyan1,JIANGHaiyang1,FANCongcong1,WANGLibo2.

    1DepartmentofPathogenBiology,CollegeofBasicMedicalSciences,JilinUniversity,Changchun(130021);2DepartmentofGastroenterology,theFirstHospitalofJilinUniversity,Changchun

    WANG Libo,Email:wanglibo75@163.com

    Claudins; Oxazolone; Colitis,Ulcerative; Cytokines

    10.3969/j.issn.1008-7125.2017.10.005

    吉林省科技發(fā)展項目計劃(20130413011GH)

    #本文通信作者,Email:wanglibo75@163.com

    背景:潰瘍性結(jié)腸炎(UC)是一種慢性非特異性腸道炎癥病變,大量研究表明,UC腸黏膜損傷與緊密連接蛋白改變有關(guān)。目的探討實驗性結(jié)腸炎大鼠結(jié)腸中claudin-1、-2、-4的表達。方法將40只雌性Wistar大鼠隨機分為正常對照組和模型組,給予大鼠7.5 mg/mL惡唑酮灌腸制備實驗性結(jié)腸炎模型,以等量0.9% NaCl溶液灌腸作為正常對照。造模7 d后,行大體評分和結(jié)腸組織學評分,以ELISA法檢測血清和結(jié)腸中細胞因子TNF-α、IL-4、IL-5、IL-10含量,免疫組化和蛋白質(zhì)印跡法檢測緊密連接蛋白claudin-1、-2、-4蛋白表達,實時PCR法檢測claudin-1、-2、-4 mRNA表達。結(jié)果與正常對照組相比,模型組結(jié)腸大體評分和組織學評分均顯著升高(P<0.05);血清和結(jié)腸組織IL-4和IL-5含量均顯著增高(P<0.05),而兩組TNF-α和IL-10含量無明顯差異(P>0.05);claudin-1、-4 mRNA和蛋白表達顯著降低(P<0.05),claudin-2 mRNA和蛋白表達顯著增高(P<0.05)。結(jié)論實驗性結(jié)腸炎大鼠中緊密連接蛋白claudin-1、-2、-4的分布和表達發(fā)生改變,導致腸黏膜屏障功能受損,有望作為UC治療的潛在靶點。

    Background:Ulcerative colitis (UC) is a chronic inflammatory disorder.Studies have shown that intestinal injury of UC is related to changes of tight junction proteins.AimsTo investigate the expressions and localizations of tight junction protein claudin-1,-2,-4.MethodsForty female Wistar rats were randomly divided into normal control group and model group.Rats in model group

    7.5 mg/mL oxazolone enema to induce experimental colitis.Rats received 0.9% NaCl solution enema were served as normal controls.Macroscopic score and histological score were assessed.ELISA was used to determine serum and colon tissue inflammatory factor TNF-α,IL-4,IL-5,IL-10 levels.Protein expressions of tight junction protein claudin-1,-2,-4 were measured by immunohistochemistry and Western blotting.mRNA expressions of claudin-1,-2,-4 were determined by real-time PCR.ResultsCompared with normal control group,macroscopic score and histological score were significantly increased (P<0.05),serum and colon tissue IL-4 and IL-5 levels were significantly increased (P<0.05) in model group,however,no significant differences in TNF-α and IL-10 levels were found between the two groups (P>0.05).mRNA and protein expressions of claudin-1,-4 were significantly decreased in model group than in normal control group (P<0.05),while mRNA and protein expressions of claudin-2 were significantly increased (P<0.05).ConclusionsChanges of distributions and expressions of tight junction protein claudin-1,-2,-4 are found in experimental colitis rats,which may lead to impaired epithelial barrier,and might be served as potential target for treatment of UC.

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